Меню Рубрики

Какая пробирка для общего анализа крови

Кровь с ЭДТА

(Пробирка с фиолетовой крышкой)

БИОХИМИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ (Гликозилированный гемоглобин)

Кровь берется натощак, в вакуумную пробирку с К3ЭДТА (фиолетовая крышка), строго до риски, указанной на этикетке пробирки. После получения крови пробирку плавно несколько раз переворачивают на 180 гр. с целью тщательного перемешивания всей крови в образце с антикоагулянтом. (Не встряхивать!)

Пробирку промаркировать: Ф.И.О. пациента, номер образца, номер ЛПУ (данные должны соответствовать указанным в направительном бланке). До приезда курьера пробирку хранят в штативе в вертикальном положении при температуре +2+8 С. Передать в лабораторию в день взятия материала.

1. Катехоламины: адреналин, норадреналин, дофамин и серотонин

По возможности центрифугировать в течение 5 минут при скорости вращения 3000 об/мин. Сыворотку перелить в сухую пробирку типа Эппендорф, заморозить при температуре -20 С

2. Ненасыщенные жирные кислоты семейства Омега-3

Ненасыщенные жирные кислоты семейства Омега -6

Держать пробы в защищенных от прямых солнечных лучей местах. По возможности быстро доставить в лабораторию!

Недопустимо замораживание образцов цельной крови!

1. Адренокортикотропный гормон (АКТГ)

Кровь берется строго натощак в ОХЛАЖДЕННУЮ вакуумную пробирку с К3ЭДТА (фиолетовая крышка) строго до риски. Пробирку с кровью необходимо ОСТОРОЖНО ПОМЕСТИТЬ В ЕМКОСТЬ СО ЛЬДОМ, не допуская соприкосновения льда со стенками пробирки (обернуть салфеткой)!

При возможности отделить плазму от форменных элементов крови как можно быстрее. Для этого необходимо пробу центрифугировать (желательно в рефрижераторной центрифуге при 4 С) (10 мин, ОЦС=1500g), отобрать плазму в пластиковую пробирку без всяких добавок, пробу заморозить при -20 С. Нельзя допускать размораживание пробы по время хранения и транспортировки!

Взятие крови должно проводиться строго натощак (не менее 10 – 12 часов после последнего приёма пищи). Накануне исследования исключить алкоголь, физические нагрузки. Взятие крови на исследование должно проводится строго в утренние часы с 8.00 до 10.00. Референсные значения данного показателя рассчитаны именно на это время. Кровь берется в ОХЛАЖДЕННУЮ вакуумную пробирку с К3ЭДТА (фиолетовая крышка) строго до риски. Пробирку с кровью необходимо ОСТОРОЖНО ПОМЕСТИТЬ В ЕМКОСТЬ СО ЛЬДОМ, не допуская соприкосновения льда со стенками пробирки (обернуть салфеткой)!

При возможности отделить плазму от форменных элементов крови как можно быстрее. Для этого необходимо пробу центрифугировать (желательно в рефрижераторной центрифуге при 4 С) (10 мин, ОЦС=1500g), отобрать плазму в пластиковую пробирку без всяких добавок, пробу заморозить при -20 С. Нельзя допускать размораживание пробы по время хранения и транспортировки!

Кровь берется натощак, в вакуумную пробирку с К3ЭДТА (фиолетовая крышка), строго до риски, указанной на этикетке пробирки. После получения крови пробирку плавно несколько раз переворачивают на 180 гр. с целью тщательного перемешивания всей крови в образце с антикоагулянтом. (Не встряхивать!)

Пробирку промаркировать: Ф.И.О. пациента, номер образца, номер ЛПУ (данные должны соответствовать указанным в направительном бланке). До приезда курьера пробирку хранят в штативе в вертикальном положении при температуре +2+8 С. Передать в лабораторию в день взятия материала

Общее время хранения и транспортировки:

  1. Для количественного и качественного определения нуклеиновых кислот (РНК): при температуре

2-8 С в течение 12 часов с момента взятия материала

  1. Для качественного определения нуклеиновых кислот(ДНК): при температуре 2-8 С – не более одних суток.

Недопустимо замораживание образцов цельной крови!

Кровь берется натощак, в вакуумную пробирку с К3ЭДТА (фиолетовая крышка) строго до риски. После получения крови пробирку плавно несколько раз переворачивают на 180 гр. с целью тщательного перемешивания всей крови в образце с антикоагулянтом. (Не встряхивать!)

Пробирку промаркировать: Ф.И.О. пациента, номер образца, номер ЛПУ (данные должны соответствовать данным указанным в направительном бланке). До приезда курьера пробирку хранят в штативе в вертикальном положении при температуре +2+8 С. Передать в лабораторию в день взятия материала.

Кровь берется натощак, в вакуумную пробирку с К3ЭДТА (фиолетовая крышка), строго до риски, указанной на этикетке пробирки. После получения крови пробирку плавно несколько раз переворачивают на 180 гр. с целью тщательного перемешивания всей крови в образце с антикоагулянтом. (Не встряхивать!)

Пробирку промаркировать: Ф.И.О. пациента, номер образца, номер ЛПУ (данные должны соответствовать указанным в направительном бланке). До приезда курьера пробирку хранят в штативе в вертикальном положении при температуре +2+8 С. Передать в лабораторию в день взятия материала.

Из биоматериала одной полной пробирки (в объеме 4 мл) может быть выполнено не более 5 (пяти) молекулярно-генетических исследований!

Недопустимо замораживание образцов цельной крови!

КРОВЬ С ГЕПАРИНОМ

(ПРОБИРКА С ЗЕЛЕНОЙ КРЫШКОЙ)

АНТИОКСИДАНТНЫЙ СТАТУС — Отдельная пробирка!

ИММУННЫЙ СТАТУС (Клеточный иммунитет, Фагоцитарная активность ) — Отдельная пробирка!

ИНТЕРФЕРОНОВЫЙ СТАТУС(Интерфероновый статус без определения чувствительности лейкоцитов к препаратам, определение чувствительности к препаратам)- Отдельная пробирка!

Кровь берется натощак, в вакуумную пробирку с зеленой крышкой (с Li-гепарином). Чтобы избежать нарушения соотношения крови и антикоагулянта, кровь в пробирку необходимо набирать строго до метки! После получения крови пробирку плавно несколько раз переворачивают на 180 гр. с целью тщательного перемешивания всей крови в образце с антикоагулянтом. (Не встряхивать!) После взятия дать постоять 10-15 мин. Не центрифугировать!

Написать на этикетке данные пациента: Ф.И.О., дату и время сбора материала. Хранение и транспортировку осуществлять при температуре +18+24 С, передать в лабораторию в день взятия материала.

КРОВЬ С ЦИТРАТОМ НАТРИЯ

(ПРОБИРКА С ГОЛУБОЙ КРЫШКОЙ)

Кровь берется строго натощак. Использовать пробирку с голубой крышкой (с цитратом натрия). Чтобы избежать нарушения соотношения крови и антикоагулянта, кровь в пробирку необходимо набирать строго до метки! После получения крови пробирку плавно несколько раз переворачивают на 180 гр. с целью тщательного перемешивания всей крови в образце с антикоагулянтом. (Не встряхивать!) До приезда курьера хранить при температуре +2+8 С. Исследовать кровь необходимо в течение определенного времени с момента отбора материала

Протромбиновый индекс, Протромбин по Квику + МНО – 6 часов

D-Димер – 6 часов

Тромбиновое время – 8 часов

Протеин S – 6 часов

Фибриноген – 8 часов

Протеин С – 6 часов

АЧТВ – 4 часа

Волчаночный антикоагулянт – 4 часа

Антитромбин III – 6 часов

РКФМ (Внимание! Нельзя замораживать плазму!) – 8 часов

В случае, если доставить биоматериал в лабораторию в указанный срок не представляется возможным, необходимо отобрать для исследований плазму. Плазма отбирается в промаркированные эппендорфы, замораживается и хранится до приезда курьера. При температуре -18 С, стабильность плазмы сохраняется в течение 1 месяца.

