Меню Рубрики

Методы взятия крови для общего анализа

Взятие крови следует проводить в резиновых перчатках, соблюдая прапила асептики, обрабатывая перчатки 70° спиртом перед каждым взятием. Перед проколом кожа пальца обследуемого обрабатывается стерильным тампоном (шариком из ваты), смоченным 70° спиртом.

При многократном использовании скарификатороЕ их необходимс, после дезинфекционной обработки, стерилизовать сухим жаром в течение 1 ч при 160°С или автоклавировать в Течение 30 мин при 1,5 атм., или кипятить в те­чение 30 мин. В последнем случае скарификаторы хранят в этиловом спирте, извлечение их проводится с помощью пинцета, находящегося в растворе дез- средства.

Взятие крови для гематологических исследований может осуществляться *■ способами.

I. После прокола пальца несколько капель крови (не менее 3-4) спускают на индивидуальное предметное (часовое) стекло, перемешивают и используют для работы.

II. Кровь с поверхности пальца набирается последовательно индивидуаль ным, стерильным, предварительно выверенным капилляром объемом 20 мкл и капилляром Панченкова.

III.Использование крови, взятой для определения скорости оседания эрит­роцитов (см. ниже) Полученные результаты умножают н^ коэффициент пе­ресчета 1.25.

IV. После прокола кожи пальца, 6-8 капель крови спускают в пластиковую Пробирку, в которую предварительно внесено небольшое количество трилонг. Б (1,5-2,2 мг на 1 мл крови), либо в специальные пластиковые пробирки одно­разового пользования, обработанных К2ЭДТА (фирмы «8аг.ч1ес11», «Всскл’ Огскт.чоп^ и др.).

Материал для исследования крови подготавливается следующим образом:

1. Заранее наливают в пробирки соответствующие реактивы: для опреде­ления СОЭ — в капилляр Панченкова набирают (до метки ЬУ) реактив 1; длг определения концентрации гемоглобина — 5 мл реактива 2; для подсчета числа эритроцитов — 4 мл реактива 3, для подсчета числа лейкоцитов — 0,4 мл реак­тива 4

2. Тщательно протерев кожу мякоти пальца (лучше IV пальца) ватным ша­риком, смоченным спиртом, делают укол стерильным копьем до упора (на глу­бину 3-4 мм). Взятие крови осуществляется одним из выше перечисленных способов.

3. Для подсчета количества эритроцитов кровь объемом 20 мкл выдувают на дно пробирки с реактивом 3 и промывают пипетку несколько раз в верхнем слое жидкости ( разведение 1:200).

4. Для подсчета лейкоцитов кровь объемом 20 мкл выдувают на дно про­бирки с раствором 4 и промывают пипетку несколько раз в верхнем слое жид­кости (разведение 1: 20).

5. Для определения концентрации гемоглобина 20 мкл крови выдувают на дно пробирки с раствором 2 и промывают несколько раз надосадочно? жидко­стью пипетку ( разведение 1:251).

6. Для определения СОЭ в капилляр, промытый в реактиве 1, набирают кровь два раза до метки 0 (100 деленит:) и тщательно выдувают ее в пробирк) с рас твором цитрата натрия (соотношение при этом крови и реактива 4:1), пробирку встряхивают.

7. Для исследования лейкоцитарной формулы, морфологии эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов готовят мазки крови: вытирают место укола сухим шариком ваты и наносят каплю крови на сухое обезжиренное предметное сте­кло. затем быстро готовят тонкие мазки с помощью шлифованного стекла, краем которог о быстрым движением продвигают по предметному стеклу кап­лю крови.

Примечание: исследование крови необходимо стро1 о начинать с разведе­ния для эри троцитов, так как дальнейшая работа по определению количества лейкоцитов и содержания гемоглобина связана с использованием реак тивов, лидирующих эритроциты.

В настоящее время в связи с применением гематологических анализаторов в КДЛ стали использовать для общего клинического анализа венозную кровь.

Кровь из вены беру г в специальные пластиковые пробирки или шприцы одноразового пользования, обработанных антикоагулянтом КгЭДТА в кон- цСпIрыцпИ I .5-2 2 т. па 1 |У1^ | ГУ /ом. Необл^Мг».уК) 1и1 03/1 I пл кр ОВИ оа-

КрЫТЬ пробирку и несколько раз, не взбалтывая, тщательно перемешать кровь. , переворачивая сс. Перемешивание крови позволяет избежать образо­вания сгустков, наличие которых искажает результаты исследования.

Литература. Инструкция по мерам профилактики распространения ин­фекционных заболеваний «ри работе в клинико-диагностических лаборатори­ях лечебно-профилактических учреждений. М, 1991, 10 с.

источник

Кровь для клинического анализа берут из IV пальца левой руки. Если это по каким-либо причи­нам сделать невозможно, то кровь можно получить из любого другого пальца. Наиболее удобным местом для укола является мякоть пальца слева от срединной ли­нии, на некотором расстоянии от ногтя (у маленьких детей местом укола служит мочка уха, большой палец ноги или пятка).

· Подготовить на манипуляционном столе набор для забора крови из

пальца, проверив целостность упаковок и дату стерилизации:

· индивидуальное стерильное предметное часовое стекло или пробирку одноразового использования, стерильное предметное стекло для приготовления мазка крови, резиновый баллончик, перчатки.

· на рабочем столе оформить сопроводительные документы;

· помочь пациенту найти удобное положение;

· разъяснить пациенту суть предстоящей процедуры, создавая

атмосферу доверия, предоставляя возможность задать вопросы;

· обработать руки спиртовым антисептиком;

· Левой рукой лаборант захватывает IV палец левой руки обследуемого, слегка сдавливая при этом мякоть пальца в области предполагаемого укола. В пра­вую руку лаборант берет иглу для одноразового пользо­вания и располагает ее строго перпендикулярно отно­сительно места предполагаемого укола. обработать подушечку пальца стерильным ватным шариком, смоченным спиртовым антисептиком;

· сбросить шарик в емкость для отходов «Класса. Б»;

· вскрыть одноразовый скарификатор и сделать прокол на подушечке

безымянного пальца. Укол лучше производить сбоку, где более густая

капиллярная сеть, на глубину 2-3 мм в зависимости от толщины кожи;

· использованный скарификатор сбросить в контейнер «Для колющих

· сухим стерильным шариком убрать каплю крови с пальца

пациента, шарик сбросить в емкость для отходов «Класса Б»;

· произвести забор крови из пальца с использованием стерильных

капилляров или одноразовых пробирок;

Взятие крови для гематологических исследований может осуществляться 3 способами:

I. После прокола пальца несколько капель крови (не менее 3-4) спускают на индивидуальное предметное (часовое) стекло или гнездо пластикового планшета, перемешивают и используют для работы.

II. Кровь набирают индивидуальным, стерильным капилляром Панченкова, предварительно смоченным цитратом натрия.

III. После прокола кожи пальца, 6-8 капель крови спускают в пластиковую пробирку с антикоагулянтом. К» ЭДТА или К3ЭДТА (трилон Б) из расчета 1,5-2,2 мг на 1 мл крови, либо в специальные пластиковые пробирки одноразового пользования, обработанных. Сразу же после взятия пробу необходимо тщательно перемешать, перевернув пробирку крышкой вниз не менее 10 раз.

В случае использования 1 или 2 способа взятия крови в лаборатории заранее готовятся следующие пробирки с:

1. 4 мл 0,9% изотонического раствора натрия хлорида для подсчета числа эритроцитов,

2. 5 мл трансформирующего раствора для определения гемоглобина,

3. 0,4 мл 3% раствора уксусной кислоты для подсчета числа лейкоцитов.

