Меню Рубрики

Соп по общему анализу крови

СИСТЕМА МЕНЕДЖМЕНТА КАЧЕСТВА

СТАНДАРТНАЯ ОПЕРАЦИОННАЯ ПРОЦЕДУРА

1 Область применения

Настоящая стандартизованная операционная процедура (далее – СОП) определяет порядок выполнения общего анализа крови.

Настоящая СОП предназначена для врача клинической лабораторной диагностики, биолога и фельдшера-лаборанта.

2 Нормативные ссылки

2.1 ГОСТ Р 53079.4 – 2008. Технологии лабораторные клинические. Обеспечение качества лабораторных исследований. Часть 4. Правила ведения преаналитического этапа.

2.2 Руководство пользователя автоматического гематологического анализатора SysmexKX-21.

2.3 С. А. Луговская и др. «Гематологические анализаторы. Интерпретация общего анализа крови».

2.5 Инструкция по применению красителя азур-эозин по Романовскому

2.6 С. А. Луговская и соавт. «Лабораторная гематология»

2.7 Справочник заведующего КДЛ №1 январь 2009 г. М. М. Антипов «Скорость оседания эритроцитов. Современные методы определения и клиническая интерпретация».

2.8 Руководство для пользователей автоматического анализатора СОЭ SRS20/II

2.9 Руководство по эксплуатации модуля окрашивания мазковHematekSlideStainer.

3 Термины и определения

3.1. Клинический анализ крови (общий анализ крови) – анализ качественных и количественных свойств форменных элементов крови.

3.2. Лейкограмма — процентное соотношение различных видов лейкоцитов, определяемое при подсчёте их в окрашенном мазке крови под микроскопом.

4 Общие положения

Клинический анализ крови – один из важнейших диагностических методов, тонко отражающих реакцию кроветворных органов на воздействие различных физиологических и патологических факторов. Общеклиническое исследование крови имеет большое значение в постановке диагноза, а при заболеваниях системы кроветворения ему отводят ведущую роль.

5 Требования к обеспечению выполнения технологии

5.1 Лабораторное оборудование: автоматический гематологический анализатор SysmexKX-21, ротамикс RM1-L, микроскоп бинокулярный с иммерсией и встроенным осветителем LeicaDM1000, счетчик лейкоцитарной формулы крови СЛФ-ЭЦ-01-09, автоматический анализатор СОЭSRS 20/II, модуль окрашивания мазков HematekSlideStainer.

5.2 Реагенты, реактивы: Диюлент CELLPACK,WBC/RBC лизирующий раствор STROMATOLYSER-WH, детергент CELLCLEAN, набор реагентов для автоматической окраски препаратов крови и костного мозга (НПФ Арбис+)

5.3 Прочий расходуемый материал: масло иммерсионное, предметные стекла, шпатель для приготовления мазков крови Flexi-strip, вакуумная система для забора крови BDVacutainerK2E, вакуумная система для забора крови Vacuette 4NCESRsodiumcitrate, перчатки медицинские, дезинфицирующее средство «Мелисептол», спирт медицинский 70%, дозатор автоматическмй 20-200 мкл, наконечники для автоматического дозатора, штативы для предметных стекол, буферная смесь для гематологических исследований (производства НПФ «Абрис+»), штативы для предметных стекол, штативы пластиковые для пробирок, марля, вода дистиллированная, бумага фильтровальная, цилиндры мерные вместимостью 25-1000 мл, таймер.

6 Требования к технологии выполнения исследования (работ)

6.1 Взятие образца: для общего анализа крови используется венозная кровь. Забор крови производится с использованием вакуумной системы BDVacutainerK2E, для определения СОЭ используются система для забора кровиVacuette 4NCESRsodiumcitrate . Пробы крови доставляются в течении 1 часа в лабораторию при соблюдении температурного режима 2-8 о С . Технология взятия и требования к преаналитическому этапу согласно ГОСТ Р 53079.4 – 2008. Технологии лабораторные клинические. Обеспечение качества лабораторных исследований. Часть 4. Правила ведения преаналитического этапа.

6.2 Идентификация и приемлемость образца: при поступлении образца крови в лабораторию лаборант, принимающий материал, должен проверить правильность оформления направления на анализ, маркировку пробирки (наличие штрих-кода), оценить объем пробы, отсутствие видимых сгустков, дату и время забора крови, время доставки образца в лабораторию и соблюдение правил транспортировки, в случае необходимости отметить в бланке отсрочку анализа и использование охлаждения образца, зарегистрировать полученный материал. Перед проведением исследования образцы должны быть доведены до комнатной температуры.

6.3 Технология исследования.

Этапы клинического исследования крови:

  1. Выполнение исследования на гематологическом анализаторе (показатели: количество лейкоцитов (WBC), количество эритроцитов (RBC), концентрация гемоглобина (HGB), гематокрит (HCT), количество тромбоцитов (PLT), средний объем эритроцита (MCV), среднее содержание гемоглобина в эритроцитах (MCH), средняя концентрация гемоглобина в эритроците (MCHC), показатель гетерогенности эритроцитов по объему (RDW-CV, RDW-SD), взвешенное распределение тромбоцитов (PDW), средний объем тромбоцита (MPV), отношение (%) объема крупных тромбоцитов ко всему объему тромбоцитов (P-LCR)): образцы помещаются в ротамикс для перемешивания пробы в течении 3-5 минут. С помощью сканера с пробирки считывается штрих-код. Порядок проведения аналитической процедуры на гематологическом анализаторе см. «Руководство пользователя автоматического гематологического анализатора SysmexKX-21» п. 2.4.1.
  2. После аспирации образца анализатором на предметное стекло с помощью дозатора наносится 10 мкл крови и с помощью шпателя готовится мазок крови. Приготовление и покраска мазков см. Руководство по эксплуатации модуля окрашивания мазков HematekSlideStainer.
  3. Установка пробирок для определения СОЭ по методу Вестергрена в автоматический анализатор СОЭ SRS20/II.
    1. Подсчет лейкоцитарной формулы в мазке производится с помощью бинокулярного микроскопа Leica и счетчика лейкоцитарной формулы крови. Технологию подсчета см. С. А. Луговская и соавт. «Лабораторная гематология» «Морфологическое исследование мазков крови». Лейкоцитарная формула записывается в виде лейкограммы на бланк распечатки результатов анализа, выполненного на гематологическом анализаторе.
    2. Показатели исследования, выполненные на гематологическом анализаторе, переносятся в электронную форму бланка ответа автоматически. Лейкограмма с указанием особенностей морфологии эритроцитов и лейкоцитов и СОЭ вносятся вручную, проверяются врачом лабораторной диагностики, утверждаются и отправляются в регистратуру медицинского центра. Бланк распечатки результатов общего анализа крови с гематологического анализатора вклеивается в бумажный журнал регистрации исследований общего анализа крови.

7. Обеспечение качества выполнения исследования

7.1 Контроль качества оборудования и материалов

Контроль работы оборудования проводится согласно документированной процедуре «Управление оборудованием».

Наборы реагентов используются в пределах установленных сроков годности и хранятся при регламентированных в паспорте условиях.

7.2 Контроль качества исследования

Контроль качества работы гематологического анализатора см. «Руководство пользователя автоматического гематологического анализатора SysmexKX-21» п. 5, Х контроль.

7.3 Регистрация контрольных мероприятий

Результаты контроля качества выводятся на компьютер и хранятся в электронном виде.

источник

Цель: диагностическая — взятие крови на общий клинический анализ: определение количественного и качественного состава форменных элементов крови (эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов), определение количества гемоглобина в крови и скорости оседания эритроцитов (СОЭ), определение содержания в крови глюкозы, а также свертываемости крови и времени кровотечения.

Показание: по назначению врача.

Места прокола кожи: мочка уха. безымянный палец, пятка ножки новорожденного.

Приготовьте: стерильные: копье-скарификатор, ватные шарики, перчатки, кожный антисептик, 5% раствор йода, КБСУ.

1. Медицинская сестра накануне исследования должна предупредить пациента о предстоящем заборе крови и разъяснить, что кровь берут натощак, до приема лекарственных средств, а на ужин не следует употреблять жирную пищу.

2. Усадите удобно пациента.

3. Проведите деконтаминацию рук на гигиеническом уровне, обработайте их кожным антисептиком, наденьте перчатки.

4. Возьмите левой рукой IV палец левой руки пациента так, чтобы ваш первый палец располагался с тыльной поверхности кисти пациента, а остальные — с ладонной.

5. Обработайте место прокола двумя стерильными ватными шариками, смоченными кожным антисептиком и дайте ему высохнуть, иначе выступившая после прокола кровь растекается по пальцу.

6. Слегка сдавите ногтевую фалангу пальца пациента и держа копье- скарификатор перпендикулярно произведите прокол влево от срединной линии, немного отступя от ногтя.