Кровь берется строго натощак. Использовать пробирку с голубой крышкой (с цитратом натрия). Необходимо набирать кровь строго до метки. Затем пробирку плавно несколько раз переворачивают на 180 гр. (Не встряхивать!) До приезда курьера хранить при температуре +2+8 С не более 4 часов.

N.B! Независимо от других коагулологических назначений, для выполнения агрегации тромбоцитов всегда нужно взять кровь в ОТДЕЛЬНУЮ пробирку.

ИНДУЦИРОВАННАЯ АГРЕГАЦИЯ ТРОМБОЦИТОВ

(АДФ, коллаген, эпинефрин, арахидоновая кислота, ристомицин)

Кровь берется строго натощак. Использовать пробирку с голубой крышкой (с цитратом натрия). Необходимо набирать кровь строго до метки. Затем пробирку плавно несколько раз переворачивают на 180 гр. (Не встряхивать!) До приезда курьера хранить при температуре +2+8 С не более 4 часов.

N.B! Независимо от других коагулологических назначений, для выполнения исследования ИНДУЦИРОВАННОЙ агрегации тромбоцитов всегда требуется ДВЕ пробирки.

КРОВЬ С АКТИВАТОРОМ ФОРМИРОВАНИЯ СГУСТКА

(ПРОБИРКА С ЖЕЛТОЙ КРЫШКОЙ)

БИОХИМИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ КРОВИ

АМИНОКИСЛОТЫ, ОРГАНИЧЕСКИЕ И ЖИРНЫЕ КИСЛОТЫ

МАРКЕРЫ ОПУХОЛЕВОГО РОСТА

МАРКЕРЫ АУТОИММУННЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ

ИНТЕРФЕРОНОВЫЙ СТАТУС (Определение нейтрализующих антител к препарату интерферона)

ИММУННЫЙ СТАТУС (ЦИК и система комплемента, Гуморальный иммунитет)

Кровь берется строго натощак (интервал времени после приема пищи должен составлять 8-12 часов) в вакуумную пробирку с активатором формирования сгустка (желтая крышка). После получения крови пробирку плавно несколько раз переворачивают на 180 гр. (не встряхивать!). Пробирку промаркировать: Ф.И.О. пациента, номер образца, номер ЛПУ (данные должны соответствовать данным указанным в направительном бланке). До приезда курьера пробирку хранить в штативе в вертикальном положении при температуре +2+8 С. Передать в лабораторию в день взятия материала.

Перед взятием материала необходимо исключить повышенные психо-эмоциональные и физические нагрузки.

ВИТАМИН В12 (цианкобаламин)

Транспортировка и хранение должны осуществляться с учетом защиты от воздействия света!

Накануне исследования исключить алкоголь, физические нагрузки. Взятие крови на исследование должно проводится строго в утренние часы с 8.00 до 10.00). Референсные значения данного показателя рассчитаны именно на это время. Кровь забирают натощак в вакуумную охлажденную пробирку с активатором формирования сгустка (желтая крышка). После получения крови пробирку плавно несколько раз переворачивают на 180 гр. (не встряхивать!), ОСТОРОЖНО ПОМЕСТИТЬ ПРОБИРКУ В ЕМКОСТЬ СО ЛЬДОМ, не допуская соприкосновения льда со стенками пробирки (обернуть салфеткой)!.

При возможности отделить сыворотку от форменных элементов крови как можно быстрее. Для этого необходимо пробу центрифугировать (желательно в рефрижераторной центрифуге при 4 С) (10 мин, ОЦС=1500g), отобрать сыворотку в пластиковую пробирку без всяких добавок (гель, антикоагулянт и т.п.), пробу заморозить при -20 С.

Нельзя допускать размораживание пробы по время хранения и транспортировки!

PRISCA –ПРОГРАММА ПРЕНАТАЛЬНОГО СКРИНИНГА ТРИСОМИЙ

Внимание! Для правильного расчета и корректировки факторов риска, врачом обязательно должны быть заполнены ВСЕ графы в анкете-направлении. Ультразвуковое исследование должно быть проведено не ранее, чем за 3 дня до взятия крови беременной!

Кровь берется строго натощак в вакуумную пробирку с активатором формирования сгустка (желтая крышка). После получения крови пробирку плавно несколько раз переворачивают на 180 гр. (не встряхивать!). Пробирку промаркировать: Ф.И.О. пациента, номер образца, номер ЛПУ (данные должны соответствовать данным указанным в направительном бланке). До приезда курьера пробирку хранить при температуре +2+8 С.

источник

Вакуумная пробирка — основной инструмент для забора венозной крови. Она может быть наполнена реагентом, который позволит провести быстрый и точный анализ. В таком случае каждая пробирка имеет колпачок своего цвета. Цветное кодирование соответствует международному стандарту ISO 6710.

Вакуумные пробирки для получения сыворотки (биохимия, серология). Цвет крышечки – коричневый или красный

Сыворотка крови – жидкая часть крови лишенная форменных элементов и некоторых белков (фибрин и др.) в отличие от плазмы, в которой сохраняются все элементы жидкой части крови кроме форменных элементов.

Получение сыворотки крови является результатом двухступенчатого биохимического процесса: свертывания (коагуляции) крови и ретракции (уплотнения) сгустка. Для запуска коагуляционного каскада необходимо наличие внешнего активатора, каковым может служить кремния диоксид, поэтому процесс свертывания крови быстрее происходит в стеклянных пробирках, так как кремния диоксид является базовым материалом стекла или в пластиковых пробирках с активатором свертывания. Активатор свертывания (clot activator) выполнен в виде напыления на внутренней стенке пробирки.
После образования сгустка начинается этап его уплотнения и выделения сыворотки. На практике ретракция сгустка ускоряется центрифугированием пробирок с кровью.
Для получения максимально чистой сыворотки рекомендуется соблюдение трех условий:
1. После забора крови в пробирку в соответствии с инструкцией необходимо осторожно однократно перевернуть пробирку для более полного контакта крови с активатором свертывания;
2. Дождаться завершения процесса свертывания крови в течение 20-30 минут при комнатной температуре и вертикальном положении пробирки;
3. Центрифугировать пробирку со свернувшейся кровью не менее 10 минут с ускорением 1500 G (примерно 3000 об/мин) для максимального выдавливания сыворотки из сгустка. При необходимости допускается центрифугирование с ускорением 4000G c крышечкой и до 12000G без крышечки.
После центрифугирования и полной ретракции сгустка сыворотка располагается над сгустком, но в контакте с ним. Сохраняется опасность загрязнения сыворотки составляющими сгустка при неосторожном обращении с пробиркой (встряхивание, опрокидывание и пр.). Для лучшего очищения сыворотки и более полного разграничения сыворотки и сгустка применяются специальные пробирки, содержащие биологически инертный олефиновый гель. Последний представляет собой тиксотропный кополимер, который тяжелее сыворотки, но легче кровяного сгустка, поэтому после центрифугирования гель в виде тонкой полоски занимает промежуточное положение и служит разделительным барьером. Стабильность такого барьера гарантирована в течение 5-7 дней при хранении пробирки с кровью при комнатной температуре.
Оптимальные сроки сохранности образца крови в данных пробирках составляет при комнатной температуре 6 часов, при хранении в холодильнике (+4ºС) – 24 часа. Повторное центрифугирование пробирок, особенно с гелем, не допускается.
Полученная сыворотка крови применяется для очень широкого спектра лабораторных биохимических, ИФА и иммунологических исследований:
белковый состав, ферменты, гормоны, онкомаркеры, ВИЧ-инфицирование, гепатиты и пр.