4. 5% раствором трехзамещенного цитрата натрия, набранного в капилляр Панченкова до метки 25 и слитого в пробирку для определения СОЭ.

Сразу после взятия крови в 1, 2 и 3-ю пробирки добавляют по 20 мкл крови и несколько раз промывают пипетку в верхнем слое жидкости. Исследование крови начинают с разведения для эритроцитов, так как дальнейшая работа по определению количества лейкоцитов и содержания гемоглобина связана с использованием реактивов, лидирующих эритроциты. Для определения СОЭ в капилляр, промытый цитратом натрия, набирают кровь до метки 0 (100 делений) и выдувают ее в пробирку с раствором цитрата натрия (соотношение крови и реактива — 4:1), пробирку встряхивают.

Для исследования лейкоцитарной формулы, морфологии эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов готовят мазки крови: вытирают место укола сухим шариком ваты и наносят каплю крови на сухое обезжиренное предметное стекло, затем быстро готовят тонкие мазки с помощью шлифованного стекла

Внимание! Кровь забирается только самотеком!

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Лучшие изречения: Студент — человек, постоянно откладывающий неизбежность. 10142 — | 7197 — или читать все.

195.133.146.119 © studopedia.ru Не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования. Есть нарушение авторского права? Напишите нам | Обратная связь.

Отключите adBlock!
и обновите страницу (F5)

очень нужно

источник

Забор крови, с последующим её исследованием производился у мужчин в возрасте от 20-ти до 35-ти лет, до и после физической нагрузки. В исследовании приняла участие группа из тридцати трёх человек, каждый из которой, после взятия пробы до физической нагрузки, проходил стандартную тренировку в течение часа. В таблице 3 сведены типы и продолжительность упражнений, которым подвергались все испытуемые.

Таблица 3 — типы физической нагрузки, применяемой в исследовании

Тренировка включала в себя 15 минут бега в нормальном темпе (один тридцатиметровый круг в минуту); выполнение комплекса упражнений (подтягивания, отжимания от пола, приседания) в течение 15 минут в ускоренном темпе (20 подтягиваний в минуту, 50 приседаний в минуту, 30 отжиманий в минуту); 30 минутный спарринг в нормальном темпе (20-25 бросков в минуту). По окончанию тренировки вновь бралась проба такого же объёма, у тех же испытуемых, что и до тренировки.

Основные этапы выполнения общего анализа крови:

2 приготовление мазков крови;

3 проведение анализов на гематологическом анализаторе;

6 подсчёт лейкоцитарной формулы.

Взятие материала. Кровь для исследования получили путём прокола четвёртого пальца левой руки обследуемого слева от срединной линии на некотором расстоянии от ногтя. В зависимости от толщины кожи глубина прокола составляет 2-3 мм. Обработанная кожа пальца высыхает несколько секунд. Цель этого «высыхания» — исключить растекание крови по пальцу, а также гемолитического воздействия антисептика на эритроциты. Скарификатор одноразового использования плотно зажимается между указательным и большим пальцами правой руки; производится прокол. Прокол произвели перпендикулярно рисунку кожных покровов пальца, так как в этом случае происходит повреждение нескольких капилляров, ход которых совпадает с ходом линий кожного рисунка. Учитываем, что разрез произведённый параллельно кожным линиям, спадается, что затрудняет забор крови. Первую, выступившую каплю крови удалили ватным тампоном, а последующие были взяты на исследование. Взятую кровь поместили в пронумерованные и обработанные раствором антикоагулянта. Трилоном-Б, пластиковые микрокюветы. На следующем рисунке показаны одноразовые пластиковые микрокюветы, более удобные и безопасные в использовании, чем стеклянные пробирки.

Все манипуляции связанные с забором крови проводились используя стерильные комплекты инструментов для взятия крови (капилляры Панченкова, предметные стёкла, скарификаторы и микрокюветы). Для каждого обследуемого использовалась индивидуальная пара перчаток и стерильных ватных укладок. Все манипуляции проводились в соответствии с требованиями приказа №165 МЗ РБ от 25.11.2002 г «О методах стерилизации и дезинфекции в медицинских учреждениях» [21].

Рисунок 1 — Микрокюветы с раствором антикоагулянта

Приготовление мазков крови. Для изготовления мазка крови использовались тщательно обезжиренные предметные стёкла. Мазок крови готовился шлифованным стеклом с идеально ровным краем, ширина которого была приблизительно на 2-3 мм уже предметного стекла. К куполу свеже выпущенной из прокола капли было сделано прикосновение предметным стеклом на расстоянии 1,5-2 см от его края, не касаясь кожи в месте прокола. Размер капли на стекле не менее 2-3 мм в диаметре. Шлифованным стеклом, приставленным к предметному под углом 45°, быстрым движением справа налево был сделан мазок. Критерием правильности выполненного мазка является его полупрозрачность и желтоватый цвет. Техника приготовления мазка крови представлена на следующем рисунке.

Рисунок 2 — Техника приготовления мазка крови

Проведение анализов на гематологическом анализаторе. Для исследований использовался гематологический анализатор SISMYX-500. Взятую кровь в миниёмкастях тщательно перемешали и поместили в загрузочную часть аппарата. Предварительно была проведена калибровка данного аппарата, которая заключалась в проведении полного анализа микрокюветы с дистиллированной водой. Определение параметров исследуемой крови протекает в автономном режиме, без непосредственного участия человека. По завершению цикла исследования сняли выданные аппаратом результаты [22].

Изображение аппарата SISMYX-500, и момента отбора пробы для анализа, представлены на рисунке 3.

Фиксация мазков крови. Данный этап предохраняет форменные элементы от содержащейся в красителях воды, под влиянием которой в не фиксированных мазках происходит гемолиз эритроцитов и изменяется морфология лейкоцитов.

Фиксатор также вызывает коагуляцию белков и тем самым закрепляет препарат на стекле. В качестве фиксирующей жидкости использовали раствор эозинметиленового синего по Май-Грюнвальду. Высушенные мазки опускались в широкогорлую банку с фиксатором на 3-5 минут. Далее пинцетом мазки были извлечены и высушены на воздухе.

Рисунок 3 — Гематологический анализатор SISMYX-500

Окраска мазков крови. Фиксированные сухие мазки поместили в контейнер, который опустили в кювету с рабочим раствором красителя и выдержали в нём экспозицию в 30 минут.

Затем, контейнер был перенесён в кювету с водопроводной водой, а затем в вертикальный штатив для сушки. В качестве красящего раствора был использован краситель по прописи Романовского-Гимзы. В состав красителя входят: азур-2 (смесь равных количеств азура-1 и метиленового синего) и эозин. Критериями правильности данной окраски являются розово-оранжевые гранулы эозинофилов, светло-розовый цвет эритроцитов, нейтрофильная зернистость фиолетового цвета.

Подсчёт лейкоцитарной формулы производят с помощью иммерсионной системы микроскопа с увеличением Ч630. Для работы используется специальное иммерсионное масло, каплю которого наносят на препарат. Удобный обзор препарата настраивают с помощью микро- и макровинтов. Для регистрации клеток при подсчёте лейкоцитарной формулы использовался счётчик лабораторный СЛ-1.

Читайте также:  Изменения общем анализе крови при онкологии

Это простейший арифмометр снабжённый клавишами, обозначенными буквами для подсчёта соответствующих видов лейкоцитов, изображён на рисунке 4.

