Меню Рубрики

Способы взятия крови на общий анализ

1. Оснащение:

стерильный скарификатор, укладка со стерильными капиллярами Панченкова (20 шт. в 1 упаковке), спирт 70 0 , планшет с пробирками, планшет для дозировки крови, капилляр Сали (0,02 мл.), резиновая груша, емкость с дезраствором, одноразовые (не стерильные) перчатки, халат, фартук, колпак, маска, пластиковые очки, вата, 2 предметных стерильных стекла (упаковка – 10 шт.), пробирки: № 1 на эритроциты – 4 мл – 3,5% раствор хлорида натрия, № 2 на гемоглобин – 5 мл трансформирующего раствора, № 3 на лейкоциты – 0,4 мл-3% раствора уксусной кислоты, 3 4 на СОЭ – 3,8% раствор стерильного оксилата натрия 0,025 мл.

2.Подготовка к процедуре:

1. забор крови у пациентов производится натощак;

2. приветствовать пациента, представиться;

3. объяснить пациенту цель и ход предстоящей процедуры и получить его согласие;

4. предложить пациенту удобно сесть;

5. вымыть и осушить руки, надеть перчатки;

6. обработать 4-ый (безымянный) палец пациента 70 0 спиртом;

7. левой рукой фиксировать палец пациента, а в правую руку взять скарификатор.

3.Выполнение манипуляции:

1. пунктировать на глубину 3-4 мм;

2. сухой стерильной ваткой снять первую каплю крови;

3. стерильным капилляром Панченко набираем 0,025 мл стерильного цитрата натрия, промывают его и сливают в пробирку с цитратом натрия;

4. этим же капилляром набирают полкапилляра крови и сливают в одну ячейку для дозирования, из которой набирают 0,02 мл крови капилляром Сали с грушей, снимают остатки крови с носика пипетки и выливают в пробирку № 1 (для эритроцитов);

5. из ячейки для дозирования берут 0,02 мл крови, выливают в пробирку № 2 (для гемоглобина);

6. 0,02 мл крови опускают в пробирку № 3 (для лейкоцитов);

7. 1 каплю крови капилляром Панченко опускают на предметное стекло и готовят тонкий мазок (под углом 45 0 специальным шлифовальным стеклом);

8. капилляр Панченко опускают в пробирку № 4 (на СОЭ);

9. обработать пациенту палец стерильной ватой, смоченной в спирте. Пациента отпускают.

4.Завершение процедуры:

1. мазок крови подписать, высушить на воздухе, поставить в штатив для фиксации. Упаковать в контейнер для транспортировки штатив с пробирками, с стеклами и штатив для дозировки крови.

2. В лаборатории:

а) подсчет эритроцитов в камере Горева;

б) измерение гемоглобина на ФЭКе;

в) подсчет лейкоцитов в камере Горева;

г) установка капилляра Паченкова в штатив Панченкова с кровью набранной до метки «0» на 1 час – определение СОЭ;

д) фиксация, окраска мазка крови и подсчет клеточных элементов (лейкоформулы) под микроскопом (иммерсия, увеличение 7*90)

3. Дезинфицирующий режим:

а) утилизация скарификатора на 1 час в 0,05% растворе анолита;

использованная вата и ветош – 1 час в 0,05 % растворе анолита;

остатки крови и реактивов с кровью – на 1 час в соотношении 5 6 1 с хлорной известью.

б) «0» – дезинфекция пробирок, капилляров, груш, штативов в 0,03% растворе анолита.

в) дезинфекция и предстерилизационная очистка совмещены – 90 минут в 0,03 % растворе анолита. Прополаскивание и стерилизация капилляров и стекол – в упаковке в биксе автоклавированием (1 час при 132 0 С, 1,2 атм.) Стекла кипятят в моющем растворе с перекисью водорода 1 час, сушат и стерилизуют автоклавированием.

Все материалы представленные на сайте исключительно с целью ознакомления читателями и не преследуют коммерческих целей или нарушение авторских прав. Студалл.Орг (0.004 сек.)

источник

Взятие крови для общего клинического анализа крови производят путем укола в мякоть IV пальца левой руки или мочку уха. Для укола палец обрабатывают ватным шариком, смоченным раствором антисептика, чаще всего септоцида. Укол лучше производить сбоку, где более густая капиллярная сеть, на глубину 2-3 мм в зависимости от толщины кожи. Кровь из ранки должна вытекать свободно, так как при сильном надавливании на палец возможно примешивание тканевой жидкости, приводящее к искажению результатов.

Не рекомендуется брать кровь сразу после физической и умственной нагрузки, приема медикаментов, физиотерапевтических процедур, диагностических манипуляций. Необходимо производить забор крови натощак. Повторные исследования желательно проводить в одни и те же часы, поскольку морфологический состав крови подвержен колебаниям на протяжении суток.

Для исследования гемограммы используют пробирочный метод взятия крови. Точная дозировка крови и разводящих жидкостей достигается с помощью калиброванных пипеток и дозаторов.

Общий клинический анализ крови включает определение следующих компонентов:

3) индексы красной крови (цветовой показатель и среднее содержание гемоглобина в одном эритроците);

4) скорость оседания эритроцитов (СОЭ);

6) осмотическая резистентность эритроцитов и их диаметр;

7) количество ретикулоцитов;

8) количество лейкоцитов и лейкоцитарная формула;

2. Методика определения концентрации гемоглобина, количества эритроцитов и ретикулоцитов. Расчет индексов красной крови: цветовой показатель и среднее содержание гемоглобина в одном эритроците. Диагностическое значение. Гематокритное число.

Предложено много методов определения концентрации гемоглобина. Важнейшие из этих методов – колориметрические. Чаще колориметрируют цветные производные гемоглобина: хлорид гематина, цианметгемоглобин, карбоксигемоглобин и др. Концентрацию гемоглобина измеряют фотоэлектроколориметрами, приборами ГФ-2 и ГФ-3, гемоглобинометрами при автоанализаторах.

Унифицированным является цианметгемоглобиновый фотометрический метод. Он основан на превращении гемоглобина в цианметгемоглобин при добавлении к крови реактива (раствора Драбкина), содержащего железосинеродистый калий и цианид калия. Концентрацию цианметгемоглобина измеряют фотометрически, а расчет количества гемоглобина производят по калибровочному графику.

Гематиновый метод Сали основан на превращении гемоглобина при добавлении к крови хлористоводородной кислоты в хлорид гематина (хлоргемин) коричневого цвета, интенсивность окраски которого пропорциональна содержанию гемоглобина. В настоящее время этот метод не имеет широкого применения.

В норме концентрации гемоглобина составляет:

Увеличение концентрации гемоглобина наблюдается у людей, живущих в условиях высокогорья, при обезвоживании у работников горячих цехов, после обильной рвоты и при диарее, при массивных ожогах, при эритремии и др.

Уменьшение концентрации гемоглобина наблюдается при анемиях, а так же при обильном употреблении жидкости, гемодилюции лекарственными инфузионными средствами и др.

Определение количества эритроцитов крови выполняется следующими методами:

1. Подсчет эритроцитов в счетной камере с сеткой Горяева.

Принцип метода: в строго определенном объеме каме­ры подсчитывают под микроскопом клеточные элементы, а затем производят перерасчет полученного результата на 1 мкл крови. С целью уменьшения количества клеток, подлежащих подсчету, кровь предварительно разводят в смесителях или пробирках.

1) смесители (меланжеры) или пробирки для разведе­ния крови;

2) 3 % раствор хлорида натрия или жидкость Гайема для разведения эритроцитов (ртути хлорид — 0,5 г; натрия сульфат — 5,0 г; натрия хлорид — 1,0 г; вода дистиллиро­ванная — до 200 мл);

Смесители представляют собой капиллярную пипетку с резервуаром, содержащим бусинку, способствующую смешиванию крови с жидкостью для разведения. На сме­сителе нанесены метки: одна — 0,5, другая — перед входом в резервуар — 1,0, третья — у выхода из ампулы — 101. При набирании крови в пипетку до метки 0,5 она будет разве­дена в 200 раз, до 1,0 — в 100 раз.