Вакуумные пробирки для получения цельной крови или плазмы

Не все анализы в клинике делаются из сыворотки крови. Для многих видов исследований необходима цельная кровь, содержащая форменные элементы, или плазма, освобожденная от клеток крови центрифугированием. С целью получения несвернувшейся крови разработаны пробирки с определенными добавками – антикоагулянтами. На практике используют два вида антикоагулянтов:
ингибиторы (вещества, вызывающие торможение) тромбина. Тромбин является ключевым игроком в коагуляционном каскаде. Он принимает участие в формировании ряда факторов свертывания крови и способствует трансформации фибриногена в фибрин. Добавление биохимических ингибиторов тромбина эффективно активирует антикоагуляционные свойства крови.
связывание (удаление) ионов Ca2+. При прочих равных условиях свертывание крови происходит при активном участии ионов Ca2+. Удаление их является эффективным механизмом сохранения крови в жидком состоянии.

Читайте также:  Увеличение plt в анализе крови

Гепарин. Цвет крышечки – зеленый, светло-зеленый

Гепарин — кислый мукополисахарид с молекулярной массой 4000-40000 – является натуральным антикоагулянтом, присутствующем в любом здоровом организме. Гепарин активирует создание комплексных соединений между антитромбином III и такими факторами свертывания крови, как тромбин, факторы XIIa, XIa, Xa, IXa и VIIa. В таком комплексе факторы свертывания инактивируются необратимо.
Для целей получения плазмы крови в пробирки добавляют литиевую либо натриевую соль гепарина в пропорции к забираемой в пробирку кровью 15-20 МЕ/1 мл, что служит гарантией полной инактивации свертывания крови и не искажает исследуемые параметры. Эритроциты сохраняются в образце крови до 8 часов. Нельзя использовать для проведения анализов образец крови, хранившийся более 48 часов даже в условиях холодильника (+4ºС).
Для получения качественного результата анализа необходимо:
Немедленно после взятия крови осторожно перевернуть пробирку 5-7 раз для лучшего перемешивания крови и гепарина,
Плазма отделяется после центрифугирования. Нормальные скорости центрифугирования – 1000-1500G (2000-3000 об/мин). При необходимости допускается центрифугирование с ускорением 4000G c крышечкой и до 12000G без крышечки.
В клинике пробирки с гепарином применяются, в основном для проведения исследования:
электролитного состава крови,
газового состава крови,
содержания алкоголя в крови.
Не рекомендуется использовать гепарин для: морфологических исследований, так как кислотный характер гепарина способствует обесцвечиванию мазка крови, придавая ему голубоватый оттенок, подсчета лейкоцитов и тромбоцитов, поскольку гепарин стимулирует агрегацию этих клеток крови.
исследований по методике полимеразной цепной реакции (ПЦР).

Для более чистого разграничения плазмы крови и сгустка применяются специальные пробирки, содержащие кроме гепарина инертный олефиновый гель. Последний представляет собой тиксотропный кополимер, который тяжелее плазмы, но легче форменных клеток крови, поэтому после центрифугирования гель в виде тонкой полоски занимает промежуточное положение и служит разделительным барьером.

Фторид натрия/ЭДТА калия. Цвет крышечки – серый

Добавление фторида натрия и ЭДТА калия в пробирку позволяет предотвратить разрушение глюкозы крови (процесс, называемый гликолизом) и сохранить ее уровень во взятом образце крови.
Фторид натрия и оксалат калия выступают в качестве антикоагулянтов, связывая ионы Са2+ и, кроме того, фторид натрия стабилизирует уровень глюкозы.
Глюкоза разрушается до пирувата и лактата при последовательном осуществлении различных энзиматических реакций. Фторид натрия ингибирует некоторые ферментативные реакции, включая превращение фосфоглицерата в фосфоенолпируватацид, и предотвращает гликолиз.
Для получения качественного результата анализа необходимо:
немедленно после взятия крови осторожно перевернуть пробирку 5-7 раз для лучшего перемешивания крови и антикоагулянта
плазма отделяется после центрифугирования. Нормальные скорости центрифугирования – 1000-1500G (2000-3000 об/мин).
Пробирки с добавлением фторида натрия и оксалата калия используют для проведения определения уровня сахара (глюкозы) в крови. Соотношение компонентов 1/1, общее количество добавляемых реагентов – 4,5 мг/1 мл забираемой в пробирку крови.

Замечания: Фторид блокирует активность уреазы и некоторых других ферментов. Образцы крови из данных пробирок нельзя использовать для прямого определения энзимов. Фторид натрия и ЭДТА калия связывают ион Са2+, заменяя в крови 1 ион кальция на 2 иона натрия или калия. Следствием этого является повышение напряжения ионов в межклеточной жидкости и выкачивание воды из внутриклеточного пространства в межклеточное, сморщивание клеток крови с умеренным «выдавливанием» из эритроцитов гемоглобина. Поэтому видимый гемолиз свойственен образцам крови с данной добавкой.
Глюкоза превращается в лактат в результате комплекса реакций, включающего в себя различные этапы. Фторид ингибирует один их последних этапов разрушения глюкозы, начальные этапы с участием гексокиназы и фосфофруктокиназы блокируются менее эффективно, поэтому можно наблюдать снижение содержания глюкозы в образце крови на 6-7% от первоначального.
После первоначального незначительного снижения уровня глюкозы ее количество остается постоянным при хранении крови в пробирке в течение 8-10 часов при температуре до 25ºС и в течение 2-3 дней в холодильнике (+4ºС).

ЭДТА-К2. Цвет крышечки — сиреневый

Этилендиаминтетраацетат (ЭДТА) является предпочтительным антикоагулянтом для гематологических исследований. ЭДТА и его щелочные соли способны создавать хелатные соединения с ионами кальция с образованием растворимых высокостабильных комплексов. Наиболее эффективная концентрация ЭДТА – 1,2 мг/мл крови. Во всем мире используют три варианта солей ЭДТА: ЭДТА-К3, ЭДТА-К2 и ЭДТА-Na2. Наиболее предпочтительной и рекомендуемой Международной Комиссией по Стандартизации в Гематологии является двукалиевая соль ЭДТА:

ЭДТА-К3 показывает меньшую способность поддержания крови в жидком состоянии, также ЭДТА-К3 влияет на подсчет лейкоцитов, занижая их количество.
различия между ЭДТА-К2 и ЭДТА-Na2 в клиническом плане незначительны и ими можно пренебречь, но ЭДТА-Na2 хуже растворим.

Для получения качественного результата анализа необходимо:
немедленно после взятия крови осторожно перевернуть пробирку 5-7 раз для лучшего перемешивания крови и антикоагулянта;
плазма отделяется после центрифугирования. Нормальные скорости центрифугирования – 1000-1500G (2000-3000 об/мин). При необходимости допускается центрифугирование с ускорением 4000G c крышечкой и до 12000G без крышечки.

Наиболее широко используются пробирки, содержащие 1,95 мг ЭДТА/1мл крови. Они нашли свое применение в таких областях лабораторной практики, как:
гематологические исследования – подсчет клеток крови, определение СОЭ и пр.
ПЦР-исследования (качественные и количественные методики).