Рисунок 4 — Счётчик лабораторный СЛ-1

Подсчёт лейкоцитов производился в тонкой части мазка, где эритроциты располагаются одиночно. Препарат просматривают по зигзагообразной линии («линии Меандра») в количестве 3-5 полей зрения. Когда сосчитано 100 клеток, счётчик издаёт характерный сигнал, что означает окончание подсчёта лейкограммы данного препарата. Подсчитывались только целые, не разрушенные клетки.

Для оценки влияния физической нагрузки на состояние показателей периферической крови использовались результаты общего анализа крови до и после физической нагрузки.

В ходе исследования нами были вычислены среднее арифметическое, стандартное отклонение, стандартная ошибка, коэффициент вариации по продуктивности и устойчивости внимания, а также по показателям темпа выполнения.

Средняя арифметическая вычисляется по формуле:

где Xi — значение признака, варианта;

где x2 — сумма квадратов центральных отклонений, т. е. квадратов разностей между каждым значением и средней арифметической;

n — 1 — число степеней свободы, равное числу объектов в группе без одного.

Ошибка стандартного отклонения:

где у — стандартное отклонение;

м — средняя арифметическая.

В результате обработки полученного материала, был проведён статистический анализ, построены графики зависимости показателей концентрации гемоглобина, количества эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов, от воздействующего на них фактора физической нагрузки, а также таблицы результатов дисперсионного анализа, для каждого из исследуемых показателей.

Статистическая обработка результатов исследований выполнена с использованием прикладных программ MS Excel 2007 и Statistica for Windows 6.0. Оценка достоверности различий осуществлялась на основе критерия Фишера. Влияние физической нагрузки на показатели крови оценено методом однофакторного дисперсионного [23].

источник

Медицинская сестра накануне исследования должна предупредить больного о предстоящем заборе крови и разъяснить, что кровь берут натощак, до приёма лекарственных средств, а на ужин не следует употреблять жирную пищу.

При заборе крови из вены время наложения жгута должно быть по возможности минимальным, так как длительный стаз крови повышает содержание общего белка и его фракций, кальция, калия и других компонентов.

В зависимости от цели исследования забор крови для лабораторного анализа осуществляют из пальца (капиллярная кровь) и из вены (венозная кровь).

Кровь из пальца берёт лаборант. Этот анализ необходим для количественного и качественного изучения форменных элементов крови (эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов), определения количества в крови гемоглобина и скорости оседания эритроцитов (СОЭ). Такой анализ называют общим анализом крови. Кроме того, в ряде

случаев из пальца берут кровь для определения содержания в крови глюкозы, а также свёртываемости крови и времени кровотечения.

В настоящее время созданы аппараты (например, «Холестех», США), в которых на основе восковой матрицы осуществляется возможность из капли крови, взятой из пальца, определять содержание в крови общего холестерина, холестерина липопротеидов высокой, низкой и очень низкой плотности, триглицеридов и глюкозы, рассчитывать индекс атерогенности и риск развития ИБС.

Кровь из вены берёт процедурная медицинская сестра посредством пункции в большинстве случаев локтевой вены; кровь смешивается в пробирке с противосвёртывающим веществом (гепарин, натрия цитрат). Забор крови из вены осуществляют с целью количественного изучения биохимических показателей крови (так называемых печёночных проб, ревматологических проб, содержания глюкозы, фибриногена, мочевины, креатинина), обнаружения возбудителей инфекции (взятие крови на гемокультуру и определение чувствительности к антибиотикам) и антител к ВИЧ. Объём забираемой из вены крови зависит от количества определяемых компонентов — обычно из расчёта 1-2 мл на каждый вид анализа.

Взятие крови на исследование из вены

Противопоказания к процедуре определяет врач. К ним относят крайне тяжёлое состояние пациента, спавшиеся вены, судороги, возбуждённое состояние пациента.

Весь использованный во время манипуляции материал необходимо продезинфицировать.

Резиновый жгут и клеёнчатый валик протирают дважды ветошью, смоченной дезинфицирующим раствором (например, 3% раствором хлорамина Б), и промывают проточной водой. Использованный ватный шарик с кровью обязательно следует забрать у пациента и, прежде чем поместить его в отходы, замочить в дезинфицирующем растворе не менее чем на 60 мин. Дезинфицирующим раствором необходимо обработать также и рабочий стол.

• одноразовые (стерильные) шприцы с иглами;

• стерильный лоток с ватными шариками и пинцетом;

• резиновый жгут, резиновый валик и салфетка;

• 70% раствор спирта, чистые пробирки с пробочками в штативе;

• спецодежда (халат, маска, стерильные перчатки);

• лоток для использованного материала;

• тонометр, фонендоскоп, противошоковый набор лекарственных средств.

Порядок выполнения процедуры:

1. Подготовить пациента — помочь ему занять удобное положение сидя или лёжа.

2. Подготовиться к процедуре: пронумеровать пробирку и направление на анализ (одина-

ковым порядковым номером), вымыть и высушить руки, надеть спецодежду, обработать руки ватными шариками, смоченными 70% раствором спирта, надеть перчатки.

3. Подложить под локоть пациента клеёнчатый валик для максимального разгибания локтевого сустава.

4. Освободить от одежды руку или поднять рукав рубашки до средней трети плеча таким

образом, чтобы был обеспечен свободный доступ к области локтевого сгиба.

5. Наложить резиновый жгут в области средней трети плеча выше локтевого сгиба на 10 см и затянуть жгут, чтобы петля жгута была направлена вниз, а свободные его концы —

вверх (чтобы концы жгута во время венепункции не попали на обработанное спиртом поле).

6. Обработать одетые в перчатки руки 70% раствором спирта.

7. Предложить пациенту «поработать кулаком» — несколько раз сжать и разжать кулак для

8. Попросить пациента сжать кулак и не разжимать до тех пор, пока медсестра не разре-

шит; при этом дважды обработать кожу в области локтевого сгиба ватными шариками, смоченными 70% раствором спирта, в одном направлении — сверху вниз, сначала широко (размер инъекционного поля составляет 4×8 см), затем — непосредственно место пункции.

9. Найти наиболее наполненную вену; затем кончиками пальцев левой руки оттянуть кожу

локтевого сгиба в сторону предплечья и фиксировать вену.

10. В правую руку взять приготовленный для пункции шприц с иглой.

11. Провести венепункцию: держа иглу срезом вверх под углом 45°, ввести иглу под кожу;

затем, уменьшив угол наклона и держа иглу почти параллельно кожной поверхности, продвинуть иглу немного вдоль вены и ввести её на треть её длины в вену. При проколе вены возникает ощущение «провала» иглы в пустоту.

12. Убедиться, что игла находится в вене, слегка потянув поршень иглы на себя; при этом

в шприце должна появиться кровь.

13. Не снимая жгут, продолжить тянуть поршень шприца на себя для набора необходимого

14. Развязать жгут и предложить больному разжать кулак.

15. Прижать ватный шарик, смоченный в 70% растворе спирта, к месту инъекции и быстро извлечь иглу.

В ряде случаев во избежание повреждения форменных элементов крови (например, при исследовании агрегационной функции тромбоцитов) кровь нельзя набирать шприцем. В такой ситуации следует набирать кровь «самотёком» — подставить под иглу (без шприца) пробирку и подождать, пока она заполнится необходимым количеством крови.