7. Разрез должен располагаться поперек кожных линий пальца, ранка будет зиять, кровь из нее пойдет легко и обильно. Разрез, расположенный вдоль кожных линий, быстро спадает. Не следует делать прокол около самого ногтя, так как кровь затекает под него и набирать ее для исследования трудно,

8. Сотрите первую каплю крови стерильным сухим ватным шариком.

9. Для каждого исследования кровь набирают из новой капли.

10. После взятия крови место прокола обработайте 5% раствором йода.

11. Использованный инструментарий поместите в КБСУ.

— при ожогах и обморожениях кистей рук, у лиц с утолщенной и загрубевшей кожей на пальцах, кровь можно взять с мочки уха;

— у грудных детей кровь берут из большого пальца ноги или из пятки.

ЗАБОР КРОВИ ДЛЯ БИОХИМИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ ИЗ

Показание: обследование пациента.

Осложнения: гематома, тромбофлебит, сепсис, вирусный гепатит, СПИД.

Место взятия крови: вены локтевого сгиба предплечья, кисти.

Приготовьте: стерильные: шприц однократного применения емкостью 10-20 мл. лоток, ватные шарики, салфетки, кожный антисептик, передник, маску, защитные очки, перчатки, пробирки с непромокаемыми пробками в штативе; резиновый жгут (венозную манжетку), клеенчатую подушечку, КБСУ.

1. Объясните пациенту цель и ход процедуры, получите согласие. Уточните, не

2. Напишите направление в лабораторию, пронумеруйте пробирку.

3. Помогите пациенту занять удобное положение.

4. Проведите деконтаминацию рук на гигиеническом уровне, обработайте их кожным антисептиком (см. стандарт).

5. Наденьте перчатки (ем. стандарт), маску, защитные очки, передник.

6. Соберите шприц однократного применения (см. стандарт).

7. Подложите под локоть пациента клеенчатую подушечку.

8. Наложите резиновый жгут на среднюю треть плеча на салфетку или на нательное белье.

9. Завяжите жгут так, чтобы свободные концы были направлены вверх, а петля вниз.

10. Прощупайте пульс на лучевой артерии ( пульс должен быть сохранен).

11. Исследуйте вену. Найдите наиболее наполненную вену.

12. Попросите пациента несколько раз сжимать и разжимать кулак для наполнения вены, затем зажать его.

13. Обработайте перчатки кожным антисептиком.

14. Обработайте область локтевого сгиба, место инъекции последовательно двумя ватными шариками, смоченными в кожном антисептике. Третий ватный шарик держите в левой руке между IV и V пальцами.

15. Возьмите шприц в правую руку: II палец на канюле иглы, а III, IV пальцы

охватывают цилиндр сверху, I палец снизу.

16. Зафиксируйте вену ниже предполагаемого места прокола большим пальцем левой руки.

17. Снимите колпачок с иглы и пунктируйте вену, как обычно ( кулак пациента при этом сжат).

18. Потяните поршень на себя, убедитесь, что игла в вене.

19. Наберите в шприц 5-7 мл крови, левой рукой медленно оттягивая поршень на

20. Снимите жгут, кулак пациент должен разжать, быстрым движением извлеките иглу из вены.

21. Приложите ватный шарик с кожным антисептиком на место инъекции на 3-5 минуг, попросив пациента слегка согнуть руку в локтевом суставе.

22. Снимите иглу со шприца, поместите в КБСУ.

23. Выпустите кровь из шприца медленно без напора в пробирку по стенке, не допуская ее разбрызгивания.

24. Закройте пробирку непромокаемой пробкой.

25. Пробирку с кровью вместе со штативом поставьте в контейнер, плотно закройте его.

26. Помогите пациен ту вст ать или занять комфортное положение.

27. Убедитесь, что кровь не выделяется из места прокола вены, возьмите у пациента ватный шарик и поместите его в КБСУ.

28. Отправьте контейнер и направление в биохимическую лабораторию.

29. Снимите перчатки, поместите в КБСУ.

30. Вымойте и осушите руки.

забор крови из вены на биохимический анализ проводится утром натощак в количестве 10 мл;

забор крови.на ВИЧ и производят в любое время дня в количестве 5

— пробирка для забора крови должна быть сухой (иначе наступает гемолиз эритроцитов), химически чистой, иметь притертую резиновую пробку; запрещается проводить забор крови без шприца — только иглой (имеется опасность разбрызгивания крови);

— в направлении укажите номер пробирки, цель исследования. Ф И О, пол, возраст пациента, диагноз, отделение;

наличие безопасной системы забора крови вакутайнер (ВО УАСиГАІЫЕК) создает максимальную защиту медперсонала, обеспечивает качество забираемого материала

ЗАБОР ВЕНОЗНОЙ КРОВИ С ПОМОЩЬЮ ВАКУУМНОЙ

Вакуумная система забора крови — это безопасная система забора, транспортировки и качественного анализа образцов крови. Вакутайнер — полностью закрытая вакуумная пластиковая одноразовая система для взятия крови из вены.

Состоит из трех компонентов:

1. Двусторонней иглы с клапаном безопасности.

3. Стерильных пробирок с определенным объемом вакуума.

Преимущества: безопасность, эффективность, гарантия целостности образца и воспроизводимости исследования, минимум гемолиза, минимум микросгустков, время между забором образца и его контактом с добавкой постоянное; точность соотношения объемов кровь/добавка; минимальный эффект жгута, стерильность образца.

Показание: обследование пациента.

Осложнения: гематома, тромбофлебит, сепсис.

Место взятия крови: вены локтевого сгиба, предплечья, кисти.

Приготовьте: стерильные: двустороннюю иглу с клапаном безопасности, одноразовый держатель, вакуумные пробирки, ватные шарики, перчатки, лоток, кожный антисептик, жгут (венозную манжетку), клеенчатую подушечку, маску, передник, защитные очки или экран, контейнер для транспортировки пробирок, КБСУ.

1. Объясните пациенту цель и ход процедуры, получите согласие. Уточните, не позавтракал ли пациент.

2. Напишите направление в лабораторию.

3. Помогите пациенту занять удобное положение.

4. Проведите деконтаминацию рук на гигиеническом уровне, обработайте их кожным антисептиком.

5. Наденьте маску и перчатки, защитные очки, передник.

6. Возьмите систему для сбора крови.

7. Проверьте герметичность упаковки и срок годности основных компонентов забора крови.

9. Возьмите иглу, снимите защитный колпачок (при использовании 2-х сторонней иглы — снять серый защитный колпачок).

10. Вставьте иглу в иглодержатель, завинтите до упора.

11. Усадите или уложите пациента, освободив верхнюю конечность от одежды, подложив под локоть подушечку и опустив руку вниз.

12. Наложите венозную манжетку (жгут) на среднюю треть плеча на нательное белье или салфетку.

13. Прощупайте пульс на лучевой артерии (пульс должен быть сохранен).

14. Исследуйте вену. Найдите наиболее наполненную вену.

15. Попросите пациента несколько раз сжимать и разжимать кулак для наполнения вены, затем зажать его.

16. Обработайте кожным антисептиком перчатки.

17. Обработайте область локтевого сгиба, место инъекции последовательно двумя ватными шариками, смоченными кожным антисептиком, сбросьте в КБСУ. Третий ватный шарик держите в левой руке между IV и V пальцами.

18. Возьмите систему в правую руку.

19. Зафиксируйте вену ниже предполаг аемого места прокола большим пальцем левой руки.

20. Держите иглу и иглодержатель под углом 15° по отношению к руке пациента. і Введите иглу, продвигая ее по току крови на 1- 1,5 см.

21. Переложите иглодержатель в левую руку, а правой рукой вставьте пробирку в > иглодержатель до упора и обеспечьте поступление крови.

22. При поступлении крови в стерильную пробирку снимите жгут.

23. Извлеките из держателя пробирку с полученным образцом крови.

24. Перемешайте содержимое пробирки, переворачивая ее 8 — 10 раз, но невстряхивайте.

25. Вставьте в держатель следующую пробирку, при необходимости забора крови I на другие исследования.

26. Поставьте пробирку в контейнер для транспортировки крови.

27. Приложите стерильный ватный шарик к месту венепункции, извлеките иглу из г вены и снимите с иглодержателя.

28. Прижмите стерильный шарик к месту венепункции и предложите пациенту согнуть руку в локтевом суставе и подержать его 3-5 минут.

29. Промаркируйте пробирки.

30. Зарегистрируйте данные в журнале забора крови на исследование и отправьте

кровь в вакуумной пробирке в контейнере вместе с направлением в

31. Снимите средства защиты и поместите в КБСУ.

32. Вымойте и осушите руки.

Примечание: введение пробирки в иглодержатель до упора обеспечивает поступление крови, т.к. игла прокалывает резиновую мембрану и заглушку крышки пробирки. Кровь проходит в пробирку, пока не компенсирует созданный вакуум. Непоступление крови — показатель прокола вены насквозь, в этих случаях необходимо потянуть иглу (не извлекая) пока кровь не поступит в пробирку.