Счетная камера представляет собой стеклянную плас­тинку с выгравированной или наклеенной сеткой Горяе­ва. Обычно на одной пластинке имеются две сетки, разде­ленные между собой глубокой канавкой, что позволяет ис­пользовать одну сетку для подсчета эритроцитов, а другую — для подсчета лейкоцитов. По краям сеток находятся воз­вышения, к ним притираются покровные стекла, которые образуют верхнюю границу камеры. Притирать покров­ные стекла нужно очень плотно до появления радужных колец (так называемых колец Ньютона), ибо только в этом случае будут соблюдены необходимые высота (1/10 мм) и объем счетной камеры. Сетка Горяева имеет 225 больших квадратов (15 х15), 25 из которых раз­делены на малые, по 16 в каждом. Каждая сторона малого квадрата равна 1/20 мм, а так как высота камеры состав­ляет 0,1 мм, то объем счетной камеры, ограниченной од­ним малым квадратом, будет равен 1/4000 мм 3 .

Ход исследования: в сухую чистую пробирку или сме­ситель отмеривают раствор хлорида натрия или жидкость Гайема. Пипеткой от гемометра Сали набирают кровь из пальца, вытирают кончик пипетки марлей или фильтро­вальной бумагой, выдувают кровь на дно пробирки с жидкостью для разведения. Подготавливают камеру Горяева. Затем концом круглой стеклянной палочки или пастеровской пипеткой наносят каплю разведенной кро­ви на среднюю пластинку камеры у края покровного стекла.

Интерпретация полученных данных. Подсчет эрит­роцитов производят спустя 1-2 мин после заполнения ка­меры (когда эритроциты осядут на дно камеры) при малом увеличении микроскопа (объектив 8х, окуляр — 10х или 15х) и при затемненном поле зрения (при опущенном кон­денсоре или прикрытой диафрагме). Считать эритроциты необходимо в 5 больших квадратах, т. е. в 80 маленьких, расположенных по диагонали. Подсчету подлежат все эритроциты, лежащие внутри малого квадрата, и те, кото­рые находятся на левой и верхней линиях. Эритроциты, расположенные на правой и нижней линиях, не считают, так как они будут учтены в следующем квадрате.

Количество эритроцитов в 1 мкл (мм 3 ) крови высчиты­вают по следующей формуле:

где X — количество форменных элементов в 1 мкл крови; А — количество форменных элементов, сосчитанных в опреде­ленном количестве малых квадратов (для эритроцитов — в 80); Б — количество сосчитанных малых квадратов (80); В — степень разведения крови (для подсчета эритроцитов -100 или 200); 4000 — величина, умножая на которую, мы получаем количество клеток в 1 мкл (1 мм 3 ), так как объ­ем 1 маленького квадрата равен 1/4000 мм.

Для перевода в систему СИ (пересчет на 1 л крови) по­лученную цифру умножают на 10 6 (или количество целых единиц умножают на 10 12 ).

Методика подсчета эритроцитов в счетной камере дос­таточно точна (ошибка может достигать 2,5 %), но весьма трудоемка. Ошибки могут быть обусловлены: образовани­ем сгустка, недостаточным количеством подсчитанных квадратов, несоблюдением условий, обеспечивающих правильную высоту счетной камеры (притирание покров­ных стекол без образования радужных колец), неравно­мерным заполнением камеры (образование пузырьков воздуха), подсчетом эритроцитов без выжидания 1-2 мин (эритроциты не успевают осесть и результат оказывается заниженным), плохо вымытыми смесителем и счетной ка­мерой, недостаточной квалификацией лаборанта, выпол­няющего исследование.

2. Фотометрический метод подсчета количества эритроцитов – основан на фотометрическом измерении степени погашения света определенных длин волн взвесью эритроцитов. Процент задержанного света прямо пропорционален числу эритроцитов. Для этого используют приборы типа эритрогемометров и электрофотоколориметры.

3. Электронно-автоматический метод. Используются приборы автоматического счета частиц крови, работающие по импульсному и сцинтиляционному принципу (счетчики «Целлоскоп» и «Культер», автоанализаторы «Техникон»).

Нормальное количество эритроцитов:

— у женщин 3.7 – 4.7 х 10 12 /л;

— у мужчин 3,9 — 5,1 х 10 12 /л.

Увеличение количества эритроцитов наблюдается:

1) при эритремии (абсолютный первичный эритроцитоз);

2) при гипоксии: обструктивная вентиляционная недостаточность, при наличии альвеолярно-капиллярного блока – фиброзирующий альвеолит и легочные васкулиты, врожденные пороки сердца с шунтом справа налево и др;

3) при гемоглобинопатиях (наследственные заболевания, характеризующиеся наличием в эритроцитах аномальных гемоглобинов);

4) при вторичных абсолютных эритроцитозах, связанных с повышенной продукцией эритропоэтинов (рак почек, гидронефроз и поликистоз почек, рак печени и др.);

5) при вторичных абсолютных эритроцитозах, связанных с избытком адренокортикостероидов или андрогенов (феохромоцитома, синдром / болезнь Иценко-Кушинга, гиперальдостеронизм);

6) при относительных эритроцитозах вследствие обезвоживания, стрессов, алкоголизма, повышенной физической нагрузки, проживания в условиях высокогорья и др.

Уменьшение количества эритроцитов характерно для анемий различного происхождения. От истинной анемии, характеризующейся абсолютным уменьшением эритроцитарной массы, нужно отличать анемию (эритроцитопению) вследствие гидремии (снижение гематокрита из-за увеличения объема плазмы).

Уменьшение количества эритроцитов (анемия, эритроцитопения) наблюдается при постгеморрагических анемиях, анемиях вследствие недостаточного кровеобразования (железодефицитная, витамин-В12- и фолиеводефицитная), анемиях в результате усиленного распада эритроцитов (гемолитические), железоперераспределительных и метапластических (при опухолевых заболеваниях крови) анемиях и др.

Расчет индексов красной крови: цветовой показатель и среднее содержание гемоглобина в одном эритроците.

Под индексами красной крови понимают среднее содержание гемоглобина в одном эритроците и цветовой показатель.

Определение среднего содержания гемоглобина в одном эритроците производят делением концентрации гемоглобина на число эритроцитов в одинаковом объеме крови. В норме 1 эритроцит содержит 33 пг гемоглобина (допустимые колебания 27-33.4 пг).

Величину 33 пг условно принимают за единицу (норма содержания гемоглобина в одном эритроците) и обозначают как цветовой показатель.

Цветовой показатель отражает насыщение эритроцита гемоглобином.

Вычисление цветового показателя (ЦП) производят по формуле:

три первые цифры числа эритроцитов (в миллионах)

две первые цифры числа эритроцитов (в миллионах)

ГЕМОГЛОБИН (в условных единицах)

две первые цифры числа эритроцитов (в миллионах)

В норме цветовой показатель равен 0,85 – 1,05.

Индексы красной крови важны для суждения о нормо-, гипер-, гипохромии эритроцитов.

Гиперхромия – увеличение среднего содержания гемоглобина в 1 эритроците, дающее цветовой показатель выше 1.05, зависит исключительно от увеличения объема эритроцитов, а не от повышенного насыщения их гемоглобином, так как нормальный эритроцит насыщен гемоглобином до предела. Гиперхромия характерна для мегалобластных анемий, обусловленных дефицитом витамина В12 и фолиевой кислоты.