Пробирки с образцами крови можно хранить до 6-10 часов при 4ºС, хранение свыше 24 часов не рекомендуется из-за снижения числа эритроцитов и лейкоцитов.

Цитрат натрия. Цвет крышечки — голубой

Цитрат натрия является антикоагулянтом для сбора венозной крови с це6лью проведения исследований коагуляционных свойств крови.

Процесс свертывания крови представляет собой последовательность сложных реакций, в которых результатом первых реакций (с участием активных ферментов) является активация следующих, первоначально неактивных энзимов. Последним активным ферментом в этой цепочке присутствует тромбин, который осуществляет превращение фибриногена в фибрин. Нити фибрина опутывают клетки крови и окончательно формируют кровяной сгусток. Крайне важную роль на этом этапе играют ионы Са2+. Антикоагуляционные свойства цитрата проявляются в формировании комплекса с ионами Са2+ и эффективном удалении их из крови.

Общее исследование свертывания крови определяется временем, необходимым для последовательной активации ферментов, участвующих в коагуляционном процессе. Проводится определение времени активации и количественное измерение различных составляющих коагуляционного каскада, для чего создаются так называемые «обходные пути» добавлением некоторых промежуточных продуктов свертывания.

Наиболее часто используются пробирки с 3,8% или 3,2% раствором цитрата натрия (0,129 моль/л), соотношение цитрата к количеству забираемой крови 1/9.

Для максимально качественного проведения коагулологических исследований рекомендуется соблюдение определенных правил:
нельзя использовать пробирку для взятия крови на коагуляционные тесты первой, сразу после венепункции, так как на результаты может повлиять выделяющийся при пункции тканевой тромбопластин;
венозный жгут во время взятия крови в пробирку должен быть снят;
немедленно после взятия крови пробирку аккуратно переворачивают 5-6 раз для лучшего перемешивания крови и антикоагулянта;
сразу после этого надо проверить количество взятой крови: ее верхняя граница должна быть на уровне голубой полоски на этикетке.

Оптимальными условиями хранения пробирки с образцом крови является температура 20-24ºС и исследование коагуляционных свойств и факторов свертывания крови должно быть проведено в течение 2-х часов с момента взятия крови

источник

Исследования крови

  1. Общий анализ крови (базовый, развернутый, развернутый с ретикулоцитарным и тромбоцитарным профилями)

Кровь сдается в утренние часы натощак (или в дневные/вечерние часы, спустя 4-5 часов после последнего приема пищи).

Взятие материала. Материалом для исследования является венозная кровь, которая берется из локтевой вены. Для общего анализа кровь забирается в вакуумную пробирку с фиолетовой крышкой (с ЭДТА). Для точного соотношения кровь-антикоагулянт необходимо набрать полностью всю пробирку до отметки или указанного объема крови! Осторожно перемешать 5-6 раз.

  1. Биохимический анализ крови (базовый, развернутый, профильные и отдельные показатели биохимии)

Исследование проводится утром, натощак. С последнего приема пищи должно пройти не менее 8 часов (желательно, не менее 12 часов). При исследовании глюкозы за день исключить из рациона сладкое. За 1 день до исследования не злоупотреблять жирной пищей

Взятие материала. Материалом для исследования является венозная кровь, которая берется из локтевой вены. Для биохимических исследований кровь берется в вакуумную пробирку с красной крышкой без наполнителя. Не перемешивать!

  1. Исследования на гормоны

Исследования на гормоны в основном проводится натощак. С последнего приема пищи должно пройти не менее 8 часов (желательно, не менее 12 часов).

Взятие материала. Материалом для исследования является венозная кровь, которая берется из локтевой вены. Для исследований на гормоны кровь берется в вакуумную пробирку с желтой крышкой без наполнителя. Не перемешивать!

  1. Аллергологические исследования

Аллергологические исследования проводятся натощак. С последнего приема пищи должно пройти не менее 8 часов (желательно, не менее 12 часов).

Взятие материала. Материалом для исследования является венозная кровь, которая берется из локтевой вены. Для исследований на аллергены кровь берется в вакуумную пробирку с желтой крышкой без наполнителя. Не перемешивать!

  1. Иммунологические исследования

А) Иммунограмма, чувствительность к иммуномодуляторам

Кровь сдается в утренние часы натощак (или в дневные/вечерние часы, спустя 4-5 часов после последнего приема пищи).

Взятие материала. Материалом для исследования является венозная кровь, которая берется из локтевой вены. Кровь берется в 3 пробирки – в пробирку с зеленой крышкой (гепарин), осторожно перемешать 5-6 раз; в пробирку с сиреневой крышкой (ЭДТА), осторожно перемешать 5-6 раз; в пробирку с красной крышкой без наполнителя, не перемешивать!

Б) Интерфероновый статус, суммарные иммуноглобулины А,М,G, компоненты комплемента С3, С4

Исследование проводится утром, натощак. С последнего приема пищи должно пройти не менее 8 часов.

Взятие материала. Материалом для исследования является венозная кровь, которая берется из локтевой вены. Кровь на эти исследования берется в пробирку с красной крышкой без наполнителя, не перемешивать!

  1. Исследования инфекционных заболеваний методом ИФА

Кровь берется в утреннее, дневное время спустя 4 – 5 ч. после последнего приема пищи.

Взятие материала. Материалом для исследования является венозная кровь, которая берется из локтевой вены. Кровь на эти исследования берется в пробирку с сиреневой крышкой. Осторожно перемешать 5-6 раз.

  1. Лекарственный мониторинг

А) Такролимус, сиролимус, циклоспорин

Время взятия пробы крови должно соответствовать рекомендованному врачом промежутку времени после приёма препарата. Если нет других указаний врача, исследование проводят на спаде концентрации через 12 часов после приёма препарата (перед очередным приёмом).

Взятие материала. Материалом для исследования является венозная кровь, которая берется из локтевой вены. Кровь на эти исследования берется в пробирку с сиреневой крышкой. Осторожно перемешать 5-6 раз.

Б) Дигоксин, карбамазепин, фенобарбитал, гентамицин, ванкомицин, салицилаты

Время взятия пробы крови должно соответствовать рекомендованному врачом промежутку времени после приёма препарата. Если нет других указаний врача, исследование проводят на спаде концентрации через 12 часов после приёма препарата (перед очередным приёмом).

Взятие материала. Материалом для исследования является венозная кровь, которая берется из локтевой вены. Кровь на эти исследования берется в пробирку с красной крышкой без наполнителя, не перемешивать!

  1. Маркеры фиброза печени

Прямой фибротест

Исследование проводится утром, натощак. С последнего приема пищи должно пройти не менее 8 часов. Накануне исследования не следует злоупотреблять жирной пищей.

Взятие материала. Материалом для исследования является венозная кровь, которая берется из локтевой вены. Кровь на эти исследования берется в пробирку с красной крышкой без наполнителя, не перемешивать!

  1. Маркеры сепсиса

Прокальцитонин

Поскольку анализ на прокальцитонин проводится у пациентов в критическом состоянии, специальной подготовки к исследованию не требуется. При возможности взятие крови проводится натощак, в утренние часы.

Взятие материала. Материалом для исследования является венозная кровь, которая берется из локтевой вены. Кровь на эти исследования берется в пробирку с сиреневой крышкой (ЭДТА), осторожно перемешать 5-6 раз!

Б) ЛБП (Липополисахаридсвязывающий протеин)

Поскольку анализ на ЛБП проводится у пациентов в критическом состоянии, специальной подготовки к исследованию не требуется. При возможности взятие крови проводится натощак, в утренние часы.