Читайте также:  В анализе крови что означает нст

При извлечении пробирки из иглодержателя резиновая мембрана приходит в Исходное положение, перекрывает ток крови по игле. При необходимости используют различные пробирки в зависимости от назначенных врачом тестов.

Моча – продукт обмена веществ, образующийся в почках в результате фильтрации жидкой части крови, а также процессов реабсорбции и секреции разных аналитов. Состоит на 96% из воды, остальные 4% приходятся на растворенные в ней азотистые продукты обмена белков (мочевина, мочевая кислота, креатинин и др.), минеральные соли и др. вещества.

Общий анализ мочи у детей и взрослых включает оценку физико-химических характеристик мочи и микроскопию осадка. Данное исследование позволяет оценить функцию почек и других внутренних органов, а также выявить воспалительный процесс в мочевых путях

Физико-химические исследования мочи включают оценку следующих показателей:

  • цвет;
  • прозрачность мочи;
  • удельный вес (относительная плотность);
  • рН;
  • концентрация белка;
  • концентрация глюкозы;
  • концентрация билирубина;
  • концентрация уробилиногена;
  • концентрация кетоновых тел;
  • концентрация нитритов;
  • концентрация гемоглобина.

Микроскопия мочевого осадка включает оценку следующих объектов:

  • Организованный осадок мочи:
    • присутствие эритроцитов;
    • лейкоцитов;
    • эпителиальных клеток;
    • цилиндров;
    • бактерии;
    • дрожжевых грибов;
    • паразиты;
    • опухолевые клетки;
  • Неорганизованный осадок мочи (кристаллы и аморфные соли).

Оценка физических свойств мочи, таких как запах, цвет, мутность, проводится органолептическим методом. Удельный вес мочи измеряется при помощи урометра, рефрактометра или оценивается методами «сухой химии» (тест-полоски) – визуально или на автоматических анализаторах мочи.

У взрослого человека моча желтого цвета. Оттенок ее может колебаться от светлого (почти бесцветного) до янтарного. Насыщенность желтого цвета мочи зависит от концентрации растворенных в ней веществ. При полиурии моча имеет более светлую окраску, при уменьшении диуреза приобретает насыщенно-желтый оттенок. Окраска меняется при приеме лекарственных препаратов (салицилаты и др.) или употреблении некоторых пищевых продуктов (свекла, черника).

Патологически измененная окраска мочи бывает при:

  • гематурии – вид «мясных помоев»;
  • билирубинемии (цвет пива);
  • гемоглобинурии или миоглобинурии (черный цвет);
  • лейкоцитурии (молочно-белый цвет).

В норме свежесобранная моча совершенно прозрачна. Мутность мочи обусловлена наличием в ней большого количества клеточных образований, солей, слизи, бактерий, жира.

В норме запах мочи нерезкий. При разложении мочи бактериями на воздухе или внутри мочевого пузыря, например в случае цистита, появляется аммиачный запах. В результате гниения мочи, содержащей белок, кровь или гной, например при раке мочевого пузыря, моча приобретает запах тухлого мяса. При наличии в моче кетоновых тел моча имеет фруктовый запах, напоминающий запах гниющих яблок.

Почки выделяют из организма «ненужные» и задерживают необходимые вещества для обеспечения обмена воды, электролитов, глюкозы, аминокислот и поддержания кислотно-основного баланса. Реакция мочи – рН – в значительной мере определяет эффективность и особенность этих механизмов. В норме реакция мочи слабокислая (рН 5,0–7,0). Она зависит от многих факторов: возраста, диеты, температуры тела, физической нагрузки, состояния почек и др. Наиболее низкие значения рН – утром натощак, наиболее высокие – после еды. При употреблении преимущественно мясной пищи – реакция более кислая, при употреблении растительной – щелочная. При длительном стоянии моча разлагается, выделяется аммиак и рН сдвигается в щелочную сторону.

Щелочная реакция мочи характерна для хронической инфекции мочевыводящих путей, также отмечается при поносе и рвоте.

Кислотность мочи увеличивается при лихорадочных состояниях, сахарном диабете, туберкулезе почек или мочевого пузыря, почечной недостаточности.

Удельный вес (относительная плотность) мочи

Относительная плотность отражает функциональную способность почек концентрировать и разводить мочу. Для нормально функционирующих почек характерны широкие колебания удельного веса мочи в течение суток, что связано с периодическим приемом пищи, воды и потерей жидкости организмом. Почки в различных условиях могут выделять мочу с относительной плотностью от 1,001 до 1,040 г/мл.

  • гипостенурию (колебания удельного веса мочи менее 1,010 г/мл);
  • изостенурию (появление монотонного характера удельного веса мочи соответствующее таковому первичной мочи (1,010 г/мл);
  • гиперстенурию (высокие значения удельного веса).

Максимальная верхняя граница удельного веса мочи у здоровых людей – 1,028 г/мл, у детей – 1,025 г/мл. Минимальная нижняя граница удельного веса мочи составляет 1,003–1,004 г/мл.

Для оценки химического состава мочи в настоящее время, как правило, применяют диагностические тест-полоски (метод «сухой химии»), выпускаемые разными производителями. Химические методы, используемые в тест-полосках, основаны на цветных реакциях, дающих изменение цвета тестовой зоны полоски при разных концентрациях аналита. Изменение окраски определяется визуально или с помощью отражательной фотометрии с использованием полуавтоматических или полностью автоматизированных анализаторов мочи, результаты оцениваются качественно или полуколичественно. При обнаружении патологического результата исследование может быть выполнено повторно с использованием химических методов.

Белок в норме в моче отсутствует или присутствует в неопределяемой обычными методами концентрации (следы). Выявляют несколько видов протеинурии (появление белка в моче):

  • физиологическая (ортостатическая, после повышенной физической нагрузки, переохлаждении);
  • клубочковая (гломерулонефрит, действие инфекционных и аллергических факторов, гипертоническая болезнь, декомпенсация сердечной деятельности);
  • канальцевая (амилоидоз, острый канальцевый некроз, интерстициальный нефрит, синдром Фанкони).
  • преренальная (миеломная болезнь, некроз мышечной ткани, гемолиз эритроцитов);.
  • постренальная (при циститах, уретритах, кольпитах).

В норме глюкоза в моче отсутствует. Появление глюкозы в моче может иметь несколько причин:

  • физиологическая (стресс, прием повышенного количества углеводов);
  • внепочечная (сахарный диабет, панкреатит, диффузные поражения печени, рак поджелудочной железы, гипертиреоз, болезнь Иценко-Кушинга, черепно-мозговые травмы, инсульты);
  • ренальная (почечный диабет, хронические нефриты, острая почечная недостаточность, беременность, отравление фосфором, некоторыми лекарственными препаратами).

Билирубин в норме в моче отсутствует. Билирубинурия выявляется при паренхиматозных поражениях печени (гепатиты), механической желтухе, циррозах, холестазе, в результате действия токсических веществ.

Нормальная моча содержит низкую концентрацию (следы) уробилиногена. Уровень его резко возрастает при гемолитической желтухе, а также при токсических и воспалительных поражениях печени, кишечных заболеваниях (энтериты, запоры).

К кетоновым телам относятся ацетон, ацетоуксусная и бета-оксимаслянная кислоты. Увеличение выделения кетонов с мочой (кетонурия) появляется при нарушении углеводного, липидного или белкового обмена.

Нитриты в нормальной моче отсутствуют. В моче они образуются из нитратов пищевого происхождения под влиянием бактерий, если моча не менее 4 часов находилась в мочевом пузыре. Обнаружение нитритов в правильно хранившихся образцах мочи свидетельствует об инфицировании мочевого тракта.

В норме в моче отсутствует. Гемоглобинурия – результат внутрисосудистого гемолиза эритроцитов с выходом гемоглобина – характеризуется выделением мочи красного или темно-бурого цвета, дизурией, нередко болями в пояснице. При гемоглобинурии эритроциты в осадке мочи отсутствуют.

Осадок мочи делят на организованный (элементы органического происхождения – эритроциты, лейкоциты, эпителиальные клетки, цилиндры и др.) и неорганизованный (кристалы и аморфные соли).

Исследование проводят визуально в нативном препарате с использованием микроскопа. Кроме визуального микроскопического исследования, применяется исследование с помощью автоматических и полуавтоматических анализаторов.

За сутки с мочой выделяется 2 млн. эритроцитов, что при исследовании осадка мочи составляет в норме 0–3 эритроцита в поле зрения для женщин и 0–1 эритроцит в поле зрения у мужчин. Гематурией называют увеличение эритроцитов в моче выше указанных значений. Выделяют макрогематурию (изменен цвет мочи) и микрогематурию (цвет мочи не изменен, эритроциты обнаруживаются только при микроскопии).