Гипохромия – уменьшение среднего содержания гемоглобина в 1 эритроците, дающее ЦП ниже 0.85, может быть так же следствием уменьшения объема эритроцитов. Гипохромия служит истинным показателем или дефицита железа в организме, или железорефрактерности. Гипохромия наблюдается при хронических кровопотерях, железодефицитных и железорефрактерных анемиях, свинцовой интоксикации и др.

Нормохромия – это нормальное содержание гемоглобина в эритроците (ЦП -0,85-1,05). Нормохромные анемии развиваются при равномерном уменьшении содержания эритроцитов и количества гемоглобина и наблюдается в случаях острых кровопотерь, при гипопластической анемии, при гемолизе, сепсисе.

Гематокрит (гематокритное число) – дает представление о соотношении между объемом плазмы и объемом форменных элементов крови. Определяется с помощью следующих методов.

1. Метод центрифугирования в гематокритной трубке.

Читайте также:  Кровь на анализы при профосмотре

2. Электронно-автоматический метод (с помощью аппаратов «Целлоскоп» и «Культер»).

Нормальные величины гематокрита:

Гематокритное число учитывается при диагностике полицитемических и олигоцитемических состояний.

Ретикулоциты – это молодые эритроциты, содержащие базофильную субстанцию в виде сеточки, представленную агрегированными рибосомами и митохондриями. Сеточка обнаруживается при прижизненной окраске мазков крови 1% раствором бриллианткрезил синего. Подсчет производится под иммерсионным объективом по отношению к 1000 эритроцитов.

В норме содержание ретикулоцитов в периферической крови составляет 2-10º/○○ (0,2-1,2%). Ретикулоцитоз отображает степень регенераторной способности костного мозга. При гемолизе, кровопотерях эритропоэз в нормальном костном мозге активизируется, и число ретикулоцитов в нем и в периферической крови возрастает. Отсутствие роста числа ретикулоцитов в выше указанных ситуациях свидетельствуют о пониженной функции костного мозга.

Ретикулоцитоз при отсутствии анемии говорит о скрытых, но хорошо компенсированных потерях крови. Высокий ретикулоцитоз наблюдается при адекватном лечении витамин-В12-дефицитной анемии.

Дата добавления: 2016-10-23 ; просмотров: 618 | Нарушение авторских прав

источник

Кровь для клинического анализа берут из IV пальца левой руки. Если это по каким-либо причи­нам сделать невозможно, то кровь можно получить из любого другого пальца. Наиболее удобным местом для укола является мякоть пальца слева от срединной ли­нии, на некотором расстоянии от ногтя (у маленьких детей местом укола служит мочка уха, большой палец ноги или пятка).

· Подготовить на манипуляционном столе набор для забора крови из

пальца, проверив целостность упаковок и дату стерилизации:

· индивидуальное стерильное предметное часовое стекло или пробирку одноразового использования, стерильное предметное стекло для приготовления мазка крови, резиновый баллончик, перчатки.

· на рабочем столе оформить сопроводительные документы;

· помочь пациенту найти удобное положение;

· разъяснить пациенту суть предстоящей процедуры, создавая

атмосферу доверия, предоставляя возможность задать вопросы;

· обработать руки спиртовым антисептиком;

· Левой рукой лаборант захватывает IV палец левой руки обследуемого, слегка сдавливая при этом мякоть пальца в области предполагаемого укола. В пра­вую руку лаборант берет иглу для одноразового пользо­вания и располагает ее строго перпендикулярно отно­сительно места предполагаемого укола. обработать подушечку пальца стерильным ватным шариком, смоченным спиртовым антисептиком;

· сбросить шарик в емкость для отходов «Класса. Б»;

· вскрыть одноразовый скарификатор и сделать прокол на подушечке

безымянного пальца. Укол лучше производить сбоку, где более густая

капиллярная сеть, на глубину 2-3 мм в зависимости от толщины кожи;

· использованный скарификатор сбросить в контейнер «Для колющих

· сухим стерильным шариком убрать каплю крови с пальца

пациента, шарик сбросить в емкость для отходов «Класса Б»;

· произвести забор крови из пальца с использованием стерильных

капилляров или одноразовых пробирок;

Взятие крови для гематологических исследований может осуществляться 3 способами:

I. После прокола пальца несколько капель крови (не менее 3-4) спускают на индивидуальное предметное (часовое) стекло или гнездо пластикового планшета, перемешивают и используют для работы.

II. Кровь набирают индивидуальным, стерильным капилляром Панченкова, предварительно смоченным цитратом натрия.

III. После прокола кожи пальца, 6-8 капель крови спускают в пластиковую пробирку с антикоагулянтом. К» ЭДТА или К3ЭДТА (трилон Б) из расчета 1,5-2,2 мг на 1 мл крови, либо в специальные пластиковые пробирки одноразового пользования, обработанных. Сразу же после взятия пробу необходимо тщательно перемешать, перевернув пробирку крышкой вниз не менее 10 раз.

В случае использования 1 или 2 способа взятия крови в лаборатории заранее готовятся следующие пробирки с:

1. 4 мл 0,9% изотонического раствора натрия хлорида для подсчета числа эритроцитов,

2. 5 мл трансформирующего раствора для определения гемоглобина,

3. 0,4 мл 3% раствора уксусной кислоты для подсчета числа лейкоцитов.

4. 5% раствором трехзамещенного цитрата натрия, набранного в капилляр Панченкова до метки 25 и слитого в пробирку для определения СОЭ.

Сразу после взятия крови в 1, 2 и 3-ю пробирки добавляют по 20 мкл крови и несколько раз промывают пипетку в верхнем слое жидкости. Исследование крови начинают с разведения для эритроцитов, так как дальнейшая работа по определению количества лейкоцитов и содержания гемоглобина связана с использованием реактивов, лидирующих эритроциты. Для определения СОЭ в капилляр, промытый цитратом натрия, набирают кровь до метки 0 (100 делений) и выдувают ее в пробирку с раствором цитрата натрия (соотношение крови и реактива — 4:1), пробирку встряхивают.

Для исследования лейкоцитарной формулы, морфологии эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов готовят мазки крови: вытирают место укола сухим шариком ваты и наносят каплю крови на сухое обезжиренное предметное стекло, затем быстро готовят тонкие мазки с помощью шлифованного стекла

Внимание! Кровь забирается только самотеком!

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Лучшие изречения: Для студентов недели бывают четные, нечетные и зачетные. 9140 — | 7319 — или читать все.

195.133.146.119 © studopedia.ru Не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования. Есть нарушение авторского права? Напишите нам | Обратная связь.

Отключите adBlock!
и обновите страницу (F5)

очень нужно

источник

В лабораторной практике используют капиллярную кровь,

которую получают путем укола в мякоть боковой поверхности 4-го

пальца левой руки или мочки уха, или венозную кровь из локте-

вой вены ( при работе на автоанализаторах). Для забора крови

используют иглы-скорификаторы, которые после употребления моют

и кипятят в стерилизаторе или помещают на 2 часа в сушильный

шкаф при температуре 180 С.

1.Кровь для планового анализа следует брать утром натощак

или через 1 час после легкого завтрака.Не рекомендуется брать

кровь сразу после физической или умственной нагрузки,паренте-

рального введения медикаментов, физиотерапевтических процедур,

рентгенологического исследования и т.д. Так, нервное напряже-

ние , эмоциональные перегрузки ведут к развитию кратковремен-

ного нейтрофильного лейкоцитоза без существенного омоложения

состава лейкоцитов. Несколько повышает уровень лейкоцитов в

крови прием пищи. Аналогичный эффект вызывается введением ад-

реналина. В основе этой реакции лежит преимущественно мобили-

зация сосудистого гранулоцитарного резерва. При этом лейкоци-

тоз в течение нескольких десятков минут. Медиаторы (норадрена-

лин, ацетилхолин) влияют на кроветворную систему, не только

вызывая перераспределение крови, но и путем прямого воз-

действия на стволовые клетки, в которых имеются адрено- и хо-

линорецепторы.Лейкоцитоз с палочкоядерным сдвигом вызывается

введением пирогенола и глюкокортикоидных стероидных гормонов,

достигая максимума через 2-6 часов и обусловлен выходом грану-

лоцитов из костномозгового резерва. Содержание гранулоцитов в

костномозговом резерве превышает их количество в кровеносном

русле в 30-50 раз. Такие гормоны как андрогены, стимулируют

эритропоэз,мобилизируя эндогенный эритропоэтин.