Взятие материала. Материалом для исследования является венозная кровь, которая берется из локтевой вены. Кровь на эти исследования берется в пробирку с красной крышкой без наполнителя или пробирку с желтой крышкой с разделительным гелем, не перемешивать!

  1. Аутоиммунные маркеры

А) Антитела к одно- и двуцепочечной ДНК, Антитела к тканевой трансглутаминазе, Анитела к бета-2-гликопротеину

Исследование проводится утром, натощак. С последнего приема пищи должно пройти не менее 8 часов

Взятие материала. Материалом для исследования является венозная кровь, которая берется из локтевой вены. Кровь на эти исследования берется в пробирку с сиреневой крышкой (ЭДТА), осторожно перемешать 5-6 раз!

Б)Антинуклеарные антитела(АNA), Антимитохондриальные антитела (АМА), Антиспермальные антитела (АСА), Анти-ЦЦП, Антитела к микросомам печени и почек типа 1(LKM1) и цитозольный антиген печени типа 1( LC1)

Исследование проводится утром, натощак. С последнего приема пищи должно пройти не менее 8 часов

Взятие материала. Материалом для исследования является венозная кровь, которая берется из локтевой вены. Кровь на эти исследования берется в пробирку с красной крышкой без наполнителя или пробирку с желтой крышкой с разделительным гелем, не перемешивать!

Исследование проводится утром, натощак. С последнего приема пищи должно пройти не менее 8 часов

Читайте также:  Нет крови при взятии анализа

Взятие материала. Материалом для исследования является венозная кровь, которая берется из локтевой вены. Кровь на эти исследования берется в пробирку с красной крышкой без наполнителя, не перемешивать!

  1. Исследования гемостаза

Исследование проводится утром, натощак. С последнего приема пищи должно пройти не менее 8 часов

Взятие материала. Материалом для исследования является венозная кровь, которая берется из локтевой вены. Кровь на эти исследования берется в пробирку с голубой крышкой (цитрат натрия), осторожно перемешать 3-4 раза!

Исследования мочи

  1. Общий анализ мочи и анализ мочи по Нечипоренко

Накануне сдачи анализа рекомендуется пить обычное количество жидкости, не употреблять овощи и фрукты, способные изменить цвет мочи (свекла, морковь и пр.), не принимать диуретики. Перед сбором мочи необходимо провести тщательный туалет половых органов. Женщинам не рекомендуется сдавать во время менструации. Сбор мочи необходимо проводить обязательно до эндоуретральных процедур. Несоблюдение данных правил может привести к изменению результатов анализа.

Взятие материала. После гигиены наружных половых органов для анализа отбирают порцию утренней мочи в количестве 50 -100 мл в специальный контейнер для мочи с четко написанным направлением. Мочу необходимо доставить в лабораторию в течение 1-3 часов. Длительное хранение мочи до исследования приводит к изменению её физико-химических свойств.

Исследования спермы

Спермограмма

Требуется полное половое воздержание в течение 3-5 дней перед исследованием, но не более 7 дней. В направлении необходимо указать принимаемые в данный момент медикаментозные препараты (лекарства). Нельзя собирать материал из презерватива!

Взятие материала. Сбор материала лучше проводить в утренние часы. Необходимо отметить на направлении время сбора материала, с этого времени и до момента доставки в лабораторию должно пройти не более 30-40 минут. Материал доставляется в стерильных контейнерах, при температуре тела (под мышкой, во внутреннем кармане пиджака, брюк).

Микроскопические исследования

Микроскопия урогенитальных мазков на микрофлору у мужчин

В течение 3 часов до исследования воздержаться от мочеиспусканий, не проводить туалет наружных половых органов. Для микроскопии урогенитальных мазков на микрофлору используется предметное стекло.

Взятие материала. биоматериалом служит урогенитальный мазок, который берется следующим образом:

  1. Попросить пациента оголить головку полового члена путем сдвигания крайней плоти.
  2. Обработать головку полового члена в области наружного отверстия уретры тампоном, смоченным стерильным физиологическим раствором.
  3. При наличии свободно стекающих из уретры выделений удалить их сухим тампоном.
  4. Ввести зонд в уретру на глубину 3–4 см.
  5. Несколькими осторожными вращательными движениями в течении 3–5 секунд произвести забор биоматериала.
  6. Вынуть зонд из уретры.
  7. Биоматериал, взятый с помощью зонда, нанести на предметное стекло равномерно.
  8. Высушить предметное стекло на воздухе при комнатной температуре в течение 30 минут.
  9. Стекло поместить в пластиковый контейнер и доставить в лабораторию.

Микроскопия урогенитальных мазков на микрофлору у женщин

Накануне обследования не следует проводить спринцевание, туалет наружных половых органов с применением средств интимной гигиены. Исследование следует проводить перед менструацией или через 1–2 дня после ее окончания. Для микроскопии урогенитальных мазков на микрофлору используется предметное стекло.

Взятие материала. биоматериалом служит урогенитальный мазок с трех участков, который собирается следующим образом:

  1. Забор биоматериала производится с трех участков: наружное отверстие цервикального канала (C), задний свод влагалища (V), наружное отверстие мочеиспускательного канала (U). Подписать предметное стекло в направлении слева направо водостойким маркером.
  2. Ввести гинекологическое зеркало (зеркало Куско).
  3. Установить зеркало в положение, при котором наиболее четко возможно осмотреть шейку матки, задний свод влагалища (обнажить шейку в зеркалах).
  4. Избыток слизи и обильных выделений удалить с помощью пинцета стерильным тампоном.
  5. Ввести урогенитальный зонд в цервикальный канал на глубину 1–2 см, собрать материал осторожными вращательными движениями в течение 3–5 секунд.
  6. Нанести мазок в центре предметного стекла равномерно.
  7. Провести урогенитальным зондом по поверхности слизистой влагалища в области заднего свода
  8. Нанести мазок в центре предметного стекла равномерно.
  9. Извлечь гинекологическое зеркало.
  10. Ввести урогенитальный зонд в уретру на глубину 1–1.5 см, аккуратно, не поранив слизистую, несколькими вращательными движениями произвести соскоб эпителиальных клеток.
  11. Нанести мазок на предметное стекло справа равномерно.
  12. Высушить предметное стекло на воздухе при комнатной температуре в течение 30 минут.
  13. Стекло поместить в пластиковый контейнер и доставить в лабораторию.

ПЦР-исследования

ПЦР-исследования крови

Кровь берется в утреннее, дневное время спустя 4 – 5 ч. после последнего приема пищи.

Взятие материала. Материалом для исследования является венозная кровь, которая берется из локтевой вены. Кровь на эти исследования берется в пробирку с сиреневой крышкой (ЭДТА). Осторожно перемешать 5-6 раз.

ПЦР-исследования слюны

Непосредственно перед сбором слюны необходимо исключить использование зубной пасты и удалить зубные протезы.

Взятие материала. Слюну выплевывают в стерильный контейнер с 1 мл. физ.раствора и доставляют в лабораторию.

ПЦР-исследования мочи

Специальной подготовки для ПЦР-исследований в моче не требуется.

Взятие материала. Биоматериалом служит разовая порция мочи, котрая собирается в стерильный контейнер. Минимальный объем мочи, необходимый для проведения анализа, составляет 20 мл. Мочу необходимо доставить в лабораторию как можно быстрее, так как длительное хранение мочи при комнатной температуре до исследования приводит к изменению не только ее физических свойств и к разрушению клеток, но и к размножению бактерий.