В мочевом осадке эритроциты могут быть неизмененные (содержащие гемоглобин) и измененные (лишенные гемоглобина, выщелоченные). Свежие, неизмененные эритроциты характерны для поражения мочевыводящих путей (цистит, уретрит, прохождение камня).

Появление в моче выщелоченных эритроцитов имеет большое диагностическое значение, т.к. они чаще всего имеют почечное происхождение и встречаются при гломерулонефритах, туберкулезе и других заболеваниях почек. Для определения источника гематурии применяют трехстаканную пробу. При кровотечении из уретры гематурия бывает наибольшей в первой порции (неизмененные эритроциты), из мочевого пузыря – в последней порции (неизмененные эритроциты). При других источниках кровотечения эритроциты распределяются равномерно во всех трех порциях (выщелоченные эритроциты).

Лейкоциты в моче здорового человека содержатся в небольшом количестве. Норма для мужчин 0–3, для женщин и детей 0–6 лейкоцитов в поле зрения.

Увеличения числа лейкоцитов в моче (лейкоцитурия, пиурия) в сочетании с бактериурией и наличием клинических симптомов свидетельствует о воспалении инфекционной природы в почках или мочевыводящих путях.

В мочевом осадке практически всегда встречаются клетки эпителия. В норме в анализе мочи не больше 10 эпителиальных клеток в поле зрения.

Эпителиальные клетки имеют различное происхождение:

  • клетки плоского эпителия попадают в мочу из влагалища, уретры, их наличие особого диагностического значения не имеет;
  • клетки переходного эпителия выстилают слизистую оболочку мочевого пузыря, мочеточников, лоханок, крупных протоков предстательной железы. Появление в моче большого количества клеток такого эпителия может наблюдаться при мочекаменной болезни, новообразованиях мочевыводящих путей и воспалении мочевого пузыря, мочеточников, лоханок, крупных протоков предстательной железы;
  • клетки почечного эпителия выявляются при поражении паренхимы почек, интоксикациях, лихорадочных, инфекционных заболеваниях, расстройствах кровообращения.

Цилиндр – белок, свернувшийся в просвете почечных канальцев и включающий в состав своего матрикса любое содержимое просвета канальцев. Цилиндры принимают форму самих канальцев (слепок цилиндрической формы). В норме в пробе мочи, взятой для общего анализа цилиндры отсутствуют. Появление цилиндров (цилиндрурия) является симптомом поражения почек.

  • гиалиновые (с наложением эритроцитов, лейкоцитов, клеток почечного эпителия, аморфных зернистых масс);
  • зернистые;
  • восковидные;
  • пигментные;
  • эпителиальные;
  • эритроцитарные;
  • лейкоцитарные;
  • жировые.

Основным компонентом неорганизованного осадка мочи являются соли в виде кристаллов или аморфных масс. Характер солей зависит от рН мочи и других свойств мочи. Например, при кислой реакции мочи обнаруживаются мочевая кислота, ураты, оксалаты, при щелочной реакции мочи – кальций, фосфаты, мочекислый аммоний. Особого диагностического значения неорганизованный осадок не имеет, косвенно можно судить о склонности пациента к мочекаменной болезни. При ряде патологических состояний в моче могут появляться кристаллы аминокислот, жирных кислот, холестерина, билирубина, гематоидина, гемосидерина и т.д.

Появление в моче лейцина и тирозина говорит о выраженном расстройстве обмена веществ, отравлении фосфором, деструктивном заболевании печени, пернициозной анемии, лейкозе.

Цистин – врожденное нарушение цистинового обмена – цистиноз, цирроз печени, вирусный гепатит, состояние печеночной комы, болезнь Вильсона (врожденный дефект обмена меди).

Ксантин – ксантинурия обусловлена отсутствием ксантиноксидазы.

В норме моча в мочевом пузыре стерильна. При мочеиспускании в нее попадают микробы из нижнего отдела уретры.

Появление в общем анализе мочи бактерий и лейкоцитов на фоне симптомов (дизурия или лихорадка) свидетельствует о клинически проявляющейся мочевой инфекции.

Наличие в моче бактерий (даже в сочетании с лейкоцитами) при отсутствии жалоб расценивается как бессимптомная бактериурия. Бессимптомная бактериурия повышает риск инфекции мочевых путей, особенно при беременности.

Обнаружение грибов рода Саndida свидетельствует о кандидамикозе, возникающего чаще всего в результате нерациональной антибиотикотерапии, приеме иммуносупрессоров, цитостатиков.

В осадке мочи могут быть обнаружены яйца кровяной шистосомы (Schistosoma hematobium), элементы эхинококкового пузыря (крючья, сколексы, выводковые капсулы, обрывки оболочки пузыря), мигрирующие личинки кишечной угрицы (стронгилиды), смываемые мочой с промежности онкосферы тениид, яйца острицы (Enterobius vermiсularis) и патогенные простейшие – трихомонады (Trichomonas urogenitalis), амебы (Entamoeba histolitika – вегетативные формы).

Для общего анализа собирают утреннюю порцию мочи. Сбор мочи проводят после тщательного туалета наружных половых органов без применения антисептиков. Для исследования используется свежесобранная моча, хранившаяся до анализа не более четырех часов. Образцы стабильны при температуре 2–8 °С не более 2 сут. Использование консервантов нежелательно. Перед исследованием мочу тщательно перемешивают.

Чем бы вы ни захворали, первым анализом, на который отправит вас грамотный врач, будет общий (общеклинический) анализ крови, рассказывает наш эксперт — кардиолог, врач высшей категории Тамара Огиева.

Кровь для общего анализа берется венозная или капиллярная, то есть из вены или из пальца. Первичный общий анализ можно сдавать не натощак. Развернутый же анализ крови сдается только натощак.

Для биохимического анализа кровь придется сдавать только из вены и обязательно натощак. Ведь если вы выпьете с утра, скажем, кофе с сахаром, непременно изменится содержание глюкозы в крови и анализ будет неправильным.

В идеале кровь на общий анализ крови рекомендуется сдавать после короткого отдыха, так как при волнении и физическом напряжении могут изменяться некоторые показатели.

Грамотный врач обязательно учтет ваш пол и физиологическое состояние. Например, у женщин во время “критических дней” увеличивается СОЭ и уменьшается количество тромбоцитов.

Общий анализ дает больше информации о воспалениях и состоянии крови (склонности к тромбам, наличии инфекций), а биохимический анализ отвечает за функциональное и органическое состояние внутренних органов — печени, почек, поджелудочной.

Показатели общего анализа:

1. ГЕМОГЛОБИН (Hb) — пигмент крови, содержится в эритроцитах (красных кровяных тельцах), основная его функция — это перенос кислорода от легких к тканям и выведение углекислого газа из организма.

Нормальные значения для мужчин 130-160 г/л , женщин — 120-140 г/л.

Пониженный гемоглобин бывает при анемиях, кровопотере, скрытом внутреннем кровотечении, при поражении внутренних органов, например, почек и т.д.

Повышаться может при обезвоживании организма, при заболеваниях крови и некоторых видах сердечной недостаточности.

2. ЭРИТРОЦИТЫ — клетки крови, содержат гемоглобин.

Нормальные значения (4.0-5.1) * 10 в 12-й степени/л и (3.7-4.7) * 10 в 12-й степени /л, для мужчин и женщин соответственно.

Повышение эритроцитов в крови бывает, например, у здоровых людей на большой высоте в горах, а также при врожденных или приобретенных пороках сердца, болезнях бронхов, легких, почек и печени. Повышение может быть связано с избытком стероидных гормонов в организме. Например, при болезни и синдроме Кушинга, или при лечении гормональными препаратами.

Понижение — при анемии, острой кровопотере, при хронических воспалительных процессах в организме, а также на поздних сроках беременности.

3. ЛЕЙКОЦИТЫ — белые клетки крови, они образуются в костном мозге и лимфатических узлах. Основная их функция — защита организма от неблагоприятных воздействий. Норма — (4.0-9.0) х 10 в 9-й степени /л. Превышение говорит о наличии инфекции и воспалении.

Существует пять видов лейкоцитов (лимфоциты, нейтрофилы, моноциты, эозинофилы, базофилы), каждый из них выполняет определенную функцию. При необходимости делают развернутый анализ крови, который показывает соотношение всех пяти видов лейкоцитов. Например, если уровень лейкоцитов в крови повышен, развернутый анализ покажет, за счет какого вида увеличилось их общее число. Если за счет лимфоцитов, то в организме есть воспалительный процесс, если больше нормы эозинофилов, то можно заподозрить аллергическую реакцию.

Почему лейкоцитов бывает много?

Существует множество состояний, при которых наблюдается изменение уровня лейкоцитов. Это не обязательно говорит о болезни. Лейкоциты, как, впрочем, и все показатели общего анализа, реагируют на различные изменения в организме. Например, при стрессе, беременности, после физического напряжения их количество увеличивается.