16. Предложить больному согнуть руку в локтевом сгибе вместе с ватным шариком и оставить так на 3-5 мин для остановки кровотечения.

17. Снять иглу со шприца, медленно выпустить кровь в пробирку по её стенке (быстрое поступление крови в пробирку может привести к её вспениванию и, следовательно, гемолизу крови в пробирке) и закрыть пробирку пробочкой.

18. Сложить использованные материалы в специально приготовленный лоток, снять перчатки.

19. Спросить у пациента о его самочувствии, помочь ему встать или удобно лечь.

20. Оформить направление в лабораторию, поместить штатив с пробирками в ёмкость для

транспортировки биологических жидкостей (бикс) и отправить в лабораторию для исследования.

NB!При подозрении на гепатит или ВИЧ-инфекцию у больного ёмкость с кровью необходимо дополнительно парафинировать или закрыть лейкопластырем и поместить в герметичный контейнер.

источник

Взятие крови для общего клинического анализа крови производят путем укола в мякоть IV пальца левой руки или мочку уха. Для укола палец обрабатывают ватным шариком, смоченным раствором антисептика, чаще всего септоцида. Укол лучше производить сбоку, где более густая капиллярная сеть, на глубину 2-3 мм в зависимости от толщины кожи. Кровь из ранки должна вытекать свободно, так как при сильном надавливании на палец возможно примешивание тканевой жидкости, приводящее к искажению результатов.

Не рекомендуется брать кровь сразу после физической и умственной нагрузки, приема медикаментов, физиотерапевтических процедур, диагностических манипуляций. Необходимо производить забор крови натощак. Повторные исследования желательно проводить в одни и те же часы, поскольку морфологический состав крови подвержен колебаниям на протяжении суток.

Для исследования гемограммы используют пробирочный метод взятия крови. Точная дозировка крови и разводящих жидкостей достигается с помощью калиброванных пипеток и дозаторов.

Общий клинический анализ крови включает определение следующих компонентов:

3) индексы красной крови (цветовой показатель и среднее содержание гемоглобина в одном эритроците);

4) скорость оседания эритроцитов (СОЭ);

6) осмотическая резистентность эритроцитов и их диаметр;

7) количество ретикулоцитов;

8) количество лейкоцитов и лейкоцитарная формула;

2. Методика определения концентрации гемоглобина, количества эритроцитов и ретикулоцитов. Расчет индексов красной крови: цветовой показатель и среднее содержание гемоглобина в одном эритроците. Диагностическое значение. Гематокритное число.

Предложено много методов определения концентрации гемоглобина. Важнейшие из этих методов – колориметрические. Чаще колориметрируют цветные производные гемоглобина: хлорид гематина, цианметгемоглобин, карбоксигемоглобин и др. Концентрацию гемоглобина измеряют фотоэлектроколориметрами, приборами ГФ-2 и ГФ-3, гемоглобинометрами при автоанализаторах.

Унифицированным является цианметгемоглобиновый фотометрический метод. Он основан на превращении гемоглобина в цианметгемоглобин при добавлении к крови реактива (раствора Драбкина), содержащего железосинеродистый калий и цианид калия. Концентрацию цианметгемоглобина измеряют фотометрически, а расчет количества гемоглобина производят по калибровочному графику.

Гематиновый метод Сали основан на превращении гемоглобина при добавлении к крови хлористоводородной кислоты в хлорид гематина (хлоргемин) коричневого цвета, интенсивность окраски которого пропорциональна содержанию гемоглобина. В настоящее время этот метод не имеет широкого применения.

В норме концентрации гемоглобина составляет:

Увеличение концентрации гемоглобина наблюдается у людей, живущих в условиях высокогорья, при обезвоживании у работников горячих цехов, после обильной рвоты и при диарее, при массивных ожогах, при эритремии и др.

Уменьшение концентрации гемоглобина наблюдается при анемиях, а так же при обильном употреблении жидкости, гемодилюции лекарственными инфузионными средствами и др.

Определение количества эритроцитов крови выполняется следующими методами:

1. Подсчет эритроцитов в счетной камере с сеткой Горяева.

Принцип метода: в строго определенном объеме каме­ры подсчитывают под микроскопом клеточные элементы, а затем производят перерасчет полученного результата на 1 мкл крови. С целью уменьшения количества клеток, подлежащих подсчету, кровь предварительно разводят в смесителях или пробирках.

1) смесители (меланжеры) или пробирки для разведе­ния крови;

2) 3 % раствор хлорида натрия или жидкость Гайема для разведения эритроцитов (ртути хлорид — 0,5 г; натрия сульфат — 5,0 г; натрия хлорид — 1,0 г; вода дистиллиро­ванная — до 200 мл);

Смесители представляют собой капиллярную пипетку с резервуаром, содержащим бусинку, способствующую смешиванию крови с жидкостью для разведения. На сме­сителе нанесены метки: одна — 0,5, другая — перед входом в резервуар — 1,0, третья — у выхода из ампулы — 101. При набирании крови в пипетку до метки 0,5 она будет разве­дена в 200 раз, до 1,0 — в 100 раз.

Счетная камера представляет собой стеклянную плас­тинку с выгравированной или наклеенной сеткой Горяе­ва. Обычно на одной пластинке имеются две сетки, разде­ленные между собой глубокой канавкой, что позволяет ис­пользовать одну сетку для подсчета эритроцитов, а другую — для подсчета лейкоцитов. По краям сеток находятся воз­вышения, к ним притираются покровные стекла, которые образуют верхнюю границу камеры. Притирать покров­ные стекла нужно очень плотно до появления радужных колец (так называемых колец Ньютона), ибо только в этом случае будут соблюдены необходимые высота (1/10 мм) и объем счетной камеры. Сетка Горяева имеет 225 больших квадратов (15 х15), 25 из которых раз­делены на малые, по 16 в каждом. Каждая сторона малого квадрата равна 1/20 мм, а так как высота камеры состав­ляет 0,1 мм, то объем счетной камеры, ограниченной од­ним малым квадратом, будет равен 1/4000 мм 3 .

Ход исследования: в сухую чистую пробирку или сме­ситель отмеривают раствор хлорида натрия или жидкость Гайема. Пипеткой от гемометра Сали набирают кровь из пальца, вытирают кончик пипетки марлей или фильтро­вальной бумагой, выдувают кровь на дно пробирки с жидкостью для разведения. Подготавливают камеру Горяева. Затем концом круглой стеклянной палочки или пастеровской пипеткой наносят каплю разведенной кро­ви на среднюю пластинку камеры у края покровного стекла.

Читайте также:  Кровь на анализы при профосмотре

Интерпретация полученных данных. Подсчет эрит­роцитов производят спустя 1-2 мин после заполнения ка­меры (когда эритроциты осядут на дно камеры) при малом увеличении микроскопа (объектив 8х, окуляр — 10х или 15х) и при затемненном поле зрения (при опущенном кон­денсоре или прикрытой диафрагме). Считать эритроциты необходимо в 5 больших квадратах, т. е. в 80 маленьких, расположенных по диагонали. Подсчету подлежат все эритроциты, лежащие внутри малого квадрата, и те, кото­рые находятся на левой и верхней линиях. Эритроциты, расположенные на правой и нижней линиях, не считают, так как они будут учтены в следующем квадрате.