Повторные исследования следует проводить в одни и те же

часы, поскольку морфологический состав крови подвержен колеба-

2. Кожу на месте укола протирают ватным тампоном, смочен-

ным сначала 70 спиртом, затем эфиром.Укол лучше производить

сбоку, где более густая капиллярная сеть, на глубину 2-3 мм в

зависимости от толщины кожи.Кровь из ранки должна вытекать

свободно, т.к. при сильном надавливании на палец возможно при-

мешивание тканевой жидкости, что приводит к искажению резуль-

3. Затем сухим тампоном удаляется первая капля крови.

4. Не прикасаясь к раневой поверхности , с помощью пере-

ходника и резиновой груши наполнить кровью капилляр до метки.

5. Новым стерильным тампоном, смоченным 70 спиртом, обро-

ботать раневую поверхность пальца.

Перед каждым забором крови лаборант моет руки под проточ-

ной водой с мылом или обрабатывает их стерильным тампоном,

ОСНОВНЫЕ ПОЛОЖЕНИЯ ПРИКАЗА МЗ РБ N 66 от 2 апреля 1993

«О МЕРАХ ПО СНИЖЕНИЮ ЗАБОЛЕВАЕМОСТИ ВИРУСНЫМИ ГЕПАТИТАМИ В РБ»

При манипуляциях, лабораторных исследованиях с возможным

попаданием на медицинского работника крови или других биологи-

ческих жидкостей используются средства индивидуальной защи-

ты:обязательны халат хирургического типа, резиновые перчат-

Любое повреждение кожи, слизистых,забрызгивание их кровью

или другой биологической жидкостью пациента при оказании им

медицинской помощи должно квалифицироваться как возможный кон-

такт с материалом, содержащим ВИЧ или другой агент инфекцион-

Если контакт с кровью или другой биологической жидкостью

произошел с нарушением целостности кожных покровов (укол, по-

— быстро снять перчатки рабочей поверхностью внутрь;

— сразу же выдавить из раны кровь;

— поврежденное место обеззаразить одним из дезинфицирую-

щих растворов (70 спирт, 5% настойка иода при порезах, 3%

раствор перекиси водорода при уколах и др.);

— руки вымыть под проточной водой с мылом и затем проте-

— на рану наложить пластырь, надеть напальчник;

— при необходимости продолжить работу надеть новые пер-

В случае загрязнения кровью или другой био.жидкостью без

— обработать кожу спиртом, а при его отсутствии 3% раст-

вором перекиси водорода, 3% р-ром хлорамина или другими

— промыть место загрязнения водой с мылом и повторно об-

При попадании био.материала на слизистые оболочки:

— полости рта: прополоскать 70 спиртом;

— полости носа: закапать 30% р-р альбуцида из тюбика-ка-

— глаза: промыть водой (чистыми руками), закапать

несколько капель 30% р-ра альбуцида из тюбика-капельницы.

При отсутствии 30% р-ра альбуцида для обработки слизистых

оболочек носа и глаз можно использовать 0.05% р-р марганцево-

При попадании био.материала на халат, одежду:

— это место немедленно обработать одним из дез. растворов.

При промакании одежды и/или ее массивном загрязнении :

— далее одежда снимается и замачивается одном из

дез.растворов ( кроме 6% перекиси водорода, нейтрального ги-

похлорита Са, которые разрушают ткани) или помещается в полиэ-

тиленовый пакет для автоклавирования;

— кожа рук и других участков тела под местом загрязнения

одежды протирается 70 спиртом, затем следует промыть водой с

источник

Медицинская сестра накануне исследования должна предупредить больного о предстоящем заборе крови и разъяснить, что кровь берут натощак, до приёма лекарственных средств, а на ужин не следует употреблять жирную пищу.

При заборе крови из вены время наложения жгута должно быть по возможности минимальным, так как длительный стаз крови повышает содержание общего белка и его фракций, кальция, калия и других компонентов.

В зависимости от цели исследования забор крови для лабораторного анализа осуществляют из пальца (капиллярная кровь) и из вены (венозная кровь).

Кровь из пальца берёт лаборант. Этот анализ необходим для количественного и качественного изучения форменных элементов крови (эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов), определения количества в крови гемоглобина и скорости оседания эритроцитов (СОЭ). Такой анализ называют общим анализом крови. Кроме того, в ряде

случаев из пальца берут кровь для определения содержания в крови глюкозы, а также свёртываемости крови и времени кровотечения.

В настоящее время созданы аппараты (например, «Холестех», США), в которых на основе восковой матрицы осуществляется возможность из капли крови, взятой из пальца, определять содержание в крови общего холестерина, холестерина липопротеидов высокой, низкой и очень низкой плотности, триглицеридов и глюкозы, рассчитывать индекс атерогенности и риск развития ИБС.

Кровь из вены берёт процедурная медицинская сестра посредством пункции в большинстве случаев локтевой вены; кровь смешивается в пробирке с противосвёртывающим веществом (гепарин, натрия цитрат). Забор крови из вены осуществляют с целью количественного изучения биохимических показателей крови (так называемых печёночных проб, ревматологических проб, содержания глюкозы, фибриногена, мочевины, креатинина), обнаружения возбудителей инфекции (взятие крови на гемокультуру и определение чувствительности к антибиотикам) и антител к ВИЧ. Объём забираемой из вены крови зависит от количества определяемых компонентов — обычно из расчёта 1-2 мл на каждый вид анализа.

Взятие крови на исследование из вены

Противопоказания к процедуре определяет врач. К ним относят крайне тяжёлое состояние пациента, спавшиеся вены, судороги, возбуждённое состояние пациента.

Весь использованный во время манипуляции материал необходимо продезинфицировать.

Резиновый жгут и клеёнчатый валик протирают дважды ветошью, смоченной дезинфицирующим раствором (например, 3% раствором хлорамина Б), и промывают проточной водой. Использованный ватный шарик с кровью обязательно следует забрать у пациента и, прежде чем поместить его в отходы, замочить в дезинфицирующем растворе не менее чем на 60 мин. Дезинфицирующим раствором необходимо обработать также и рабочий стол.

• одноразовые (стерильные) шприцы с иглами;

• стерильный лоток с ватными шариками и пинцетом;

• резиновый жгут, резиновый валик и салфетка;

• 70% раствор спирта, чистые пробирки с пробочками в штативе;

• спецодежда (халат, маска, стерильные перчатки);

• лоток для использованного материала;

• тонометр, фонендоскоп, противошоковый набор лекарственных средств.

Порядок выполнения процедуры:

1. Подготовить пациента — помочь ему занять удобное положение сидя или лёжа.

2. Подготовиться к процедуре: пронумеровать пробирку и направление на анализ (одина-

ковым порядковым номером), вымыть и высушить руки, надеть спецодежду, обработать руки ватными шариками, смоченными 70% раствором спирта, надеть перчатки.

3. Подложить под локоть пациента клеёнчатый валик для максимального разгибания локтевого сустава.

4. Освободить от одежды руку или поднять рукав рубашки до средней трети плеча таким

образом, чтобы был обеспечен свободный доступ к области локтевого сгиба.