Повышенное количество лейкоцитов в крови (по-другому лейкоцитоз) бывает и при:

+ злокачественных новообразованиях и лейкозах,

+ приеме гормональных препаратов, некоторых сердечных препаратов (например, дигоксина).

А вот пониженное количество лейкоцитов в крови (или лейкопения): такое состояние часто бывает при вирусной инфекции (например, при гриппе) или приеме некоторых лекарств, например, анальгетиков, противосудорожных.

Читайте также:  В анализе крови бласты 0

4. ТРОМБОЦИТЫ — клетки крови, показатель нормальной свертываемости крови, участвуют в образовании тромбов.

Нормальное количество — (180-320) * 10 в 9-й степени/л

Повышенное количество бывает при:

хронических воспалительных заболеваниях (туберкулез, язвенный колит, цирроз печени), после операций, лечении гормональными препаратами.

действии алкоголя, отравлении тяжелыми металлами, болезнях крови, почечной недостаточности, заболеваниях печени, селезенки, гормональных нарушений. А также при действии некоторых лекарств: антибиотиков, мочегонных, дигоксина, нитроглицерина, гормонов.

5. СОЭ или РОЭ — скорость оседания эритроцитов (реакция оседания эритроцитов) — это одно и то же, показатель течения болезни. Обычно СОЭ увеличивается на 2-4 сутки заболевания, иногда максимума достигает в период выздоровления. Норма для мужчин — 2-10 мм/ч, для женщин — 2-15 мм/ч.

инфекциях, воспалениях, анемии, болезнях почек, гормональных нарушениях, шоке после травм и операций, при беременности, после родов, во время месячных.

при недостаточности кровообращения, анафилактическом шоке.

Показатели биохимического анализа:

6. ГЛЮКОЗА — ее должно быть 3,5-6,5 ммоль/литр. Понижение — при недостаточном и нерегулярном питании, гормональных заболеваниях. Повышение — при сахарном диабете.

7. ОБЩИЙ БЕЛОК — норма — 60-80 граммов /литр. Снижается при ухудшении работы печени, почек, недоедании (резкое снижение общего белка нередкий симптом того, что жесткая ограничительная диета явно не пошла вам на пользу).

8. ОБЩИЙ БИЛИРУБИН — норма – не выше 20,5 ммоль/литр показывает, как работает печень. Повышение — при гепатитах, желче-каменной болезни, разрушении эритроцитов.

9. КРЕАТИНИН — должно быть не больше 0,18 ммоль/литр. Вещество отвечает за работу почек. Превышение нормы — признак почечной недостаточности, если не дотягивает до нормы — значит, нужно повышать иммунитет.

Кровь для общего клинического анализа берут обычно из мякоти IV пальца руки, получая так называемую капиллярную кровь. Исследование проводят утром, желательно натощак, чтобы избежать пищеварительного лейкоцитоза, хотя это правило не является строго обязательным.

Предварительно подготавливают следующее оборудование и реактивы:

1. стерильный капилляр Панченкова для определения СОЭ, в который до метки 0,75 набирают 5%-ный раствор натрия цитрата;

2. стерильную пробирку для определения концентрации гемоглобина, заполненную 5,0 мл трансформирующего раствора — смеси ацетонциангидрина, калия железосинеродистого и натрия гидрокарбоната;

3. стерильную пробирку для подсчета числа эритроцитов, в которую набирают 4,0 мл изотонического раствора натрия хлорида или реактива Гайема;

4. стерильную пробирку для подсчета числа лейкоцитов, заполненную 0,4 мл 3–5%-ного раствора уксусной кислоты (подкрашенная 4-5 каплями 1% водного раствора метиленового синего);

5. стерильные пипетки вместимостью 0,02 мл;

6. стерильные пипетки вместимостью 5 и 1 мл (для разводящих жидкостей) или бюретки;

7. сухие обезжиренные предметные и шлифовальные стекла;

источник

СТАНДАРТНЫЕ ОПЕРАЦИОННЫЕ ПРОЦЕДУРЫ ВЕДЕНИЯ ПРЕАНАЛИТИЧЕСКОГО ЭТАПА ДЕЯТЕЛЬНОСТИ КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРИЙ

СТАНДАРТНЫЕ ОПЕРАЦИОННЫЕ ПРОЦЕДУРЫ ВЕДЕНИЯ ПРЕАНАЛИТИЧЕСКОГО ЭТАПА ДЕЯТЕЛЬНОСТИ КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРИЙ

O.А. Тарасенко — канд. мед. наук, зав. диагностико-серологической лабораторией,

О.Н. Осипова — врач клинической лабораторной диагностики,

Ю.Ф. Тарасенко — врач клинической лабораторной диагностики,

М.В. Еремина — врач клинической лабораторной диагностики,

Станция переливания крови Департамента здравоохранения г. Москвы

Развитие лабораторной диагностики в последние годы привело к расширению номенклатуры лабораторных анализов, результаты которых играют все большую роль в диагностике и выборе тактики лечения больных. В свою очередь с увели­чением объема лабораторных исследований растет количество ошибочных дан­ных, которые могут отрицательно влиять на диагностический и лечебный про­цессы, повышать стоимость лабораторных анализов (повторные пробы, контроль и т. д.) и соответственно увеличивать расходы здравоохранения. Даже если мето­дика выполнения анализа полностью соблюдена, на его результаты все равно мо­гут влиять различные факторы. Главными причинами лабораторных ошибок (60-80%) являются преаналитические факторы, такие как неправильные взятие пробы, обращение с образцом и его транспортировка и т. д.

Так, например, при взятии капиллярной крови сильно влияние факторов, ко­торые могут существенно изменять исследуемые показатели (глубина прокола кожи, форма и острота скарификатора, сдавление пальца, разбавление пробы межклеточной жидкостью, активация свертывания при контакте с тканевыми ак­тиваторами и т. д.). Поэтому для обеспечения максимальной стандартизации об­разцов рекомендуется проводить исследования проб венозной крови. Взятие ве­нозной крови для проведения анализов является самой частой инвазивной процедурой. При этом ее кажущаяся простота и отсутствие четких стандартов проведения, а также использование устаревших материалов (стеклянные пробир­ки, самостоятельное приготовление добавок и т. д.) приводят к ошибкам на преаналитическом этапе, вызывающим большие потери материальных средств и ра­бочего времени медперсонала из-за назначения повторных анализов, расхода дорогостоящих реагентов и т. д.

Для уменьшения количества ошибок на преаналитическом этапе необходи­мо соблюдать выполнение стандартных операционных процедур (СОП). Ниже представлены СОП, которые могут быть использованы заведующими КДЛ для разработки собственных документов в деятельности клинико-диагностических лабораторий и процедурных кабинетов ЛПУ

Область применения СОП

Главным образом СОП используются:

  • при технологическом процессе подготовки пациента к лабораторным иссле­дованиям;
  • венепункции, взятии капиллярной крови;
  • взятии, сборе биологического материала;
  • центрифугировании биологического материала;
  • транспортировке биологического материала в лабораторию.

Значение преаналитического этапа в лабораторной диагностике

Преаналитический этап — важная составляющая качества деятельности всей лаборатории, который включает в себя подготовку пациента, процедуру взятия, сбора, транспортировки и обработки биологического материала перед проведе­нием лабораторных исследований. На него влияет следующий спектр факторов:

· режим питания пациента, его физическая активность, стиль жизни, прием лекарственных препаратов, масса тела, курение, употребление спиртных на­питков и т. д.;

· способ и качество взятия биологического материала;

· время взятия материала (циркадные ритмы, фазы менструального цикла, время последнего приема пищи и т. д.);

· количество расходного материала;

· положение тела при взятии материала;

· вид пробирок, антикоагулянтов, стабилизаторов, сепарирующих гелей;

· техника идентификации проб отдельных пациентов;

· время, температура и механические воздействия во время транспортировки пробы от места взятия до лаборатории;

· стандартизация способов доставки проб в отдаленные лаборатории;

· способ хранения проб в лаборатории.

ПАМЯТКИ ПАЦИЕНТУ ОБ ОСОБЕННОСТЯХ ПОДГОТОВКИ К ЛАБОРАТОРНЫМ ИССЛЕДОВАНИЯМ

Исследование крови

Вы должны подготовить себя к этому исследованию следующим образом: воздержаться от физических нагрузок, приема алкоголя и лекарственных веществ, изменений в питании в течение 24 ч до взятия крови.

Вам не следует принимать пищу после ужина, лечь спать нужно накануне в обычное для вас время и встать не позднее, чем за час до взятия крови.

Нельзя ничего есть в течение 12 ч, предшествующих началу исследования, но голодание ни в коем случае не должно быть более 16 ч.

Нельзя пить соки, чай, кофе и другие напитки. Используйте для питья воду.

Утром после подъема воздержитесь от курения и физической нагрузки.

Если вы испытываете трудности с отменой лекарственных препаратов, то обязательно сообщите об этом лечащему врачу.