Количество эритроцитов в 1 мкл (мм 3 ) крови высчиты­вают по следующей формуле:

где X — количество форменных элементов в 1 мкл крови; А — количество форменных элементов, сосчитанных в опреде­ленном количестве малых квадратов (для эритроцитов — в 80); Б — количество сосчитанных малых квадратов (80); В — степень разведения крови (для подсчета эритроцитов -100 или 200); 4000 — величина, умножая на которую, мы получаем количество клеток в 1 мкл (1 мм 3 ), так как объ­ем 1 маленького квадрата равен 1/4000 мм.

Для перевода в систему СИ (пересчет на 1 л крови) по­лученную цифру умножают на 10 6 (или количество целых единиц умножают на 10 12 ).

Методика подсчета эритроцитов в счетной камере дос­таточно точна (ошибка может достигать 2,5 %), но весьма трудоемка. Ошибки могут быть обусловлены: образовани­ем сгустка, недостаточным количеством подсчитанных квадратов, несоблюдением условий, обеспечивающих правильную высоту счетной камеры (притирание покров­ных стекол без образования радужных колец), неравно­мерным заполнением камеры (образование пузырьков воздуха), подсчетом эритроцитов без выжидания 1-2 мин (эритроциты не успевают осесть и результат оказывается заниженным), плохо вымытыми смесителем и счетной ка­мерой, недостаточной квалификацией лаборанта, выпол­няющего исследование.

2. Фотометрический метод подсчета количества эритроцитов – основан на фотометрическом измерении степени погашения света определенных длин волн взвесью эритроцитов. Процент задержанного света прямо пропорционален числу эритроцитов. Для этого используют приборы типа эритрогемометров и электрофотоколориметры.

3. Электронно-автоматический метод. Используются приборы автоматического счета частиц крови, работающие по импульсному и сцинтиляционному принципу (счетчики «Целлоскоп» и «Культер», автоанализаторы «Техникон»).

Нормальное количество эритроцитов:

— у женщин 3.7 – 4.7 х 10 12 /л;

— у мужчин 3,9 — 5,1 х 10 12 /л.

Увеличение количества эритроцитов наблюдается:

1) при эритремии (абсолютный первичный эритроцитоз);

2) при гипоксии: обструктивная вентиляционная недостаточность, при наличии альвеолярно-капиллярного блока – фиброзирующий альвеолит и легочные васкулиты, врожденные пороки сердца с шунтом справа налево и др;

3) при гемоглобинопатиях (наследственные заболевания, характеризующиеся наличием в эритроцитах аномальных гемоглобинов);

4) при вторичных абсолютных эритроцитозах, связанных с повышенной продукцией эритропоэтинов (рак почек, гидронефроз и поликистоз почек, рак печени и др.);

5) при вторичных абсолютных эритроцитозах, связанных с избытком адренокортикостероидов или андрогенов (феохромоцитома, синдром / болезнь Иценко-Кушинга, гиперальдостеронизм);

6) при относительных эритроцитозах вследствие обезвоживания, стрессов, алкоголизма, повышенной физической нагрузки, проживания в условиях высокогорья и др.

Уменьшение количества эритроцитов характерно для анемий различного происхождения. От истинной анемии, характеризующейся абсолютным уменьшением эритроцитарной массы, нужно отличать анемию (эритроцитопению) вследствие гидремии (снижение гематокрита из-за увеличения объема плазмы).

Уменьшение количества эритроцитов (анемия, эритроцитопения) наблюдается при постгеморрагических анемиях, анемиях вследствие недостаточного кровеобразования (железодефицитная, витамин-В12- и фолиеводефицитная), анемиях в результате усиленного распада эритроцитов (гемолитические), железоперераспределительных и метапластических (при опухолевых заболеваниях крови) анемиях и др.

Расчет индексов красной крови: цветовой показатель и среднее содержание гемоглобина в одном эритроците.

Под индексами красной крови понимают среднее содержание гемоглобина в одном эритроците и цветовой показатель.

Определение среднего содержания гемоглобина в одном эритроците производят делением концентрации гемоглобина на число эритроцитов в одинаковом объеме крови. В норме 1 эритроцит содержит 33 пг гемоглобина (допустимые колебания 27-33.4 пг).

Величину 33 пг условно принимают за единицу (норма содержания гемоглобина в одном эритроците) и обозначают как цветовой показатель.

Цветовой показатель отражает насыщение эритроцита гемоглобином.

Вычисление цветового показателя (ЦП) производят по формуле:

три первые цифры числа эритроцитов (в миллионах)

две первые цифры числа эритроцитов (в миллионах)

ГЕМОГЛОБИН (в условных единицах)

две первые цифры числа эритроцитов (в миллионах)

В норме цветовой показатель равен 0,85 – 1,05.

Индексы красной крови важны для суждения о нормо-, гипер-, гипохромии эритроцитов.

Гиперхромия – увеличение среднего содержания гемоглобина в 1 эритроците, дающее цветовой показатель выше 1.05, зависит исключительно от увеличения объема эритроцитов, а не от повышенного насыщения их гемоглобином, так как нормальный эритроцит насыщен гемоглобином до предела. Гиперхромия характерна для мегалобластных анемий, обусловленных дефицитом витамина В12 и фолиевой кислоты.

Гипохромия – уменьшение среднего содержания гемоглобина в 1 эритроците, дающее ЦП ниже 0.85, может быть так же следствием уменьшения объема эритроцитов. Гипохромия служит истинным показателем или дефицита железа в организме, или железорефрактерности. Гипохромия наблюдается при хронических кровопотерях, железодефицитных и железорефрактерных анемиях, свинцовой интоксикации и др.

Нормохромия – это нормальное содержание гемоглобина в эритроците (ЦП -0,85-1,05). Нормохромные анемии развиваются при равномерном уменьшении содержания эритроцитов и количества гемоглобина и наблюдается в случаях острых кровопотерь, при гипопластической анемии, при гемолизе, сепсисе.

Гематокрит (гематокритное число) – дает представление о соотношении между объемом плазмы и объемом форменных элементов крови. Определяется с помощью следующих методов.

1. Метод центрифугирования в гематокритной трубке.

2. Электронно-автоматический метод (с помощью аппаратов «Целлоскоп» и «Культер»).

Нормальные величины гематокрита:

Гематокритное число учитывается при диагностике полицитемических и олигоцитемических состояний.

Ретикулоциты – это молодые эритроциты, содержащие базофильную субстанцию в виде сеточки, представленную агрегированными рибосомами и митохондриями. Сеточка обнаруживается при прижизненной окраске мазков крови 1% раствором бриллианткрезил синего. Подсчет производится под иммерсионным объективом по отношению к 1000 эритроцитов.

В норме содержание ретикулоцитов в периферической крови составляет 2-10º/○○ (0,2-1,2%). Ретикулоцитоз отображает степень регенераторной способности костного мозга. При гемолизе, кровопотерях эритропоэз в нормальном костном мозге активизируется, и число ретикулоцитов в нем и в периферической крови возрастает. Отсутствие роста числа ретикулоцитов в выше указанных ситуациях свидетельствуют о пониженной функции костного мозга.

Ретикулоцитоз при отсутствии анемии говорит о скрытых, но хорошо компенсированных потерях крови. Высокий ретикулоцитоз наблюдается при адекватном лечении витамин-В12-дефицитной анемии.