ПЦР-исследования в урогенитальном мазке у мужчин

В течение 3 часов до исследования воздержаться от мочеиспусканий, не проводить туалет наружных половых органов. Для ПЦР — исследований используется пробирка с транспортной средой (физ.раствор, 2-3мл)

Взятие материала. Взятие материала: биоматериалом служит урогенитальный мазок, который берется следующим образом:

  1. Попросить пациента оголить головку полового члена путем сдвигания крайней плоти.
  2. Обработать головку полового члена в области наружного отверстия уретры тампоном, смоченным стерильным физиологическим раствором.
  3. При наличии свободно стекающих из уретры выделений удалить их сухим тампоном.
  4. Ввести зонд в уретру на глубину 3–4 см.
  5. Несколькими осторожными вращательными движениями в течении 3–5 секунд произвести забор биоматериала.
  6. Вынуть зонд из уретры.
  7. Перенести зонд в пробирку со средой.
  8. Погрузив рабочую часть зонда, вращать зонд в течение 10 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
  9. Вынуть зонд из раствора, отжать избыток жидкости, прижимая к стенке пробирки, удалить зонд.
  10. Закрыть пробирку и доставить в лабораторию.

ПЦР-исследования в урогенитальном мазке у женщин

Накануне обследования не следует проводить спринцевание, туалет наружных половых органов с применением средств интимной гигиены. Исследование следует проводить перед менструацией или через 1–2 дня после ее окончания. Для ПЦР — исследований используется пробирка с транспортной средой (физ.раствор, 2-3мл)

Взятие материала. биоматериалом служит урогенитальный мазок с трех участков, который собирается следующим образом:

  1. Ввести гинекологическое зеркало (зеркало Куско).
  2. Установить зеркало в положение, при котором наиболее четко возможно осмотреть шейку матки, задний свод влагалища (обнажить шейку в зеркалах).
  3. Избыток слизи и обильных выделений удалить с помощью пинцета стерильным тампоном.
  4. Ввести урогенитальный зонд в цервикальный канал на глубину 1–2 см, собрать материал осторожными вращательными движениями в течение 3–5 секунд.
  5. Вынуть зонд и перенести его в пробирку со средой.
  6. Погрузив рабочую часть зонда, вращать зонд в течение 10 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
  7. Вынуть зонд из раствора, отжать избыток жидкости, прижимая к стенке пробирки, удалить зонд.
  8. Провести урогенитальным зондом по поверхности слизистой влагалища в области заднего свода.
  9. Перенести зонд в ту же пробирку со средой.
  10. Погрузив рабочую часть зонда, вращать зонд в течение 10 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
  11. Вынуть зонд из раствора, отжать избыток жидкости, прижимая к стенке пробирки, удалить зонд.
  12. Извлечь гинекологическое зеркало.
  13. Ввести урогенитальный зонд в уретру на глубину 1–1.5 см, аккуратно, не поранив слизистую, несколькими вращательными движениями произвести соскоб эпителиальных клеток.
  14. Перенести зонд в ту же пробирку со средой.
  15. Погрузив рабочую часть зонда, вращать зонд в течение 10 секунд, избегая разбрызгивания раствора.
  16. Вынуть зонд из раствора, отжать избыток жидкости, прижимая к стенке пробирки, удалить зонд.
  17. Закрыть пробирку и доставить в лабораторию.

источник

Клинический анализ крови включает определение :

— подсчет лейкоцитарной формулы

— определение скорости оседания эритроцитов

Лабораторные методы исследования крови

Обеспечение высокого качества гематологических исследований возможно при стандартизации преаналитического и аналитического этапов работы.

Преаналитические ошибки 68,2%

Постаналитические ошибки 18,5%

Факторы влияющие на показатели крови

— физическая и эмоциональная нагрузка

— сезонные, климатические, метеорологические условия

— активность пациента и положение его тела в момент взятия крови.

Показатели гемоглобина и гематокрита у больных в положении лежа снижены примерно на 6%. Выраженная диарея и рвота могут приводить к значительной дегидратации и гемоконцентрации.

Влияние суточных биоритмов на показатели крови

— костный мозг наиболее активен утром

— селезенка и лимфоузлы около 17 – 20 часов

— максимум гемоглобина в крови наблюдается с 11 до 13 часов, а минимум с 16 до 18 часов;

— эозинофилы наиболее низкие утром между 9 и 11 часами, пик эозинофилов наступает к 3 часам утра.

Исследования крови необходимо производить (кроме экстренных случаев) в одно и тоже время для получения сопоставимых результатов

Взятие и подготовка материала для исследования:

Взятие крови

— На точность и правильность результатов оказывают влияние техника взятия крови, используемые при этом инструменты (иглы, скарификаторы и др.), пробирки, в которые осуществляется взятие, а в последующем происходит хранение и транспортировка.

— Стандартизация преаналитического этапа за счет использования стандартизированных коммерческих расходных материалов для взятия, хранения и транспортировки биопроб, стандартных реактивов и диагностических систем позволяют существенно повысить достоверность и точность исследования.

Кровь для общего клинического анализа берут:

— у новорожденных — из пятки

Исследование крови рекомендуется проводить утром натощак, до физической нагрузки и различных диагностических процедур, приема лекарственных препаратов, особенно вводимых парентерально.

— Оптимальным способом аспирации крови являются вакутейнеры (вакуумные системы взятия крови — Terumo, B&D):

— содержат определенное строго дозированное количество антикоагулянта и обеспечивают стандартные условия аспирации всего объема крови

— быстрое и качественное взятие крови пациента

— сокращение времени взятия крови на 30 – 50%

— кровь в пробирке не подвергается гемолизу

— одной венопункции достаточно для отбора крови в несколько пробирок

— отсутствует непосредственный контакт медицинской сестры или лаборанта с кровью больного, что обеспечивает профилактику вирусных инфекций, передающихся парентеральным путем.

Взятие крови шприцом без антикоагулянта с последующим переливанием в пробирку недопустимо:

— контакт крови со стенками шприца ведет к образованию агрегатов тромбоцитов

— трудно соблюсти точное соотношение кровь/антикоагулянт

— давление в игле увеличивает вероятность гемолиза и разбрызгивания крови

— нарушение целостности и стерильности пробы

— — вероятность инфицирования персонала

Для гематологических исследований капиллярную кровь рекомендуется брать в следующих случаях:

— мелкие или труднодоступные вены

— склонность к венозному тромбозу

— После прокола пальца несколько капель крови (не менее 3-4) спускают на индивидуальное предметное (часовое) стекло или гнездо пластикового планшета, перемешивают и используют для работы.

— Кровь набирают индивидуальным, стерильным капилляром Панченко, предварительно смоченным цитратом натрия.

— После прокола кожи пальца, 6-8 капель крови спускают в пластиковую пробирку с антикоагулянтом К2ЭДТА или К3ЭДТА (трилон Б) из расчета 1,5-2,2 мг на 1 мл крови, либо в
специальные пластиковые пробирки одноразового пользования, обработанных К2ЭДТА (фир­ма «De-ta-ab», «Sarstedt» , «Becton Dickinson» и др.). Сразу же после взятия пробу необходимо тщательно перемешать, перевернув пробирку крышкой вниз не менее 10 раз.

Антикоагулянт:

— К2ЭДТА или К3ЭДТА (дву- или трикалиевый этилендиаминтетраацетат или трилон Б)

ЭДТА предпочтительный антикоагулянт при подсчете форменных элементов крови с использованием автоматических гематологических анализаторов. Концентрация ЭДТА во взятой крови должна быть постоянной и составлять 1,5 — 2,2 мг/мл крови (например, для получения соотношения 1,5 мг/мл в пробирку, рассчитанную на 2 мл крови, наливают 0,04 мл 7,5% раствора К2ЭДТА или К3ЭДТА). Недостаток антикоагулянта приводит к микросвертыванию крови и образованию сгустка, избыток — является причиной роста осмотического давления крови и сморщиваня клеток. У некоторых пациентов может наблюдаться небольшая спонтанная агрегация тромбоцитов или реже, так называемая, ЭДТА-зависимая псевдотромбоцитопения (иммунного характера). Использование Nа2ЭДТА не рекомендуется вследствие его плохой растворимости в крови.