Очень важно, чтобы вы точно следовали указанным рекомендациям, т. к. толь­ко в этом случае будут получены правильные результаты исследования крови.

Глюкозотолерантный тест

Необходимо изменить диету и исключить прием лекарственных препаратов (по рекомендации врача), по меньшей мере, за 3 дня до проведения теста. Очень

важно, чтобы вы точно исполняли приведенную ниже инструкцию, т. к. только в этом случае будут получены достоверные результаты исследования крови.

Вы должны следовать правилам:

· количество углеводов в пище должно быть не менее 125 г в день в течение 3 дней перед проведением теста;

· нельзя ничего есть в течение 12 ч, предшествующих началу теста, но голода­ние ни в коем случае не должно быть более 16 ч;

· перед исследованием можно пить только воду (нельзя пить соки, чай, кофе и другие напитки);

· необходимо исключить физическую нагрузку в течение 12 ч перед началом теста.

Если вы принимаете какие-то лекарственные препараты помимо тех, кото­рые назначил лечащий врач, то необходимо сообщить ему об этом, т. к. эти веще­ства могут повлиять на результаты исследования.

Вы должны сообщить врачу о своем самочувствии перед исследованием, обя­зательно упомянув при этом об имеющейся беременности и (или) стрессе.

Накануне вечером перед проведением теста подойдите к процедурной медицин­ской сестре и уточните, где вам необходимо находиться утром для его выполнения.

Исследование мочи

Вы должны подготовить себя к этому исследованию следующим образом:

· воздержаться от физических нагрузок;

· лекарственных веществ, особенно влияющих на цвет мочи (амидопирин, фуразолидон, ибупрофен, метронидазол и т. д.), либо сообщить об их приеме врачу;

· лечь спать накануне в обычное для вас время.

При плановом назначении анализа вы должны собрать первую утреннюю порцию мочи. Утром после подъема вам необходимо провести тщательный туа­лет наружных половых органов, промыв их под душем с мылом, чтобы в мочу не попали выделения из них.

При назначении теста с исследованием суточного количества мочи следует точно соблюдать 24-часовой период ее сбора.

Для анализа мочи по Зимницкому вы должны соблюдать обычный режим питания, но учитывать количество выпитой жидкости.

При исследовании йода в моче (йодурия) за 2-3 дня до начала сбора должны быть исключены лекарственные препараты, содержащие йод и бром. За 3 ч до сбора мочи должны быть исключены значительные физические нагрузки.

Перед проведением «трехстаканной пробы» мочи вы не должны мочиться в течение 3-5 ч.

Нельзя сдавать мочу во время менструации.

Исследование кала

Вы должны подготовить себя к этому исследованию следующим образом:

· следует соблюдать диету, предписанную вашим лечащим врачом;

· нужно воздержаться от приема лекарственных препаратов, влияющих на секреторные процессы в желудке, на перистальтику желудка и кишечника, а также меняющих цвет кала (индометацин, препараты железа, сенна, сулема, фенолфталеин и т. д.).

Перед исследованием кала на скрытую кровь нельзя принимать некоторые лекарственные вещества, в т. ч. аскорбиновую и ацетилсалициловую кислоту. Прием лекарственных препаратов необходимо согласовать с врачом.

Перед исследованием кала на скрытую кровь из диеты должны быть исклю­чены мясо, рыба, помидоры, огурцы, цветная капуста, зеленые овощи.

Исследование мокроты

Перед сбором мокроты необходимо тщательно почистить зубы, прополо­скать рот и глотку кипяченой водой. Ограничений в режиме питания и приеме лекарственных препаратов нет.

Исследование слюны

За 12 ч до исследования необходимо исключить прием пищи, алкоголя и ле­карственных препаратов (по согласованию с врачом).

Перед сбором слюны необходимо отказаться от использования зубной пасты и удалить зубные протезы. Зубы чистят без зубной пасты, затем прополаскивают рот кипяченой водой.

Подготовка обследуемых

Взятие венозной крови производится натощак, в утренние часы. При взятии венозной крови необходимо учитывать ряд факторов которые могут повлиять на результат гематологических исследований: физическое перенапряжение (бег, быстрая ходьба, подъем по лестнице), эмоциональное возбуждение, прием пищи накануне исследования, купение, прием алкоголя и т.д. Для исключения этих факторов, следует соблюдать следующие условия подготовки пациентов:

— взятие венозной крови осуществляется после 15-минутного отдыха обследуемого;

— пациент во время взятия сидит, у тяжелых больных взятие крови может осуществляться лежа.

— курение, прием алкоголя и пищи непосредственно перед исследованием исключаются;

Основной способ взятия венозной крови для лабораторного исследования – пунктирование вены. Венозную кровь, как правило, забирают из локтевой вены. В случае необходимости ее можно получить из любой вены (запястья, тыла ладони, над большим пальцем и т.д.). У новорожденных и грудных детей кровь обычно берется из лобной, височной или яремной вены.

При взятии крови из вены необходимо избегать: мест шрамов, гематом; вен, используемых для переливания растворов; ножных вен (у больных диабетом, при нарушениях периферического кровотока, ангиопатиях).

Оборудование

Для венепункции можно использовать три варианта пункционных систем:

— одноразовые пластиковые системы (вакутейнеры), состоящие из контейнера с навинчивающейся на него одноразовой иглой и пробирки с плотно прилегающей пробкой и вакуумом внутри;

— одноразовые шприцы с подходящим диаметром иглы;

— иглы с внутренним диаметром 0,55-0,65 мм.

— манжета или жгут для пережатия руки;

— ватные или марлевые тампоны;

При взятии крови следует строго соблюдать правила асептики и антисептики в соответствии с “Инструкцией по мерам профилактики распространения инфекционных заболеваний при работе в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений”, утвержденной МЗ СССР 17. 01. 1991 г. и действующей до настоящего времени.

Взятие крови необходимо проводить в одноразовых резиновых перчатках; в тех случаях, когда это невозможно, перед каждым взятием перчатки следует обрабатывать 70 0 спиртом. Все оборудование для взятия крови, включая одноразовые системы, шприцы, иглы, бинты, ватные и марлевые тампоны, пластыри должно быть стерильным.

Дезинфекция и стерилизация оборудования проводится в соответствии с ОСТ-ом 42-21-2-85 “Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского оборудования” и приказом МЗ СССР “О мерах по снижению заболеваемости вирусным гепатитом в стране” (1989 г.) и “Инструкцией по противоэпидемическому режиму в лабораториях диагностики СПИД” 42-28/39-90 от 05.06.1990 г.

Приготовление сыворотки

Венозная кровь, полученная без антикоагулянтов в центрифужную стеклянную пробирку, отстаивается в ней при комнатной температуре (15-200С) в течение 30 минут до полного образования сгустка. По окончании образования сгустка пробирки открывают и осторожно проводят тонкой стеклянной палочкой или запаянным капилляром Пастеровской пипетки по внутренним стенкам пробирки по окружности в верхнем слое крови для отделения столбика сгустка от стенок пробирки. Сыворотку сливают в другую центрифужную пробирку, придерживая сгусток стеклянной палочкой, и центрифугируют, либо центрифугируют в тех же, первичных, пробирках.

Центрифугирование

После ретракции сгустка пробы центрифугируют при относительной центробежной силе RCF от 1000 до 1200 g (максимально до 1500 g) в течение 10 минут.

В случае использования микропробирок и центрифуги для них центрифугирование проводят при 6000-15000 g в течение 1,5 минут. После центрифугирования сыворотку сливают во вторичные (транспортные) пробирки. Сыворотка не должна быть гемолизированной.

Плазма получается из крови путем отделения клеток крови. Она представляет собой бесклеточную надосадочную жидкость, которая получается при центрифугировании крови, свертываемость которой ингибирована добавлением антикоагулянтов тотчас после взятия. В плазме содержатся факторы свертывания крови. В связи с тем, что плазма и сыворотка содержат около 93% воды, в отличае от цельной крови, которая содержит около 81% воды, концентрация компонентов в плазме на 12% выше, чем в цельной крови. Это может иметь принципиальное диагностическое значение при исследовании активности, например ЛДГ у которого наиболее высокая концентрация наблюдается в сыворотке крови, чем в плазме.

Наряду с коммерческими системами для получения сыворотки при взятии венозной крови широко применяются коммерческие системы для получения плазмы. Они представляют собой пробирки или устройства типа шприцев (“вакутейнер”) с вакуумом внутри, содержащие различные антикоагулянты и/или ингибиторы гликолиза. Как и в случае устройств для сыворотки, эти пробирки для плазмы имеют разные варианты, содержащие разделительные гели и гранулят из полистирола, ускоряющие получение плазмы, облегчающие транспортировку и хранение. В них уже имеются антикоагулянты и метки до которых следует набирать кровь.