Дата добавления: 2016-10-23 ; просмотров: 619 | Нарушение авторских прав

источник

1. Оснащение:

стерильный скарификатор, укладка со стерильными капиллярами Панченкова (20 шт. в 1 упаковке), спирт 70 0 , планшет с пробирками, планшет для дозировки крови, капилляр Сали (0,02 мл.), резиновая груша, емкость с дезраствором, одноразовые (не стерильные) перчатки, халат, фартук, колпак, маска, пластиковые очки, вата, 2 предметных стерильных стекла (упаковка – 10 шт.), пробирки: № 1 на эритроциты – 4 мл – 3,5% раствор хлорида натрия, № 2 на гемоглобин – 5 мл трансформирующего раствора, № 3 на лейкоциты – 0,4 мл-3% раствора уксусной кислоты, 3 4 на СОЭ – 3,8% раствор стерильного оксилата натрия 0,025 мл.

2.Подготовка к процедуре:

1. забор крови у пациентов производится натощак;

2. приветствовать пациента, представиться;

3. объяснить пациенту цель и ход предстоящей процедуры и получить его согласие;

4. предложить пациенту удобно сесть;

5. вымыть и осушить руки, надеть перчатки;

6. обработать 4-ый (безымянный) палец пациента 70 0 спиртом;

7. левой рукой фиксировать палец пациента, а в правую руку взять скарификатор.

3.Выполнение манипуляции:

1. пунктировать на глубину 3-4 мм;

2. сухой стерильной ваткой снять первую каплю крови;

3. стерильным капилляром Панченко набираем 0,025 мл стерильного цитрата натрия, промывают его и сливают в пробирку с цитратом натрия;

4. этим же капилляром набирают полкапилляра крови и сливают в одну ячейку для дозирования, из которой набирают 0,02 мл крови капилляром Сали с грушей, снимают остатки крови с носика пипетки и выливают в пробирку № 1 (для эритроцитов);

5. из ячейки для дозирования берут 0,02 мл крови, выливают в пробирку № 2 (для гемоглобина);

6. 0,02 мл крови опускают в пробирку № 3 (для лейкоцитов);

7. 1 каплю крови капилляром Панченко опускают на предметное стекло и готовят тонкий мазок (под углом 45 0 специальным шлифовальным стеклом);

8. капилляр Панченко опускают в пробирку № 4 (на СОЭ);

9. обработать пациенту палец стерильной ватой, смоченной в спирте. Пациента отпускают.

4.Завершение процедуры:

1. мазок крови подписать, высушить на воздухе, поставить в штатив для фиксации. Упаковать в контейнер для транспортировки штатив с пробирками, с стеклами и штатив для дозировки крови.

2. В лаборатории:

а) подсчет эритроцитов в камере Горева;

б) измерение гемоглобина на ФЭКе;

в) подсчет лейкоцитов в камере Горева;

г) установка капилляра Паченкова в штатив Панченкова с кровью набранной до метки «0» на 1 час – определение СОЭ;

д) фиксация, окраска мазка крови и подсчет клеточных элементов (лейкоформулы) под микроскопом (иммерсия, увеличение 7*90)

3. Дезинфицирующий режим:

а) утилизация скарификатора на 1 час в 0,05% растворе анолита;

использованная вата и ветош – 1 час в 0,05 % растворе анолита;

остатки крови и реактивов с кровью – на 1 час в соотношении 5 6 1 с хлорной известью.

б) «0» – дезинфекция пробирок, капилляров, груш, штативов в 0,03% растворе анолита.

в) дезинфекция и предстерилизационная очистка совмещены – 90 минут в 0,03 % растворе анолита. Прополаскивание и стерилизация капилляров и стекол – в упаковке в биксе автоклавированием (1 час при 132 0 С, 1,2 атм.) Стекла кипятят в моющем растворе с перекисью водорода 1 час, сушат и стерилизуют автоклавированием.

Все материалы представленные на сайте исключительно с целью ознакомления читателями и не преследуют коммерческих целей или нарушение авторских прав. Студалл.Орг (0.004 сек.)

источник

Учебно-методическое пособие для подготовки к практическим занятиям по дисциплине «Пропедевтика внутренних болезней» (Общий клинический анализ крови, мокроты и плевральной жидкости. Исследование желудочной секреции. Дуоденальное зондирование. Аускультация легких)

  1. Техника взятия крови для общего клинического анализа.
  2. Методика определения концентрации гемоглобина, количества эритроцитов и ретикулоцитов. Расчет индексов красной крови: цветовой показатель и среднее содержание гемоглобина в одном эритроците. Диагностическое значение. Гематокритное число.
  3. Методика определения осмотической резистентности эритроцитов и диаметра эритроцитов. Определение скорости оседания эритроцитов (СОЭ). Диагностическое значение.
  4. Методика определения количества лейкоцитов.
  5. Методика определения количество тромбоцитов. Диагностическая трактовка.
  6. Методика сбора мокроты.
  7. Исследование мокроты: макроскопическое, микроскопическое, бактериоскопическое. Понятие о бактериологическом методе исследования мокроты.
  8. Техника проведения плевральной пункции.
  9. Лабораторное исследование плевральной жидкости: макроскопический, микроскопический, физико-химический и бактериологический анализ. Методика проведения проб Ривальта и Лукерини. Отличительные признаки экссудата и транссудата.

I. Техника взятия крови для общего клинического анализа.

Общий клинический анализ крови включает определение следующих компонентов:

  1. количество гемоглобина;
  2. количество эритроцитов;
  3. индексы красной крови (цветовой показатель и среднее содержание гемоглобина в одном эритроците);
  4. скорость оседания эритроцитов (СОЭ);
  5. гематокритное число;
  6. осмотическая резистентность эритроцитов и их диаметр;
  7. количество ретикулоцитов;
  8. количество лейкоцитов и лейкоцитарная формула;
  9. количество тромбоцитов.

В лабораторной практике исследуют капиллярную кровь, которую получают путем укола в мякоть IV пальца левой руки или мочки уха, или венозную кровь из локтевой вены (при работе автоанализаторах). Для укола протирают ватным шариком, смоченным сначала спиртом, затем эфиром. Укол лучше производить сбоку, где более густая капиллярная сеть, на глубину 2-3 мм в зависимости от толщины кожи. Кровь из ранки должна вытекать свободно, так как при сильном надавливании на палец возможно примешивание тканевой жидкости, приводящее к искажению результатов.

Не рекомендуется брать кровь сразу после физической и умственной нагрузки, приема медикаментов, физиотерапевтических процедур, диагностических манипуляций; необходимо производить забор крови натощак. Повторные исследования желательно проводить в одни и те же часы, поскольку морфологический состав крови подвержен колебаниям на протяжении суток.

Для исследования гемограммы используют пробирочный метод взятия крови. Точная дозировка крови и разводящих жидкостей достигается с помощью применения калиброванных пипеток и дозаторов.

2. Методика определения концентрации гемоглобина.

Предложено много методов определения концентрации гемоглобина. Важнейшие из этих методов – колориметрические. Чаще колориметрируют цветные производные гемоглобина: хлорид гематина, цианметгемоглобин, карбоксигемоглобин и др. Концентрацию гемоглобина измеряют фотоэлектроколориметрами, приборами ГФ-2 и ГФ-3, гемоглобинометрами при автоанализаторах.

Унифицированным является цианметгемоглобиновый фотометрический метод. Он основан на превращении гемоглобина в цианметгемоглобин (стойкое соединение) при добавлении к крови реактива-раствора Драбкина, содержащего железосинеродистый калий и цианид калия. Концентрацию цианметгемоглобина измеряют фотометрически, а расчет количества гемоглобина производят по калибровочному графику.

Читайте также:  Общий анализ крови палец завтракать

Гематиновый метод Сали основан на превращении гемоглобина при добавлении к крови хлористоводородной кислоты в хлорид гематина (хлоргемин) коричневого цвета, интенсивность окраски которого пропорциональна содержанию гемоглобина. В настоящее время не имеет широкого значения.