5. Наложить резиновый жгут в области средней трети плеча выше локтевого сгиба на 10 см и затянуть жгут, чтобы петля жгута была направлена вниз, а свободные его концы —

вверх (чтобы концы жгута во время венепункции не попали на обработанное спиртом поле).

6. Обработать одетые в перчатки руки 70% раствором спирта.

7. Предложить пациенту «поработать кулаком» — несколько раз сжать и разжать кулак для

8. Попросить пациента сжать кулак и не разжимать до тех пор, пока медсестра не разре-

шит; при этом дважды обработать кожу в области локтевого сгиба ватными шариками, смоченными 70% раствором спирта, в одном направлении — сверху вниз, сначала широко (размер инъекционного поля составляет 4×8 см), затем — непосредственно место пункции.

Читайте также:  Поджелудочная железа биохимический анализ крови

9. Найти наиболее наполненную вену; затем кончиками пальцев левой руки оттянуть кожу

локтевого сгиба в сторону предплечья и фиксировать вену.

10. В правую руку взять приготовленный для пункции шприц с иглой.

11. Провести венепункцию: держа иглу срезом вверх под углом 45°, ввести иглу под кожу;

затем, уменьшив угол наклона и держа иглу почти параллельно кожной поверхности, продвинуть иглу немного вдоль вены и ввести её на треть её длины в вену. При проколе вены возникает ощущение «провала» иглы в пустоту.

12. Убедиться, что игла находится в вене, слегка потянув поршень иглы на себя; при этом

в шприце должна появиться кровь.

13. Не снимая жгут, продолжить тянуть поршень шприца на себя для набора необходимого

14. Развязать жгут и предложить больному разжать кулак.

15. Прижать ватный шарик, смоченный в 70% растворе спирта, к месту инъекции и быстро извлечь иглу.

В ряде случаев во избежание повреждения форменных элементов крови (например, при исследовании агрегационной функции тромбоцитов) кровь нельзя набирать шприцем. В такой ситуации следует набирать кровь «самотёком» — подставить под иглу (без шприца) пробирку и подождать, пока она заполнится необходимым количеством крови.

16. Предложить больному согнуть руку в локтевом сгибе вместе с ватным шариком и оставить так на 3-5 мин для остановки кровотечения.

17. Снять иглу со шприца, медленно выпустить кровь в пробирку по её стенке (быстрое поступление крови в пробирку может привести к её вспениванию и, следовательно, гемолизу крови в пробирке) и закрыть пробирку пробочкой.

18. Сложить использованные материалы в специально приготовленный лоток, снять перчатки.

19. Спросить у пациента о его самочувствии, помочь ему встать или удобно лечь.

20. Оформить направление в лабораторию, поместить штатив с пробирками в ёмкость для

транспортировки биологических жидкостей (бикс) и отправить в лабораторию для исследования.

NB!При подозрении на гепатит или ВИЧ-инфекцию у больного ёмкость с кровью необходимо дополнительно парафинировать или закрыть лейкопластырем и поместить в герметичный контейнер.

источник

Взятие крови осуществляется натощак, в утренние часы. В случае острой необходимости взятие крови может проводиться в любое время суток, однако желательно, чтобы с момента последнего приема пищи прошло не менее 3 часов. Существуют общие факторы, влияющие на результат исследований:

  • физическое напряжение (бег, быстрая ходьба, подъем по лестнице);
  • эмоциональное возбуждение;
  • рентгеновское облучение
  • прием пищи перед исследованием.

Поэтому следует соблюдать следующие условия:

  • Взятие крови осуществляется после 15-минутного отдыха обследуемого;
  • Исключается курение и прием алкоголя непосредственно перед взятием крови.

Забор крови для биохимического исследования, гормональных исследований и исследований сыворотки крови на инфекции (ПЦР-диагностика), осуществляется в пластиковые контейнеры без антикоагулянта. Забор крови для общеклинического исследования осуществляется в специальные пластиковые контейнеры с антикоагулянтом.

Кровь для большинства исследований берется строго натощак, то есть когда между последним приемом пищи и взятием крови проходит не менее 8 часов (желательно — не менее 12 ч). Сок, чай, кофе, необходимо тоже исключить. Воду пить можно. За 1-2 дня до обследования исключить из рациона жирную пищу, алкоголь. За час до взятия крови необходимо воздержаться от курения. Перед сдачей крови нужно исключить физические нагрузки. Кровь не следует сдавать сразу после лучевых методов обследования (рентгенологического, ультразвукового исследования), массажа, рефлексотерапии или физиотерапевтических процедур. Поскольку в разных лабораториях могут применяться разные методы исследования и единицы измерения показателей, то для правильной оценки и сравнения результатов ваших лабораторных исследований рекомендуется осуществлять их в одной и той же лаборатории. Для определения холестерина, липопротеидов кровь берут после 12-14 часового голодания. Для определения уровня мочевой кислоты необходимо соблюдать диету: отказаться от употребления пищи богатой пуринами – печени, почек, ограничить в рационе мясо, рыбу, кофе, чай. Норма холестерина крови 3.08-5.2 ммоль/л

Чтобы получить объективный результат, необходимо соблюдать определенные условия перед сдачей анализа крови:

  • за сутки до проведения анализа нельзя употреблять алкоголь;
  • последний прием пищи должен быть за 8-12 часов до анализа, пить можно, но только воду;
  • утром перед анализом нельзя чистить зубы, так как в зубных пастах содержится сахар, который всасывается через слизистую оболочку ротовой полости и может изменить показания анализа. Также нельзя жевать жвачки.

Анализ крови на сахар берут из пальца. При заборе крови из вены исследование будет проводиться при помощи автоматического анализатора, для которого необходим больший объем крови. Также сейчас есть возможность сдать анализ крови на сахар в домашних условиях с помощью глюкометра — портативного прибора для измерения сахара в крови. Однако при использовании глюкометра возможны ошибки, как правило из-за неплотного закрытия тубуса с тест-полосками или его хранение в открытом состоянии. Это связанно с тем, что при взаимодействии с воздухом на тестовой зоне полосок происходит химическая реакция, и они становятся испорченными. В крови, взятой натощак у взрослого человека, сахар (глюкоза) в норме должен находиться в пределах от 3,5 до 5,5 ммоль/л.

Гликемический профиль – это динамическое наблюдение за уровнем сахара в крови в течение суток. Обычно производят 6 или 8 заборов крови из пальца для определения уровня глюкозы: перед каждым приемом пищи и через 90 минут после еды. Определение гликемического профиля проводится пациентам принимающим инсулин по поводу сахарного диабета. Благодаря такому динамическому наблюдению за уровнем глюкозы крови можно определить насколько назначенная терапия позволяет скомпенсировать сахарный диабет. Оценка результатов гликемического профиля:Для сахарного диабета I типа уровень глюкозы считается компенсированным, если ее концентрация натощак и в течение суток не превышает 10 ммоль/л. Для данной формы заболевания допустима небольшая потеря сахара с мочой – до 30 г/сут.

· Сахарный диабет II типа считается скомпенсированным, если концентрация глюкозы в крови утром не превышает 6,0 ммоль/л, а в течение дня – до 8,25 ммоль/л. Глюкоза в моче определяться не должна.

СТТГ – стандартный тест толерантности к глюкозе (сахарная кривая). Также называется Глюкозотолерантный тест (ГТТ). Он показывает состояние углеводного обмена. Проводится СТТГ натощак (последний прием пищи – в ужин, за 12 часов до проведения СТТГ), с нагрузкой глюкозой 1,75 г/кг массы тела, но не более 75 г на прием. Учитывается уровень сахара натощак, через час и через 2 часа после нагрузки. У здорового человека уровень сахара в крови натощак менее 5,5 ммоль/л, при нарушении толерантности к глюкозе (старое название – латентный, или скрытый, сахарный диабет) – от 5,5 до 7 ммоль/л, при сахарном диабете (СД) – более 7 ммоль/л. Через час у здорового человека уровень сахара поднимается не более чем на 30% от исходного уровня. Через 2 часа сахар в крови у здорового человека менее 7,2 ммоль/л, при нарушении толерантности к глюкозе (НТГ) – от 7,2 до 11 ммоль/л. Повышение уровня сахара более 11 ммоль/л говорит о наличии сахарного диабета.