Читайте также:  В анализе крови что отвечает за иммунитет

МЕТОДИКА ПОЛУЧЕНИЯ ПЛАЗМЫ(без коммерческих разделительных устройств)

Оборудование

1. Центрифужные стеклянные, химически чистые, сухие пробирки.

2. Центрифуга, обеспечивающая центрифугирование до 1500 xg.

3. Химически чистые, сухие химические пробирки.

4. Крышки для пробирок или лабораторная пленка типа “Парафильм”.

Приготовление плазмы

Венозную кровь, полученную с антикоагулянтом немедленно после взятия перемешивают переворачиванием пробирок с кровью, закрытых крышками, не менее 5 раз. Перемешивание должно осуществляться без встряхивания и пенообразования. Время между началом наложения жгута и смешиванием крови с антикоагулянтом не должно превышать 2 минут. После уравновешивания пробирок с кровью, их центрифугируют при RCF 1000-1200 xg, но не более 1500 xg, в течение 10-15 минут. Плазму немедленно сливают в транспортную центрифужную или химическую пробирку. Пробирку закрывают крышкой.

Общие положения

У взрослых пациентов взятие капиллярной крови производится:

· при ожогах, занимающих большую площадь поверхности тела пациента;

· при наличии у пациента очень мелких вен или их труднодоступности;

· при выраженном ожирении пациента;

· при установленной склонности к венозному тромбозу;

· для проведения теста по толерантности к глюкозе;

· для исследования дневных колебаний концентрации глюкозы;

· для определения времени свертывания крови и длительности кровотечения.

Прокол кожи является методом выбора для взятия крови в педиатрии. Боль­шие объемы крови при венепункции могут вызвать анемию у детей, особенно у новорожденных или недоношенных.

Не пунктируются пальцы новорожденных, т. к. кость находится на глубине всего 1-2 мм под поверхностью кожи. Используйте для пункции кожу пятки.

Подготовка рабочего места

Для взятия капиллярной крови на рабочем месте необходимо иметь:

· передвижные столики для расходных материалов;

· скарификаторы (длина копья зависит от размеров пациента);

· пробирки — системы для взятия капиллярной крови (СВКК);

· тампоны со спиртом или индивидуально упакованные салфетки, пропитан­ные спиртом;

· стерильные марлевые салфетки;

· емкости с дезинфицирующим раствором;

· компрессы для согревания места пункции;

В зависимости от цели исследования образцы мочи собирают либо в виде отдельных порций, либо за определенный промежуток времени.

Первая утренняя моча (после сна) используется для общеклинического ис­следования. Вторая (средняя) утренняя порция мочи — для количественного исследования в соотношении с выделением креатинина. микробиологического исследования, ПЦР-диагностики и пробы Нечипоренко. Суточная моча — для ко­личественного определения экскреции аналитов, пробы Зимницкого.

Правила сбора мочи

По возможности, надо собирать мочу в ту емкость, которая будет доставлена в лабораторию. Брать мочу из судна, утки или горшка нельзя! Если в лабораторию доставляется не вся собранная моча, то перед тем как отлить ее часть в контейнер, необходимо перемешать всю порцию.

Консервация проб мочи очень важна для сохранения ее исходных свойств и предупреждения роста бактериальной флоры. В первую порцию собираемой за сутки мочи в зависимости от назначенного вида исследования добавляют различ­ные консерванты:

· тимол (несколько кристаллов вещества на 100 мл мочи) — для определения концентрации большинства компонентов;

· азид натрия (0,5 или 1,0 г на все количество суточной мочи) — для определе­ния концентрации глюкозы, мочевины, мочевой кислоты, калия, кальция;

· соляная кислота (25 мл 6 моль/л на объем суточной мочи) — для определения концентрации катехоламинов, кальция, магния, фосфатов;

· карбонат натрия (2 г на литр мочи) — для определения концентрации порфи-ринов и уробилиногена.

Для некоторых проб мочи консервация небезразлична, поэтому предпочти­тельнее охлаждение. Для исследования осадка мочи важно использовать собран­ную мочу, без консерванта.

Сбор мочи у детей

Сбор мочи у детей требует особого внимания из-за возможности загрязне­ния мочи калом.

Для сбора мочи у новорожденных используют особую емкость, не вызываю­щую аллергических реакций, которая закрепляется в промежности. Проверяется контейнер через каждые 10-15 мин.

Необходимо дать подробные письменные или устные инструкции пациенту или родителям маленьких детей и предупредить о том, что в случае нарушения рекомендаций моча будет непригодна для лабораторного исследования.

Сбор кала должен осуществляться в чистые сухие пластиковые или стеклян­ные контейнеры с герметично закрывающимися крышками. Недопустимо на­правлять кал на исследование в спичечных или картонных коробках. Для бакте­риологических исследований посуда должна быть стерильной.

В КДЛ для сбора кала целесообразно использовать следующие приспособления:

· пластиковые (полипропилен) контейнеры с ложечкой;

· пластиковые (полипропилен) герметичные контейнеры (тубы) с ложечкой-шпателем на 1 мл для сбора точного количества кала (1 мл соответствует 1 г образца).

Правила сбора кала

Результаты копрологического исследования зависят от правильной подго­товки пациента и от правильного сбора материала.

После необходимой подготовки пациента кал собирают за одну дефекацию. Для исследования достаточно 10-15 г кала.

Кал не должен содержать посторонних примесей (мочи, отделяемого мочепо­ловых органов). Нельзя собирать фекалии после клизм. Если необходимо знать точное количество испражнений, то пустую емкость перед сбором и после сбора материала взвешивают.

Для микробиологического исследования кала на кишечный дисбактериоз и для ПЦР-диагностики сбор материала производится до начала лечения антибак­териальными и химиотерапевтическими препаратами.

Пациенту рекомендуется помочиться в унитаз, далее путем естественной де­фекации в подкладное судно или горшок собираются испражнения (следить, что­бы не попала моча).

Кал, взятый из разных мест, в количестве 1 г, собирается в стерильную ем­кость.

Перед сбором материала подкладное судно (горшок) предварительно обра­батывают дезинфицирующими средствами, промывают несколько раз проточ­ный водой, ополаскивают кипятком. Емкость с собранным материалом маркиру­ют и немедленно направляют в лабораторию.

Для паразитологических исследований кала специальной подготовки не тре­буется. Ложечкой собирают 10-15 г теплого кала, взятого из разных мест.

СБОР МОКРОТЫ

Для сбора мокроты целесообразно использовать широкогорлые стерильные пла­стиковые контейнеры вместимостью не менее 50 мл с завинчивающейся крышкой.

Правила сбора мокроты

После специальной подготовки пациент утром до приема пищи собирает мокроту.

Пациента следует предупредить о том, что собирать необходимо только мок­роту, отделяющуюся при кашле, а не при отхаркивании.

Для микробиологического исследования мокроту собирают в стерильный контейнер с соблюдением правил асептики.

Емкость с мокротой маркируют и как можно скорее доставляют в лабораторию.

Слюна используется для исследования содержания ряда гормонов, лекарст­венных веществ, в т. ч. и лекарственного мониторинга.

Образцы могут быть получены из одной железы или являться смесью секре­тов различных желез (смешанная слюна). Легкость в сборе слюны делает ее иде­альной для самостоятельного исследования дома и в случаях, когда взятие крови не желательно, например у новорожденных. Ограничения в использовании слю­ны связаны с ее вязкостью и недостаточным объемом.

Правила сбора слюны

Существует несколько способов сбора: смешанную слюну выплевывают изо рта или отсасывают со дна рта одноразовым шприцем и переносят в пробирку с транспортной средой. Также сбор слюны может осуществляться с помощью уст­ройств (тампонов, шариков), состоящих из различных адсорбирующих материа­лов (хлопок, вискоза, полимеры).

ТЕХНОЛОГИЧЕСКИЙ ПРОЦЕСС ТРАНСПОРТИРОВКИ И ХРАНЕНИЯ
БИОЛОГИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА НА ПРЕАНАЛИТИЧЕСКОМ ЭТАПЕ

Важнейшим моментом в обеспечении качества клинических лабораторных ис­следований является доставка проб биологического материала в лабораторию. Транс­портировка образцов в лабораторию может осуществляться различными путями.

Если взятие и сбор биологического материала производится в том же учреж­дении, где расположена лаборатория, то контейнеры с образцами должны быть доставлены как можно быстрее, максимум в течение 2 ч (быстрая транспорти­ровка). Быстрая транспортировка увеличивает достоверность результатов лабо­раторных исследований. Охлаждение, использование транспортной среды или консерванта не обязательно.

Несколько другие требования предъявляются к биологическому материалу, взятому и собранному в других учреждениях, который требует длительной транс­портировки (отсроченная транспортировка).