Пределы колебания количества гемоглобина у здоровых людей следующие:

Увеличение концентрации гемоглобина наблюдается у людей, живущих в условиях высокогорья, при обезвоживании у работников горячих цехов, после обильной рвоты и при диарее, при массивных ожогах, при эритремии и др.

Уменьшение концентрации гемоглобина наблюдается при обильном употреблении жидкости, гемодилюции лекарственными инфузионными средствами, при анемиях и др.

2а. Определение количества эритроцитов.

Предложены следующие методы определения количества эритроцитов крови:

  1. Подсчет эритроцитов в камере Бюркера с сеткой Горяева.
  2. Фотометрический метод – основан на фотометрическом измерении степени погашения света определенных длин волн взвесью эритроцитов. Процент задержанного света прямо пропорционально числу (концентрации) эритроцитов. Для этого используют приборы типа эритрогемометров и электрофотоколориметры.
  3. Электронно-автоматический метод – используются приборы автоматического счета частиц крови, работающие по импульсному и сцинтиляционному принципу (счетчики «Целлоскоп» и «Культер», автоанализаторы «Техникон»).

Нормальное количество эритроцитов:

— у женщин 3.8 – 4.7 х 10 12 /л;

— у мужчин 4.0 – 5.5 х 10 12 /л.

Увеличение количества эритроцитов наблюдается:

  1. при эритремии (абсолютный первичный эритроцитоз);
  2. при гипоксии (обструктивная вентиляционная недостаточность, при наличии альвеолярно-капиллярного блока – фиброзирующий альвеолит и легочные васкулиты), при врожденных пороках сердца с шунтом справа налево);
  3. при наличии аномальных гемоглобинов;
  4. при вторичных абсолютных эритроцитозах, связанных с повышенной продукцией эритропоэтинов (рак почек, гидронефроз и поликистоз почек, рак паренхимы печени и др.);
  5. при вторичных абсолютных эритроцитозах, связанных с избытком адренокортикостероидов или андрогенов (феохромоцитома, синдром Кушинга, гиперальдостеронизм);
  6. при относительных эритроцитозах (потери жидкости, стрессы, алкоголизм, повышенная физическая нагрузка, пребывание на больших высотах и т.д.).

Уменьшение количества эритроцитов характерно для анемий различного происхождения. От истинной анемии, характеризующейся абсолютным уменьшением эритроцитарной массы, нужно отличать анемию (эритроцитопению) вследствие гидремии (снижение гематокрита из-за увеличения объема плазмы).

2б. Расчет индексов красной крови.

Под индексами красной крови понимают среднее содержание гемоглобина в одном эритроците и цветовой показатель.

Определение среднего содержания гемоглобина в одном эритроците производят делением концентрации гемоглобина на число эритроцитов в одинаковом объеме крови. В норме 1 эритроцит содержит 33 пг гемоглобина (допустимые колебания 27-33.4 пг).

Величину 33 пг условно принимают за единицу (норма содержания гемоглобина в одном эритроците) и обозначают как цветовой показатель. По цветовому показателю судят о том, является ли содержание гемоглобина в эритроцитах исследуемого лица нормальным, пониженным или повышенным, что имеет важное диагностическое значение.

источник

В основу диагностики ложится ряд исследований, совокупность расшифровок которых являются показателями текущего состояния здоровья пациента. Одно из основных обследований по выявлению отклонений от норм — это общий анализ крови. Данные общего анализа крови по количественному содержанию нормальных веществ, и есть те самые решающие факторы, определяющие ход лечения и прогнозирования болезни.

Ни один врач не сможет установить диагноз, не сверившись с показателями общего анализа крови. Три четверти важной информации по состоянию здоровья выводится по результатам этого исследования.

Забор венозной крови дает полную информативность относительно тех результатов, которые получают при общем анализе, взятом из пальца. Проведение данной процедуры необходимо при подозрении на заболевание любой этиологии. Этот метод обусловлен минимальной травматичностью, высокой скоростью проведения и, при соблюдении всех условий стерильности, является самым безопасным способом диагностики.

После прощупывания сосуда в локтевом сгибе, лаборант резиновым жгутом перетягивает руку в районе предплечья таким образом, чтобы остановить венозный кровоток. Затем происходит антисептическая обработка места проведения пункции, и введение иглы шприца в вену. Нужное количество крови определяется характером проводимого анализа.

В течение взятия крови из вены, необходимо прислушиваться к рекомендации лаборанта, последовательно выполняя его требования (сжатие, расслабления мышцы руки и др.). В ситуации резкого головокружения, тошноты, потемнения в глазах, нужно немедленно сообщить об этом медику.

Значительно отличается методика забора крови из пальца. Совершается прокол безымянного пальца специальной иглой-скарификатором, затем первая выступившая кровь стирается (она не несет необходимой информации) и происходит трехфазовый забор. Первично набранная кровь идет на выяснение уровня гемоглобина и СОЭ, вторая порция — на выявление количественного наличия форменных элементов. Третья фаза включает в себе приложение к месту прокола стерильного стеклышка, используемого затем, для изучения состава крови под микроскопом.

Даже если методика выполнения забора анализа соответствовала всем основным требованиям, показатели крови могут быть искажены неправильным поведением самого пациента и игнорированием им подготовки, предшествующей анализу.

Существует набор определенных несложных правил, обуславливающих точность, соответствующую реальному состоянию человека:

  1. Исследование должно проводится натощак. Кушать перед ним нельзя на протяжении десяти часов минимум. Важно! Результаты анализа не могут считаться достоверными, если забор происходил во время продолжительных жестких ограничений в пище, строгих диет, резкой смены пищевых приоритетов (переход на вегетарианство, сыроедство);
  2. За день до обследования нельзя употреблять жирную пищу, а также перегружать почки и печень обилием белков. Последняя еда перед тем, как сдавать анализ, должна состоять преимущественно из постного мяса, круп, овощей. Пить чай, кофе, алкогольную продукцию, соки после последнего приема пищи не нужно. Воду пить можно в любом количестве;
  3. Исключить серьезные физические усилия непосредственно за 20-30 минут до сдачи крови;
  4. Также, категорически запрещено курить в этот временной промежуток;
  5. Если в данный период пациент употребляет антибиотики, препараты, без которых не может обойтись, лаборант, принимающий анализ, должен об этом знать и сделать соответствующую пометку. Различные БАДы, витамины, лекарства второстепенного значения, перед сдачей крови принимать не нужно;
  6. На точность результатов серьезно влияет рентгенологическое излучение. Нужно соотнести эти два исследования таким образом, чтобы сдача анализов произошла не ранее, чем спустя сутки после рентгена.

Самыми и важными показателями, по результатам ОАК считаются: значения по количеству гемоглобина, эритроцитов, ретикулоцитов, эозинофилов, базофилов, гемокрита, гемостаза, тромбоцитов; показатели цвета, СОЭ.

Чтобы выявить возможные отклонения, требуется сверить полученную расшифровку с показаниями таблиц нормального соответствия. Такие таблицы существуют отдельно для взрослых людей, детей грудничкового и более старшего возраста, женщин в период беременности.

Для понимания параметров, указанных на бланке расшифровки, мало их прочитать — необходимо точно знать, что из себя представляет каждый из них. Ниже представлены самые важные значения.