Мочу собирают после тщательного туалета наружных половых органов в стерильную бакпечатку с герметичной крышкой. При подозрении на уретрит собирают первую порцию мочи (в начале мочеиспускания), в остальных случаях среднюю порцию мочи (в середине мочеиспускания). Мочу собирают в количестве 10-30 мл. Время доставки в лабораторию – не более 3 часов. Мочу собирают утром, натощак, сазу после сна. Перед сбором мочи проводят тщательный туалет наружных половых органов. Длительное хранение мочи при комнатной температуре до исследования приводит к изменению физических свойств, разрушению клеток и размножению бактерий. В связи с этим, некоторое время мочу можно хранить в холодильнике, но не доводить до замерзания! Доставлять в лабораторию мочу следует в бакпечатке или бутылке из темного стекла. Различные виды исследования мочи.

· Общий анализ мочи. Собирают всю порцию утренней мочи при свободном мочеиспускании в чистую стеклянную емкость, тщательно перемешивают и отливают 50-100 мл в емкость для доставки в лабораторию.

· Анализ мочи по Нечипоренко. Собирают СРЕДНЮЮ ПОРЦИЮ утренней мочи при свободном мочеиспускании в емкость для доставки в лабораторию.

Показания к исследованию: острые и хронические гнойно-воспалительные заболевания мочевыводящей системы (цистит, уретрит, пиелонефрит).

Утреннюю мокроту (до приема пищи), выделяющуюся во время приступа кашля, собирают в стерильную банку или в стерильный контейнер (бакпечатку) с герметичной крышкой. Перед сбором материала необходимо почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой с целью механического удаления остатков пищи и микрофлоры ротовой полости. Если мокрота отделяется в скудном количестве, необходимо накануне сбора материала принять отхаркивающие средства. Можно применять аэрозольную ингаляцию, провоцирующую усиление секреции бронхов или использовать ингаляцию горячего солевого гипертонического раствора в течение 10-20 минут. Мокроту можно хранить до исследования в холодильнике при 3-5 С◦ не более 3 часов.

Показания к исследованию: инфекции дыхательных путей, бронхит, пневмония.

Материал для микроскопического исследования (мазок) берут специальным стерильным одноразовым зондом-щеткой и равномерно размазывают на предметном стекле. При размещении на одном стекле мазков из разных локализаций, МЕСТА НАНЕСЕНИЯ МАЗКА ДОЛЖНЫ БЫТЬ ПОМЕЧЕНЫ: «U» – уретра, «V» – влагалище, «C» – цервикальный канал. Забор материала производится сотрудниками лечебных отделений:

Цитологический мазок берется, согласно требованиям, из трех участков слизистой влагалища: из его сводов, с внешней поверхности шейки матки и из канала шейки матки. При этом используется специальный шпатель. После взятия каждый образец наносится на стекло, а затем отправляется на тщательный анализ в цитологическую лабораторию. Там, в свою очередь, цитологические мазки детально изучаются на предмет наличия малейших отклонений в строении клеток. Рекомендуемая частота взятия мазка составляет раз в год или полтора года.

Лучшее время для мазка — любое время без менструальных выделений. За 2 дня до начала теста избегайте следующего, поскольку это может замаскировать аномальные клетки и привести к ложноотрицательным результатам мазка:

· Вагинальные препараты (кроме выписанных врачом)

· Вагинальные контрацептивны такие как контрацептивные пены, кремы или желе.

Мазок не должен быть болезненным. Если женщина испытывает боль во время теста, она должна обратить на это внимание врача.

За 7—10 дней до сдачи анализа отменить лекарственные препараты (все слабительные, препараты висмута, железа, ректальные свечи на жировой основе, ферменты и другие препараты, влияющие на процессы переваривания и всасывания). Нельзя накануне делать клизмы. После рентгенологического исследования желудка и кишечника проведение анализа кала возможно не ранее, чем через двое суток. В течение 4—5 дней необходимо придерживаться следующей диеты: молоко, молочные продукты, каши, картофельное пюре, белый хлеб с маслом, 1—2 яйца всмятку, немного свежих фруктов. Кал собирается после самостоятельного опорожнения кишечника в одноразовый пластиковый контейнер с герметичной крышкой. Следует избегать примеси к калу мочи. Контейнер с калом необходимо доставить в лабораторию в день сбора материала, до отправки хранить в холодильнике (4—6 С0).

Кал собирают в одноразовый контейнер с завинчивающейся крышкой и ложечкой в количестве не более 1/3 объема контейнера. Материал должен быть доставлен в лабораторию в этот же день. Во время сбора избегать примесей мочи, отделяемого половых органов. Показания к назначению анализа:

· Подозрение на заражение гельминтами;

· «Барьерный» анализ (при госпитализации, оформлении медицинской книжки и т. д.)

За 7—10 дней до сдачи анализа отменить лекарственные препараты (все слабительные, препараты висмута, железа). Нельзя накануне делать клизмы. После рентгенологического исследования желудка и кишечника проведение анализа кала назначается не ранее, чем через двое суток. До анализа за три дня исключить из рациона мясо, печень и все продукты, содержащие железо (яблоки, перец болгарский, шпинат, белую фасоль, зеленый лук). Кал собирается после самостоятельного опорожнения кишечника в одноразовый пластиковый контейнер с герметичной крышкой. Следует избегать примеси к калу мочи. Контейнер с калом необходимо доставить в лабораторию в день сбора материала, до отправки хранить в холодильнике (4—6 С0).

Порядок взятия крови. При сдаче венозной крови желательно исключить факторы, влияющие на результаты исследований: физическое и эмоциональное напряжение, курение (за 1 час до исследования). Кровь из вены запрещено брать сразу после прохождения пациентом рентгенологического и ультразвукового исследований, а также после выполнения физиотерапевтических процедур. Рекомендуется за 1-2 дня до предполагаемого исследования не употреблять жирную пищу и алкоголь. Если вы принимаете лекарства, обязательно предупредите об этом лечащего врача. Забор крови для определения гормонов проводится строго натощак (спустя 6-8 часов после последнего приема пищи). У женщин репродуктивного возраста (примерно с 12-13 лет и до наступления климактерического периода) на результаты влияют физиологические факторы, связанные с фазой менструального цикла, поэтому при обследовании на половые гормоны необходимо указать день менструального цикла (срок беременности). Забор крови осуществляется из вены, в первой половине дня (до 12ч ) в одноразовую пластиковую пробирку без антикоагулянта в объеме 4-8мл. Кровь собирают в стерильную сухую пробирку, шприц-моновет или вакуумную пробирку (Vacutainer®, Vacuette®) с красной крышкой. Материалом для исследования является сыворотка .

Особенности взятия биоматериала: Кровь для исследования на сифилис, РИФ берут из локтевой вены натощак или не ранее чем через 4 ч после приема пищи (при динамическом наблюдении – всегда в одни и те же часы) отправляется в лабораторию в день забора. До следующего дня кровь хранить нельзя!