При отсроченной транспортировке необходимо строго соблюдать опреде­ленные правила безопасности. Не должно возникнуть риска ни для людей, ни для окружающей среды. Кроме того, необходимо обеспечить целостность и герметич­ность образцов биологического материала. Образцы следует упаковывать так, чтобы они противостояли ударам, тряске, изменениям давления, температуры и другим воздействиям внешней среды. Нужно избегать протекания содержимого образцов, прямого воздействия света на них В качестве упаковочного материала при транспортировке нельзя использовать стекло.

Рекомендуется следующая структура упаковки для транспортировки биоло­гического материала:

· внутренний контейнер/упаковка для образцов биологического материала;

адсорбирующий материал (помещается между внутренним и наружным кон­тейнерами);

· наружный контейнер/упаковка, с указанием информации об образце;

коробка, сумка или посылочная упаковка.

Для транспортировки замороженных и охлажденных образцов необходимы специальные контейнеры, поддерживающие необходимую температуру, или пор­тативные холодильники.

Контейнеры с инфекционным материалом должны быть помечены специаль­ной надписью.

В микробиологическую лабораторию посевы транспортируются в термокон­тейнерах (биксах) отдельно от другого клинического материала.

Важным фактором обеспечения качества клинических лабораторных иссле­дований является время доставки биологического материала в лабораторию, ко­торое должно быть четко определено и постоянно контролироваться каждые 30/60 мин. Время взятия биологического материала обязательно указывается в за­явках или направлениях на лабораторные исследования.

ТРЕБОВАНИЯ К ТРАНСПОРТИРОВКЕ БИОЛОГИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА.

Правила центрифугирования

Центрифугирование крови для получения сыворотки проводится через 30 мин после взятия (время полного сворачивания крови).

Кровь для получения сыворотки или плазмы центрифугируют в течение 10-15 мин при ускорении 1000-1200 g.

Кровь с добавлением цитрата центрифугируют 15 мин при 2000 g. Для получе­ния плазмы, свободной от тромбоцитов, центрифугирование длится 15-30 мин при 2000-3000 g.

Центрифугирование крови в пробирках малого объема с антикоагулянтом и без него, а также капиллярной крови выполняется в микроцентрифугах при 6000-15 000 g в течение 90 с.

Центрифугирование обычно проводится при температуре от 20 до 22 °С. Для аналитов (адренокортикотропный гормон, ренин), которые неустойчивы при комнатной температуре, центрифугирование осуществляется при +4 °С. Однако следует учитывать, что охлаждение может привести к выходу калия из клеток.

После взятия сыворотки или плазмы образцы крови не следует подвергать повторному центрифугированию.

При осаждении гепаринизированной крови сила и время центрифугирова­ния должны быть достаточными для удаления из плазмы кровяных пластинок.

Недостаточно полное осаждение тромбоцитов приведет к серьезному увеличе­нию концентрации калия, лактатдегидрогеназы, кислой фосфатазы и неорганиче­ских фосфатов.

Для получения осадка мочи транссудата, экссудата и другой биологической жидкости на микроскопическое исследование центрифугирование проводят при ускорении 800 g в течение 10 минут при комнатной температуре.

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

1.Долгов В.В., Мошкин А.В., Малахов В.Н. и др. Обеспечение качества в лабо­раторной медицине: Учеб. пособие. М.: РМАПО, 1997.

2. Козлов А.В. и др. Влияние лекарственных препаратов на лабораторные по­казатели: Учеб. пособие для врачей-слушателей. СПб.: МАПО, 1997.

3. Кудрявцева Л.В., Конарева Т.Н., Горбатенко Е.В., Попова Т.И., Говорун В.М. Правила взятия и доставки биологического материала для лабораторных исследо­ваний в НПФ «ЛИТЕХ»: Методическое пособие для врачей-клиницистов. М., 2004.

4. Меньшиков В.В., Пименова Л.М., Кишкун А.А. Правила ведения преаналитического этапа клинических лабораторных исследований: Проект нормативного документа. Лабораторная диагностика России, 2004-2005.

5. Методические рекомендации «Забор, транспортировка, хранение клиниче­ского материала для ПЦР-диагностики». Министерство здравоохранения РФ. Цен­тральный научно-исследовательский институт эпидемиологии МЗ РФ. М., 2004.

6. Медицинская лабораторная диагностика (Программы и алгоритмы): Спра­вочник / Под ред. А.И. Карпищенко. СПб.: Интермедика. 1997.

7. Назаренко Г.И., Кишкун А.А. Клиническая оценка результатов лабораторных исследований. М.: Медицина, 2000.

8. Назаренко Г.И., Кишкун А.А. Управление качеством лабораторных исследований. М.: Медицина, 2001.

9. Руководство «Преаналитический этап лабораторного анализа». Чешская система внешнего контроля качества по рекомендации Чешского общества кли­нической биохимии ЧЛС ЕП. Пардубице. 1999. Адаптированный перевод канд.мед. наук Почтарь М.Е.

10. Синельников Р.Д., Синельников Я.Р. Атлас анатомии человека. М.: Медици­на, 1992.

11. Dennis J. Ernst MT, Catherine Ernst R.N. Phlebotomy for Nurses and Nursing Personnel «HealthStar Press», January 1,2001.

12. D. Garza, K. Becan-Mc.Bride. Phlebotomy Handbook. 6 r Edition,»Prentice Hall». 2002.

13. NCCLS. H3-A4, Procedures for the Collection of Diagnostic Blood Specimens by Venipuncture; Approved Standard-Fourth Edition. NCCLS document H3-A4 [ISBN 1-56238-350-7] NCCLS, 940 West Valley Road, Suite 1400, Wavne, Pennsylvania 19087 USA, 1998.

14. S. Narayanan. The preanalytic phase. An important component of laboratory medicine // Am. J. Clin. Pathol. 2000. № 113. P. 429-452.

15. Ruth £., Bs, Mt McCall, Cathee M., Bs, Mt, Cls, Tankersley. Phlebotomy Essentials, «Lippincott Williams & Wilkins Publishers; 3rd edition», 2002

СТАНДАРТНЫЕ ОПЕРАЦИОННЫЕ ПРОЦЕДУРЫ ВЕДЕНИЯ ПРЕАНАЛИТИЧЕСКОГО ЭТАПА ДЕЯТЕЛЬНОСТИ КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРИЙ

O.А. Тарасенко — канд. мед. наук, зав. диагностико-серологической лабораторией,

О.Н. Осипова — врач клинической лабораторной диагностики,

Ю.Ф. Тарасенко — врач клинической лабораторной диагностики,

М.В. Еремина — врач клинической лабораторной диагностики,

Станция переливания крови Департамента здравоохранения г. Москвы

Развитие лабораторной диагностики в последние годы привело к расширению номенклатуры лабораторных анализов, результаты которых играют все большую роль в диагностике и выборе тактики лечения больных. В свою очередь с увели­чением объема лабораторных исследований растет количество ошибочных дан­ных, которые могут отрицательно влиять на диагностический и лечебный про­цессы, повышать стоимость лабораторных анализов (повторные пробы, контроль и т. д.) и соответственно увеличивать расходы здравоохранения. Даже если мето­дика выполнения анализа полностью соблюдена, на его результаты все равно мо­гут влиять различные факторы. Главными причинами лабораторных ошибок (60-80%) являются преаналитические факторы, такие как неправильные взятие пробы, обращение с образцом и его транспортировка и т. д.

Так, например, при взятии капиллярной крови сильно влияние факторов, ко­торые могут существенно изменять исследуемые показатели (глубина прокола кожи, форма и острота скарификатора, сдавление пальца, разбавление пробы межклеточной жидкостью, активация свертывания при контакте с тканевыми ак­тиваторами и т. д.). Поэтому для обеспечения максимальной стандартизации об­разцов рекомендуется проводить исследования проб венозной крови. Взятие ве­нозной крови для проведения анализов является самой частой инвазивной процедурой. При этом ее кажущаяся простота и отсутствие четких стандартов проведения, а также использование устаревших материалов (стеклянные пробир­ки, самостоятельное приготовление добавок и т. д.) приводят к ошибкам на преаналитическом этапе, вызывающим большие потери материальных средств и ра­бочего времени медперсонала из-за назначения повторных анализов, расхода дорогостоящих реагентов и т. д.

Для уменьшения количества ошибок на преаналитическом этапе необходи­мо соблюдать выполнение стандартных операционных процедур (СОП). Ниже представлены СОП, которые могут быть использованы заведующими КДЛ для разработки собственных документов в деятельности клинико-диагностических лабораторий и процедурных кабинетов ЛПУ

Область применения СОП

Главным образом СОП используются:

  • при технологическом процессе подготовки пациента к лабораторным иссле­дованиям;
  • венепункции, взятии капиллярной крови;
  • взятии, сборе биологического материала;
  • центрифугировании биологического материала;
  • транспортировке биологического материала в лабораторию.

Организация стока поверхностных вод: Наибольшее количество влаги на земном шаре испаряется с поверхности морей и океанов (88‰).

Общие условия выбора системы дренажа: Система дренажа выбирается в зависимости от характера защищаемого.

источник