Гепарин лучший антикоагулянт для определения осмотической резистентности эритроцитов и функциональных исследований лейкоцитов, включая ряд тестов с иммунологическими маркерами. Особенностью действия этого антикоагулянта является способность максимально предотвращать гемолиз. Мазки, приготовленные из гепаринизированной крови и окрашенные по Романовскому, имеют голубоватый фон.

Цитрат натрия антикоагулянт выбора при исследованиях свертывающей системы крови и функции тромбоцитов.

Применение в качестве антикоагулянтов гепарина или цитрата натрия сопровождается изменениями в структуре клеток и поэтому не рекомендуется для исследования морфологии клеток крови, кроме того, гепарин не предотвращает агрегацию клеток, поэтому его нецелесообразно использовать при подсчете лейкоцитов и тромбоцитов.

Доставка, хранение и подготовка проб к исследованию:

— Исследование крови необходимо проводить либо непосредственно после взятия (исключается возможность спонтанной агрегации тромбоцитов), либо спустя 25 минут (время, необходимое для адаптации тромбоцитов к антикоагулянту) и не позднее 6 часов после взятия крови.

— При необходимости проведения отсроченного анализа (транспортировка на отдаленные расстояния, техническая неполадка прибора и т. д.), пробы крови хранят в холодильнике (4° — 8° С) и исследуют в течение 24 часов. Кровь нельзя замораживать.

— Исследование крови на приборе проводится при комнатной температуре. Кровь, хранившуюся в холодильнике, необходимо согреть до комнатной температуры, так как при низкой температуре увеличивается вязкость крови, и форменные элементы имеют тенденцию к склеиванию, что в свою очередь, приводит к нарушению перемешивания и неполному лизису. Исследование холодной крови может быть причиной флагирования при трехчленной дифференцировке лейкоцитов вследствие сжатия лейкоцитарной гистограммы.

Читайте также:  Покажет анализ крови показать золотистый стафилококк

— При выполнении гематологических исследований на значительном удалении от места взятия крови неизбежно возникают проблемы, связанные с неблагоприятными условиями транспортировки. Воздействие механических факторов (тряска, вибрация, перемешивание и т.д.), нарушения температурного режима, вероятность пролива и загрязнения проб могут оказывать влияние на качество анализов.

— Для устранения этих причин при перевозках пробирок с кровью рекомендуется использовать герметично закрытые пластиковые пробирки специальные транспортные изотермические контейнеры.

источник

В данном посте речь пойдет о двух самых распространенных анализах крови — биохимическом и общем клиническом.

Для клинического анализа:
— венозная кровь
— пробирка с антикоагулянтом (К2 или К3 ЭДТА)
— после взятия крови пробирку плавно перемешать
— перед отправкой в лабораторию убедиться, что кровь не свернулась
— может храниться до 6-ти часов при комнатной температуре, больший срок – в холодильнике (на дверце)
— при транспортировке – не трясти

Для биохимического анализа:
— венозная кровь
— берется натощак (10-12-часовая голодная диета)!
— пробирку не трясти и не вспенивать
— после взятия крови – оставить пробирку на 10-15 мин при комнатной температуре (пока кровь не свернется)
— после образования сгустка хранить в холодильнике
— кровь для определения глюкозы – или в специальную пробирку, или нативно (т.е. глюкометром)

Еще раз — никаких «у нас кровь в шприц брали». Мы все-таки в двадцать первом веке живем и найти клинику, где берут кровь в пробирки совсем несложно. На всякий пожарный: на пробирке под биохимию написано «serum» (сыворотка), а на пробирке под клинику обозначен антикоагулянт (см.выше). В «клинической» пробирке кровь не должна свернутся. Если свернулась — можете выкидывать. В «биохимической» — наоборот — будет сгусток крови и мутная жидкость (та самая сыворотка).

Про голодную диету перед забором крови — очень важный момент. Это, наверное, единственное, что целиком и полностью зависит от вас. Что бы вам не говорили в клинике — «фигня это все», а «давайте возьмем и глянем» и т.д. — не поддавайтесь на провокации. Это ваше животное и ваши деньги.
Зачем нужна диета:
— на «сытый» желудок некоторые показатели повышены в норме (например, мочевина и СОЭ)
— в крови у сытого животного — опять-таки в норме — болтаются всяческие метаболиты; это делает сыворотку крови мутной, что, в свою очередь, искажает очень многие показатели.

2. Влияние различных факторов на результат анализа

Да все влияет. Погода, особенно жаркая, различные препараты — в особенности, глюкокортикоиды, всякие аскорбинки, нестероидные противовоспалительные средства и т.д. Посему, постарайтесь донести до вашего врача что и как долго вы принимали.

И про стресс — отдельно. Речь идет не о вашем стрессе, дамы — истерите, сколько хотите, а вот если вашего кота сначала полтора часа везли по городу в душной переноске, потом полчаса ловили по клинике, потом он пытался набить морду врачу и у него не получилось (зато какие узоры на руках у доктора!), потом его всемером скрутили, завалили и долго тыкали иголкой в лапу, помните, что некоторые показатели вполне могут быть искусственно завышены. Это касается лейкоцитов, эритроцитов, глюкозы и т.д. И это может быть только реакция на стресс — ничего более. Если вы знаете за своим животным некоторую. хм. врожденную осторожность во всем, что касается ветеринарных услуг, для забора крови пригласите врача на дом, дабы в спокойной дружественной обстановке ваш кот смог отдать ему свою кровищу. В таком случае анализ будет более достоверен.

И, да, собаки тоже такие. В меньшей степени, но тем не менее.

Правило номер раз — биохимия сдается вместе с клиникой, а клиника сдается вместе с биохимией. Есть исключения, но их очень мало и они по большей части касаются случаев, когда диагноз уже имеет место быть. Клинический анализ коррелирует с биохимией и наоборот. Их нужно смотреть вместе.

Правило номер два — лучше сдать, чем не сдать и потом рвать растительность на разных местах. От забора крови еще никто не умирал, а иногда время очень важно. Если у животного: рвота, понос, вялость и апатия, отказ от корма и другие непонятные, беспокоящие вас симптомы — сдавайте кровищу, не жалейте денег. Помните, что очень часто — особенно у кошек — многие заболевания проходят бессимптомно или почти бессимптомно.

4. Чуть-чуть про показатели

Пусть их лучше будет побольше, чем вам придется через пару дней — уже у другого врача — пересдавать все заново. Многие показатели взаимосвязаны, многие — «отвечают» за совершенно различные патологии совершенно различных органов, поэтому, чтобы анализ не был простой тратой денег и формальностью, набор этих показателей должен быть достаточным для первичной диагностики.

Белки. В анализе обязательно должен быть пункт «общий белок» и альбумин — хотя бы.

Креатинин. Его повышение не всегда означает любимые народом «отвалившиеся почечки». Иногда это еще и отвалившиеся мышцы. Поэтому, чтобы понять откуда взялся высокий креатинин, нужна скелетная креатинкиназа. Обычно в бланке она обозначается аббревиатурой «СК» или «ММ». Хорошо бы еще смотреть ту же креатинкиназу, но с аббревитурой «МВ» (показывает поражение миокарда), но ее фактически нигде в Питере не делают.