Гемоглобин — это главный элемент в составе эритроцитов (красных кровяных телец). Понижение данного показателя характеризует первичные проявления анемии, развивающейся вследствие дефицита железа в организме. Напротив, повышение значения, может сигнализировать о развитии таких заболеваний, как:

  • опухолевые;
  • раковые;
  • ВИЧ;
  • сердечные;
  • нарушения работы щитовидки;
  • легочные.

Лейкоциты — это клетки, отвечающие за иммунную защиту организма. Повышение их обосновано ответной реакцией на проникновение в организм инородных тел, токсинов, вирусов, причем раздражители могут как появиться извне, так и образоваться в результате внутреннего воспалительного процесса.

Эритроциты — это форменные элементы крови, имеющие в составе одинаковое количество гемоглобина. Эритроциты являются природными капсулами-транспортировщиками кислорода и углекислого газа по кровяному руслу сосудов.

Показания выше нормы количественных данных, может произойти в ответ на:

  • гипоксию;
  • различные хронические заболевания (в том числе, лейкоз, хронические бронхиты).

Понижение данных обусловлено:

  • проявлениями анемии;
  • воспалениями крови;
  • дефицитом витамина В12;
  • сильными кровотечениями.

Тромбоциты отвечают за поддержание жизнедеятельности гемостаза. Повышение их уровня возможно по причинам:

  • кровотечения;
  • чрезмерном физическом усилии;
  • недостатке железа;
  • туберкулезных заболеваниях;
  • циррозных поражениях печени;
  • ревматоидном артрите.
  • заболеваниями аутоиммунного аппарата;
  • усиленным разрушением тромбоцитов;
  • ДВС-синдромом.

Лейкоциты, это белый кровяные вещества, создающие в организме иммунный барьер от воздействия посторонней микробиологической среды. Завышенные значения лейкоцитов говорят о следующих факторах:

  • аллергической реакции;
  • заболевании лейкозом;
  • вирусном, инфекционном заболевании (грипп).

Показатели заниженные, сигнализируют о присутствии:

  • вирусных инфекций;
  • патологии иммунного аппарата генетического происхождения.

Общий анализ крови, известный под аббревиатурой ОАК, является первым клиническим обследованием, назначаемым врачом при жалобе пациента на плохое самочувствие. Большинство заболеваний первично диагностируются, ориентируясь на ОАК, как на достаточное обоснования для лечебных назначений. Доступность этого исследования позволяет получить результат в течении нескольких часов, не придерживаясь никакой очередности.

источник

Участие сестры в лабораторных методах исследования

Сестринский процесс предполагает всестороннюю оценку состояния здоровья пациента. Первый этап включает субъективное и объективное обследование. Объективное обследование определяет помимо физического обследования, дополнительные методы:

• инструментальные(рентгеноскопия, эндоскопия, УЗИ, радиоизитопные)

Материал для лабораторных исследований — это раз личные биологические жидкости (субстраты): кровь, её компоненты (плазма, эритроциты), моча, кал, желудочный сок, жёлчь, мокрота, выпотные жидкости (экссудат, транссудат), ткани паренхиматозных органов, получаемые при биопсии.

v Перед взятием биологического субстрата необходимо получить информированное согласие пациента на выполнение процедуры

v Необходимо соблюдать конфиденциальность результатов обследования.

Ø Срочность исследования биологического материала указывают символом «CITO»

Правила забора, хранения, и транспортировки биоматериала

• подготовку пациента перед взятием материала для исследования (забор крови в состоянии натощак, учет физиологических отправлений, сопутствующей патологии, приема лекарственных препаратов);

• идентичность условий сбора (требования к лабораторной посуде, объём и состояние материала);

• правила венозного жгута (длительное пережатие способствует увеличению концентрации гемоглобина, белков, минералов за счет выхода жидкости в ткани);

• применение ингибиторов и консервантов при необходимости (некоторые анализы мочи, кал на микрофлору);

• правила хранения (температурный режим,. сроки, лабораторная посуда, контейнеры, транспортные средства).

Факторы риска для лабораторных результатов:

фармакотерапия, техника забора, чистотa/ стерильность лабораторной посуды

гемолиз вследствие механического и холодового воздействия, нарушение пищевого режима

Достоверность результатов лабораторных методов исследования определяет исключение экзогенных и эндогенных факторов.

Виды лабораторий, их назначение

Определение физико-химических свойств биологических субстратов (например, общий анализ крови, мочи, мокроты; биохимическое исследование крови: холестерин, общий белок, билирубин; кал на скрытую кровь, яйца гельминтов, простейшие).

Для транспортировки биоматериалов в лабораторию используют специальные контейнеры (одноразового пользования) или чистую, сухую, стеклянную посуду.

Выявление микробного состава и идентификация микрофлоры (например, моча на стерильность, кал на кишечную группу, мазок из зева при подозрении на дифтерию).

Сестра получает для забора материала стерильную посуду, подготовленную в бактериологической лаборатории.

Проведение исследований по маркерам к некоторым инфекционным агентам, а также естественным (нормальным) антителам к широко распространенным бактериям и вирусам (кровь на ВИЧ, гепатиты В и С, RW-инфекцию).

Забор крови для различных методов исследования

К этому виду диагностики относится общий (клинический) анализ крови.

Общий анализ крови является одним из важнейших клинических исследований, которое проводится при большинстве заболеваний, а также в рамках профилактического обследования (диспансеризации). При диагностике заболеваний крови данному тесту отводится ведущая роль.

Важно:общий анализ крови из пальца берут натощак в утренние часы. Во избежание искажения результатов за 8 часов нельзя принимать пищу, а пить можно только воду.

Перед анализом крови не допускается прием напитков, содержащих алкоголь, а также чая, кофе и соков.

Традиционно забор крови проводят из безымянного пальца, проколов кожу стерильным скарификатором на глубину в 2-3 мм. Первую каплю обычно удаляют с помощью ватного тампона, затем набирают кровь для определения уровня гемоглобина и скорости оседания эритроцитов, следующую порцию – для установления количества белых и красных кровяных телец. Мазки для микроскопии делают с помощью стекол.

Лабораторное исследование предполагает:

· определение количества различных форменных элементов (клеток);

· установление основных параметров клеток крови (размер, вид и пр.);

· измерение уровня (концентрации) гемоглобина;

· определение лейкоцитарной формулы;

Биохимический анализ крови – это комплекс лабораторных методов исследования различных показателей крови отражающих состояние обмена веществ и функций внутренних органов.

Он позволяет определить у обследуемого:

· уровень содержания глюкозы (анализ крови на сахар);

· белки, в частности альбумины, С-реактивный белок

· ферменты плазмы крови. Аминотрансферазы –;

· пигменты. Самый важный среди них – билирубин.;

· калий — уменьшение содержание этого элемента в крови свидетельствует об обезвоживании, длительном применении мочегонных препаратов, заболеваниях почек, обменных болезнях. Увеличение калия наблюдается при тяжелых травмах, ожогах;

· натрий — снижается в анализе из-за недостаточного поступления с пищей, при обильной потере жидкости, ожогах, потоотделении, поносах, рвоте, приеме мочегонных. Увеличение наступает при сердечных проблемах, повышенном артериальном давлении, почечной недостаточности;

· кальций, фосфаты — отклонение от нормы этих элементов бывает при различных патологиях – нарушениях обмена веществ, рахите, проблемах всасываемости в ЖКТ, почечной недостаточности и т.д.;

· кислотно-щелочное состояние (КОС). По степени изменения этого показателя можно обнаружить состояние алкалоза и ацидоза в организме.

источник