Правила взятия, хранения и транспортировки биоматериала для иммунохимических исследований и маркёров инфекционных заболеваний

Читайте также:  Общий анализ крови рязанский проспект

Общие рекомендации: забор крови производят в утренние часы, строго натощак в комфортных для пациентах психологических условиях. Накануне взятия крови исключить физические нагрузки, стрессовые ситуации, физиотерапевтические процедуры; прием лекарственных средств (решение об отмене медикаментозного лечения принимает лечащий врач), оральных контрацептивов; употребление спиртных напитков и жирной пищи. Непосредственно перед исследованием не курить. Исследованию подлежит сыворотка, не содержащая примеси эритроцитов, бактериальных проростов, хилёза, гемолиза. При наличии любого из указанных признаков сыворотка уничтожается и назначается повторное взятие крови.

Материалом для исследования является венозная кровь, которая берется из локтевой вены

Для получения достоверных результатов клинический материал на исследования должен забираться до назначения антибактериальных и биопрепаратов или через 2 недели после их отмены. Пробу следует передать в лабораторию не позднее 2 ч с момента сбора.

Провести тщательный туалет наружных половых органов и область заднего прохода теплой кипяченой водой с мылом (девочек подмывают спереди назад). Просушить стерильной салфеткой. Исследованию подлежит средняя порция свободно выпущенной утренней мочи. Пробу в количестве 20-50 мл (у детей — 10-15мл) необходимо собрать в стерильный пластиковый одноразовый контейнер с завинчивающейся крышкой.

— у маленьких детей. После мочеиспускания провести тщательный туалет наружных половых органов, напоить ребенка и ожидать следующего мочеиспускания для забора мочи;

— у женщин. Перед забором закрыть влагалище ватным тампоном.

Исследуют свободно откашливаемую мокроту (предпочтительно утреннюю), натощак. Пациент предварительно должен почистить зубы и сполоснуть рот и горло водой. Нельзя собирать слюну и носоглоточное отделяемое. В домашних условиях для лучшего разжижения мокроты можно дать горячее обильное питье, сделать массаж спины. Мокроту собирают в стерильный пластиковый контейнер с завинчивающейся крышкой.

Несколько дней до исследования не следует принимать активированный уголь и биопрепараты. Отбор материала производят в день сдачи анализа. Горшок или судно предварительно дезинфицируют, тщательно моют в мыльной воде, ополаскивают, обрабатывают кипятком, остужают. Для сбора испражнений нельзя использовать туалетную бумагу, нельзя загрязнять мочой. Допустим забор материала с памперса или с проглаженной пеленки. Для сбора испражнений рекомендуется стерильный пластиковый контейнер с лопаточкой и завинчивающейся крышкой.

Материал для анализа забирают лопаточкой, вмонтированной в крышку флакона, из средней и последней порций кала (3-4 лопаточки – 1,5-2 г). Жидкими фекалиями заполняют не более 1/3 флакона.

При отсутствии возможности доставки в лабораторию материала в течение 2 часов, пробу возможно хранить при температуре +8°С не более 5 часов.

Правила забора грудного молока

В день обследования утром женщина принимает душ и надевает чистое белье. Перед сцеживанием молока необходимо вымыть руки с мылом, одеть маску. Затем следует обмыть левую и правую грудную железу теплой водой с мылом и насухо вытереть чистым полотенцем. Поверхность сосков и околососковую область молочных желез необходимо обработать отдельными ватными тампонами, смоченными 70°С этиловым спиртом. Первая порция грудного молока выливается, последующие 3-4 мл сцеживаются из каждой железы в отдельную стерильную посуду (контейнер). В течение 2 часов грудное молоко должно быть доставлено в лабораторию.

В случае исследования раневого отделяемого, забор материала из раны проводится до перевязки.

При исследовании мазков из зева, взятие материала ведется до употребления пищи, пациенту не рекомендуется чистить зубы.

При взятии мазков с конъюнктивы, не рекомендуется проведение предварительной санитарной обработки (умывание), необходимо в утро дня сдачи анализа отказаться от закапывания лекарственных препаратов в глаза.

Бюджетное учреждение ХМАО Югры
МЕГИОНСКАЯ ГОРОДСКАЯ БОЛЬНИЦА №1

источник

Участие сестры в лабораторных методах исследования

Сестринский процесс предполагает всестороннюю оценку состояния здоровья пациента. Первый этап включает субъективное и объективное обследование. Объективное обследование определяет помимо физического обследования, дополнительные методы:

• инструментальные(рентгеноскопия, эндоскопия, УЗИ, радиоизитопные)

Материал для лабораторных исследований — это раз личные биологические жидкости (субстраты): кровь, её компоненты (плазма, эритроциты), моча, кал, желудочный сок, жёлчь, мокрота, выпотные жидкости (экссудат, транссудат), ткани паренхиматозных органов, получаемые при биопсии.

v Перед взятием биологического субстрата необходимо получить информированное согласие пациента на выполнение процедуры

v Необходимо соблюдать конфиденциальность результатов обследования.

Ø Срочность исследования биологического материала указывают символом «CITO»

Правила забора, хранения, и транспортировки биоматериала

• подготовку пациента перед взятием материала для исследования (забор крови в состоянии натощак, учет физиологических отправлений, сопутствующей патологии, приема лекарственных препаратов);

• идентичность условий сбора (требования к лабораторной посуде, объём и состояние материала);

• правила венозного жгута (длительное пережатие способствует увеличению концентрации гемоглобина, белков, минералов за счет выхода жидкости в ткани);

• применение ингибиторов и консервантов при необходимости (некоторые анализы мочи, кал на микрофлору);

• правила хранения (температурный режим,. сроки, лабораторная посуда, контейнеры, транспортные средства).

Факторы риска для лабораторных результатов:

фармакотерапия, техника забора, чистотa/ стерильность лабораторной посуды

гемолиз вследствие механического и холодового воздействия, нарушение пищевого режима

Достоверность результатов лабораторных методов исследования определяет исключение экзогенных и эндогенных факторов.

Виды лабораторий, их назначение

Определение физико-химических свойств биологических субстратов (например, общий анализ крови, мочи, мокроты; биохимическое исследование крови: холестерин, общий белок, билирубин; кал на скрытую кровь, яйца гельминтов, простейшие).

Для транспортировки биоматериалов в лабораторию используют специальные контейнеры (одноразового пользования) или чистую, сухую, стеклянную посуду.

Выявление микробного состава и идентификация микрофлоры (например, моча на стерильность, кал на кишечную группу, мазок из зева при подозрении на дифтерию).

Сестра получает для забора материала стерильную посуду, подготовленную в бактериологической лаборатории.

Проведение исследований по маркерам к некоторым инфекционным агентам, а также естественным (нормальным) антителам к широко распространенным бактериям и вирусам (кровь на ВИЧ, гепатиты В и С, RW-инфекцию).

Забор крови для различных методов исследования

К этому виду диагностики относится общий (клинический) анализ крови.

Общий анализ крови является одним из важнейших клинических исследований, которое проводится при большинстве заболеваний, а также в рамках профилактического обследования (диспансеризации). При диагностике заболеваний крови данному тесту отводится ведущая роль.

Важно:общий анализ крови из пальца берут натощак в утренние часы. Во избежание искажения результатов за 8 часов нельзя принимать пищу, а пить можно только воду.

Перед анализом крови не допускается прием напитков, содержащих алкоголь, а также чая, кофе и соков.

Традиционно забор крови проводят из безымянного пальца, проколов кожу стерильным скарификатором на глубину в 2-3 мм. Первую каплю обычно удаляют с помощью ватного тампона, затем набирают кровь для определения уровня гемоглобина и скорости оседания эритроцитов, следующую порцию – для установления количества белых и красных кровяных телец. Мазки для микроскопии делают с помощью стекол.

Лабораторное исследование предполагает:

· определение количества различных форменных элементов (клеток);

· установление основных параметров клеток крови (размер, вид и пр.);

· измерение уровня (концентрации) гемоглобина;

· определение лейкоцитарной формулы;

Биохимический анализ крови – это комплекс лабораторных методов исследования различных показателей крови отражающих состояние обмена веществ и функций внутренних органов.