Щелочная фосфатаза. Не всегда обозначает заболевания гепато-билиарной системы (т.е. заболевания печени и желчевыводящей системы) — иногда это еще и кости. Чтобы понять из-за чего она повышена используется показатель с аббревиатурой ГГТ или ГГТП. Кстати, у щенков и котят до полугода она повышена в норме, причем, сильно повышена.

Билирубин. Он бывает прямой и непрямой, совокупность этих двух показателей называется «общий билирубин». В анализе обязательно должен быть этот самый, общий, а также хотя бы один из — прямой или непрямой. Это связано с тем, что каждый из них «отвечает» за свой набор патологий. Один за эритроциты, второй — за печень. Разброс впечатляет?

Глюкозу — как вы помните — мы уже померили глюкометром.

Показатели водно-электролитного обмена — это всякие калии, натрии и т.д. Чаще используются как дополнение к уже имеющимся основным показателям. Большинство этих показателей имеют привычку очень резко меняться, посему нужны они довольно редко. Например: если низкий гемоглобин — нужно смотреть железо, если есть подозрение на нарушение функции почек — фосфор и т.д. Если животное в тяжелом состоянии и вы находитесь в клинике, в которой есть своя лаборатория (т.е. за стенкой находится, а не через весь город), то есть смысл смотреть водно-электролитный баланс для корректировки схемы инфузионной терапии. Плюс некоторые из этих показателей нужно сдавать во время курса лечения определенными препаратами — например, контроль калия при приеме ингибиторов АПФ (ренитек, энап и др.).

Для примера могу дать обычный список биохимических показателей, которые обычно сдают мои клиенты при первичном приеме (т.е. когда диагноза еще нет):
АСТ
АЛТ
Билирубин (общий + прямой или непрямой или оба вместе)
Белок общий
Альбумин
Глобулин
Щелочная фосфатаза
ГГТ
Креатинкиназа СК
Мочевина
Креатинин
Амилаза

Это необходимый минимум, остальное — по обстоятельствам и возможностям.

Лейкограмма. Это такая табличка, в которой странные буквы: «Э», «Б», «П» и т.д., обозначающие виды разных лейкоцитов. На самом деле в одном анализе лейкограмм желательно иметь две — абсолютную и относительную. Обычно вы видите только одну — там целые числа, без запятых и нулей. Это относительная лейкограмма, обозначающая сколько лейкоцитов каждого конкретного вида приходится на 100 штук. Т.е. это процент. Всего лишь. Абсолютная лейкограмма намного достовернее — она обозначает сколько каждых лейкоцитов есть на единицу объема крови. Разница ощутима, правда?

По биохимическому и клиническому анализам крови фактически невозможно поставить диагноз. По ним мы обычно определяемся с болящим органом или системой органов и даем вам прогноз. А вот дальше мы будем ставить вам диагноз, т.е. делать другие анализы, узи, рентген, эндоскопию, потрясать бубном и т.д. Исключения опять-таки есть, но их — опять-таки — немного.

UPD для коллег. Возможно, у Вас другое мнение по этому вопросу — так же как и по многим другим. И, возможно, оно даже правильнее моего — вполне допускаю. ИМХО, короче, подтвержденное чтением спец. литературы.

источник

Кровь для клинического анализа берут из IV пальца левой руки. Если это по каким-либо причи­нам сделать невозможно, то кровь можно получить из любого другого пальца. Наиболее удобным местом для укола является мякоть пальца слева от срединной ли­нии, на некотором расстоянии от ногтя (у маленьких детей местом укола служит мочка уха, большой палец ноги или пятка).

· Подготовить на манипуляционном столе набор для забора крови из

пальца, проверив целостность упаковок и дату стерилизации:

· индивидуальное стерильное предметное часовое стекло или пробирку одноразового использования, стерильное предметное стекло для приготовления мазка крови, резиновый баллончик, перчатки.

· на рабочем столе оформить сопроводительные документы;

· помочь пациенту найти удобное положение;

· разъяснить пациенту суть предстоящей процедуры, создавая

атмосферу доверия, предоставляя возможность задать вопросы;

· обработать руки спиртовым антисептиком;

· Левой рукой лаборант захватывает IV палец левой руки обследуемого, слегка сдавливая при этом мякоть пальца в области предполагаемого укола. В пра­вую руку лаборант берет иглу для одноразового пользо­вания и располагает ее строго перпендикулярно отно­сительно места предполагаемого укола. обработать подушечку пальца стерильным ватным шариком, смоченным спиртовым антисептиком;

· сбросить шарик в емкость для отходов «Класса. Б»;

· вскрыть одноразовый скарификатор и сделать прокол на подушечке

безымянного пальца. Укол лучше производить сбоку, где более густая

капиллярная сеть, на глубину 2-3 мм в зависимости от толщины кожи;

· использованный скарификатор сбросить в контейнер «Для колющих

· сухим стерильным шариком убрать каплю крови с пальца

пациента, шарик сбросить в емкость для отходов «Класса Б»;

· произвести забор крови из пальца с использованием стерильных

капилляров или одноразовых пробирок;

Взятие крови для гематологических исследований может осуществляться 3 способами:

I. После прокола пальца несколько капель крови (не менее 3-4) спускают на индивидуальное предметное (часовое) стекло или гнездо пластикового планшета, перемешивают и используют для работы.

II. Кровь набирают индивидуальным, стерильным капилляром Панченкова, предварительно смоченным цитратом натрия.

III. После прокола кожи пальца, 6-8 капель крови спускают в пластиковую пробирку с антикоагулянтом. К» ЭДТА или К3ЭДТА (трилон Б) из расчета 1,5-2,2 мг на 1 мл крови, либо в специальные пластиковые пробирки одноразового пользования, обработанных. Сразу же после взятия пробу необходимо тщательно перемешать, перевернув пробирку крышкой вниз не менее 10 раз.

В случае использования 1 или 2 способа взятия крови в лаборатории заранее готовятся следующие пробирки с:

1. 4 мл 0,9% изотонического раствора натрия хлорида для подсчета числа эритроцитов,

2. 5 мл трансформирующего раствора для определения гемоглобина,

3. 0,4 мл 3% раствора уксусной кислоты для подсчета числа лейкоцитов.

4. 5% раствором трехзамещенного цитрата натрия, набранного в капилляр Панченкова до метки 25 и слитого в пробирку для определения СОЭ.

Сразу после взятия крови в 1, 2 и 3-ю пробирки добавляют по 20 мкл крови и несколько раз промывают пипетку в верхнем слое жидкости. Исследование крови начинают с разведения для эритроцитов, так как дальнейшая работа по определению количества лейкоцитов и содержания гемоглобина связана с использованием реактивов, лидирующих эритроциты. Для определения СОЭ в капилляр, промытый цитратом натрия, набирают кровь до метки 0 (100 делений) и выдувают ее в пробирку с раствором цитрата натрия (соотношение крови и реактива — 4:1), пробирку встряхивают.

Для исследования лейкоцитарной формулы, морфологии эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов готовят мазки крови: вытирают место укола сухим шариком ваты и наносят каплю крови на сухое обезжиренное предметное стекло, затем быстро готовят тонкие мазки с помощью шлифованного стекла

Внимание! Кровь забирается только самотеком!

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Лучшие изречения: Для студентов недели бывают четные, нечетные и зачетные. 9137 — | 7318 — или читать все.

195.133.146.119 © studopedia.ru Не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования. Есть нарушение авторского права? Напишите нам | Обратная связь.

Отключите adBlock!
и обновите страницу (F5)

очень нужно

источник