Он позволяет определить у обследуемого:

· уровень содержания глюкозы (анализ крови на сахар);

· белки, в частности альбумины, С-реактивный белок

· ферменты плазмы крови. Аминотрансферазы –;

· пигменты. Самый важный среди них – билирубин.;

· калий — уменьшение содержание этого элемента в крови свидетельствует об обезвоживании, длительном применении мочегонных препаратов, заболеваниях почек, обменных болезнях. Увеличение калия наблюдается при тяжелых травмах, ожогах;

· натрий — снижается в анализе из-за недостаточного поступления с пищей, при обильной потере жидкости, ожогах, потоотделении, поносах, рвоте, приеме мочегонных. Увеличение наступает при сердечных проблемах, повышенном артериальном давлении, почечной недостаточности;

· кальций, фосфаты — отклонение от нормы этих элементов бывает при различных патологиях – нарушениях обмена веществ, рахите, проблемах всасываемости в ЖКТ, почечной недостаточности и т.д.;

· кислотно-щелочное состояние (КОС). По степени изменения этого показателя можно обнаружить состояние алкалоза и ацидоза в организме.

источник

В основу диагностики ложится ряд исследований, совокупность расшифровок которых являются показателями текущего состояния здоровья пациента. Одно из основных обследований по выявлению отклонений от норм — это общий анализ крови. Данные общего анализа крови по количественному содержанию нормальных веществ, и есть те самые решающие факторы, определяющие ход лечения и прогнозирования болезни.

Ни один врач не сможет установить диагноз, не сверившись с показателями общего анализа крови. Три четверти важной информации по состоянию здоровья выводится по результатам этого исследования.

Забор венозной крови дает полную информативность относительно тех результатов, которые получают при общем анализе, взятом из пальца. Проведение данной процедуры необходимо при подозрении на заболевание любой этиологии. Этот метод обусловлен минимальной травматичностью, высокой скоростью проведения и, при соблюдении всех условий стерильности, является самым безопасным способом диагностики.

После прощупывания сосуда в локтевом сгибе, лаборант резиновым жгутом перетягивает руку в районе предплечья таким образом, чтобы остановить венозный кровоток. Затем происходит антисептическая обработка места проведения пункции, и введение иглы шприца в вену. Нужное количество крови определяется характером проводимого анализа.

В течение взятия крови из вены, необходимо прислушиваться к рекомендации лаборанта, последовательно выполняя его требования (сжатие, расслабления мышцы руки и др.). В ситуации резкого головокружения, тошноты, потемнения в глазах, нужно немедленно сообщить об этом медику.

Значительно отличается методика забора крови из пальца. Совершается прокол безымянного пальца специальной иглой-скарификатором, затем первая выступившая кровь стирается (она не несет необходимой информации) и происходит трехфазовый забор. Первично набранная кровь идет на выяснение уровня гемоглобина и СОЭ, вторая порция — на выявление количественного наличия форменных элементов. Третья фаза включает в себе приложение к месту прокола стерильного стеклышка, используемого затем, для изучения состава крови под микроскопом.

Даже если методика выполнения забора анализа соответствовала всем основным требованиям, показатели крови могут быть искажены неправильным поведением самого пациента и игнорированием им подготовки, предшествующей анализу.

Существует набор определенных несложных правил, обуславливающих точность, соответствующую реальному состоянию человека:

  1. Исследование должно проводится натощак. Кушать перед ним нельзя на протяжении десяти часов минимум. Важно! Результаты анализа не могут считаться достоверными, если забор происходил во время продолжительных жестких ограничений в пище, строгих диет, резкой смены пищевых приоритетов (переход на вегетарианство, сыроедство);
  2. За день до обследования нельзя употреблять жирную пищу, а также перегружать почки и печень обилием белков. Последняя еда перед тем, как сдавать анализ, должна состоять преимущественно из постного мяса, круп, овощей. Пить чай, кофе, алкогольную продукцию, соки после последнего приема пищи не нужно. Воду пить можно в любом количестве;
  3. Исключить серьезные физические усилия непосредственно за 20-30 минут до сдачи крови;
  4. Также, категорически запрещено курить в этот временной промежуток;
  5. Если в данный период пациент употребляет антибиотики, препараты, без которых не может обойтись, лаборант, принимающий анализ, должен об этом знать и сделать соответствующую пометку. Различные БАДы, витамины, лекарства второстепенного значения, перед сдачей крови принимать не нужно;
  6. На точность результатов серьезно влияет рентгенологическое излучение. Нужно соотнести эти два исследования таким образом, чтобы сдача анализов произошла не ранее, чем спустя сутки после рентгена.

Самыми и важными показателями, по результатам ОАК считаются: значения по количеству гемоглобина, эритроцитов, ретикулоцитов, эозинофилов, базофилов, гемокрита, гемостаза, тромбоцитов; показатели цвета, СОЭ.

Чтобы выявить возможные отклонения, требуется сверить полученную расшифровку с показаниями таблиц нормального соответствия. Такие таблицы существуют отдельно для взрослых людей, детей грудничкового и более старшего возраста, женщин в период беременности.

Для понимания параметров, указанных на бланке расшифровки, мало их прочитать — необходимо точно знать, что из себя представляет каждый из них. Ниже представлены самые важные значения.

Гемоглобин — это главный элемент в составе эритроцитов (красных кровяных телец). Понижение данного показателя характеризует первичные проявления анемии, развивающейся вследствие дефицита железа в организме. Напротив, повышение значения, может сигнализировать о развитии таких заболеваний, как:

  • опухолевые;
  • раковые;
  • ВИЧ;
  • сердечные;
  • нарушения работы щитовидки;
  • легочные.

Лейкоциты — это клетки, отвечающие за иммунную защиту организма. Повышение их обосновано ответной реакцией на проникновение в организм инородных тел, токсинов, вирусов, причем раздражители могут как появиться извне, так и образоваться в результате внутреннего воспалительного процесса.

Эритроциты — это форменные элементы крови, имеющие в составе одинаковое количество гемоглобина. Эритроциты являются природными капсулами-транспортировщиками кислорода и углекислого газа по кровяному руслу сосудов.

Показания выше нормы количественных данных, может произойти в ответ на:

  • гипоксию;
  • различные хронические заболевания (в том числе, лейкоз, хронические бронхиты).

Понижение данных обусловлено:

  • проявлениями анемии;
  • воспалениями крови;
  • дефицитом витамина В12;
  • сильными кровотечениями.

Тромбоциты отвечают за поддержание жизнедеятельности гемостаза. Повышение их уровня возможно по причинам:

  • кровотечения;
  • чрезмерном физическом усилии;
  • недостатке железа;
  • туберкулезных заболеваниях;
  • циррозных поражениях печени;
  • ревматоидном артрите.
  • заболеваниями аутоиммунного аппарата;
  • усиленным разрушением тромбоцитов;
  • ДВС-синдромом.

Лейкоциты, это белый кровяные вещества, создающие в организме иммунный барьер от воздействия посторонней микробиологической среды. Завышенные значения лейкоцитов говорят о следующих факторах:

  • аллергической реакции;
  • заболевании лейкозом;
  • вирусном, инфекционном заболевании (грипп).

Показатели заниженные, сигнализируют о присутствии:

  • вирусных инфекций;
  • патологии иммунного аппарата генетического происхождения.

Общий анализ крови, известный под аббревиатурой ОАК, является первым клиническим обследованием, назначаемым врачом при жалобе пациента на плохое самочувствие. Большинство заболеваний первично диагностируются, ориентируясь на ОАК, как на достаточное обоснования для лечебных назначений. Доступность этого исследования позволяет получить результат в течении нескольких часов, не придерживаясь никакой очередности.

источник