Меню Рубрики

Транспортировка крови на биохимический анализ

Цель: диагностическая. Показание: обследование пациента.

Осложнения: гематома, тромбофлебит, сепсис, вирусный гепатит, СПИД. Место взятия крови: вены локтевого сгиба, предплечья, кисти.

Приготовьте: стерильные: одноразовый шприц емкостью 10-20 мл, лоток, ватные шарики, салфетки, 70% этиловый спирт, маску, перчатки, пробирки в штативе; резиновый жгут, клеенчатую подушечку, КБУ.

Алгоритм действия:

1. Объясните пациенту цель и ход процедуры, получите согласие. Уточните, не позавтракал ли пациент.

2. Напишите направление в лабораторию, пронумеруйте пробирку.

3. Помогите пациенту занять удобное положение.

4. Проведите деконтаминацию рук на гигиеническом уровне, обработайте их кожным антисептиком.

5. Наденьте маску и перчатки, защитные очки, передник.

6. Вскройте упаковку шприца однократного применения, соберите его, выпустите воздух, не снимая колпачок с иглы, положите шприц во внутреннюю поверхность упаковки.

7. Подложите под локоть пациента клеенчатую подушечку.

8. Наложите резиновый жгут на среднюю треть плеча на салфетку или на нательное белье.

9. Завяжите жгут так, чтобы свободные концы были направлены вверх, а петля вниз.

10.Прощупайте пульс на лучевой артерии ( пульс должен быть сохранен).

11.Исследуйте вену. Найдите наиболее наполненную вену.

12.Попросите пациента несколько раз сжимать и разжимать кулак для наполнения вены, затем зажать его.

13.Обработайте область локтевого сгиба, место инъекции последовательно двумя ватными шариками, смоченными в спирте, сбросьте их в КБУ. Третий ватный шарик держите в левой руке между IV и V пальцами.

14.Возьмите шприц в правую руку: II палец на канюле иглы, а III, IV пальцы охватывают цилиндр сверху, I палец снизу.

15.Зафиксируйте вену ниже предполагаемого места прокола большим пальцем левой руки.

16.Снимите колпачок с иглы и пунктируйте вену, как обычно ( кулак пациента при этом сжат).

17.Потяните поршень на себя, убедитесь, что игла в вене.

18.Наберите в шприц 5-7 мл крови, левой рукой медленно оттягивая поршень на себя.

19.Снимите жгут, кулак пациент должен разжать, быстрым движением извлеките иглу из вены.

20.Приложите ватный шарик со спиртом на место инъекции на 3-5 минут, попросив пациента слегка согнуть руку в локтевом суставе.

21.Снимите иглу со шприца, поместите в (СБУ.

22.Выпустите кровь из шприца медленно без напора в пробирку по стенке, не допуская ее разбрызгивания.

23.Закройте пробирку непромокаемой пробкой.

24.Пробирку с кровью вместе со штативом поставьте в контейнер, плотно закройте его.

25.Помогите пациенту встать или занять комфортное положение.

26.Убедитесь, что кровь не выделяется из места прокола вены, возьмите у пациента ватный шарик и поместите его в КБУ.

27.Отправьте контейнер и направление в биохимическую лабораторию.

28. Снимите перчатки, поместите в КБУ.

29. Вымойте и осушите руки.
Примечание:

— забор крови из вены на биохимический анализ проводится утром натощак в количестве 10 мл;

— забор крови на ВИЧ и К\У производят в любое время дня в количестве 5 мл;

— пробирка для забора крови должна быть сухой (иначе наступает гемолиз эритроцитов), химически чистой, иметь притертую резиновую пробку;

— запрещается проводить забор крови без шприца — только иглой

(имеется опасность разбрызгивания крови);

— в направлении укажите номер пробирки, цель исследования,

Ф.И.О, пол, возраст пациента, диагноз, отделение;

— наличие безопасной системы забора крови вакутайнер (ВО

(VACUTAINER) создает максимальную защиту медперсонала,

обеспечивает качество забираемого материала.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Лучшие изречения: Сдача сессии и защита диплома — страшная бессонница, которая потом кажется страшным сном. 8514 — | 7040 — или читать все.

195.133.146.119 © studopedia.ru Не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования. Есть нарушение авторского права? Напишите нам | Обратная связь.

Отключите adBlock!
и обновите страницу (F5)

очень нужно

источник

При доставке материала в лабораторию всегда необходимо помнить о правилах доставки биологического материала в лабораторию. Также необходимо помнить об особенностях некоторых проб при транспортировке. Например, если взята артериальная кровь для исследования газов крови, то емкость с кровью должна быть хорошо закупорена, погружена в ледяную воду и как можно скорее доставлена в лабораторию, так как гликолиз в эритроцитах и лейкоцитах вызывает снижение рН крови, если проба будет находиться около 20 минут при комнатной температуре. Эти требования необходимо соблюдать и при исследовании капиллярной крови, которую забирают в гепаринизированные капилляры. Кровь, взятая для исследования на АКТГ, ангиотензин 1,2, ренин, должна быть сразу после взятия помещена в лед и как можно быстрее доставлена в лабораторию.

Общим правилом должна быть доставка материала в лабораторию как можно быстрее. Например:

· чем раньше сыворотка отделена от эритроцитов, тем меньше влияние гликолиза (значит, будет меньшим влияние на содержание глюкозы, фосфора и некоторых ферментов;

· уровень билирубина снижается под воздействием света (особенно яркого солнечного;

· действие света повышает активность щелочной фосфатазы;

· фактор времени является важным и в бактериологии (ряд бактерий гибнет при комнатной температуре).

Все особенности взятия и транспортировки проб необходимо изложить в инструкцию по взятию, сбору, и доставке биоматериала в лабораторию и утвердить у руководителя.

Основные требования для транспортировки проб для бактериологических исследований:

1. При взятии проб материала на бактериологическое исследование важное значение имеет правильный выбор контейнера для сбора и транспортировки образца в лабораторию:

· стерильность;

· наличие транспортной или питательной среды для определенных микроорганизмов.

2. Быстрая транспортировка проб в лабораторию и соблюдение при этом температурного режима. Эти требования обусловлены целым рядом особенностей самих микроорганизмов:

· охлаждение и снижение рН биологического материала, а также воздействие кислорода снижают выживаемость таких бактерий, как менингококки, гонококки, пневмококки, холерный вибрион, анаэробные микроорганизмы, гемофильная палочка, сальмонеллы, Helicobacter pylori;

· слишком быстрая транспортировка приводит к тому, что жизнеспособность исходных, чувствительных к воздействию окружающей среды микроорганизмов в пробе снижается, но при этом в биоматериале начинают размножаться другие бактерии.

3. Оптимальным для бактериологических исследований являются доставка проб любого биологического материала в течение 1,5 часов после взятия образца. Если соблюдение этого требования не может быть обеспечено, рекомендуется использовать различные приспособления со специальной транспортной средой.

4. Медицинская сестра должна знать, что даже наиболее совершенная транспортная система (среда) не может заменить быструю доставку проб биологического материала в лабораторию для получения достоверных результатов исследования.

5. При назначении исследований по выявлению вирусов в биологическом материале (кровь, отделяемое органов) серологическими методами решающее значение имеет время взятия проб. Обычно материал собирают немедленно после выявления симптомов заболевания (если возможно, в первые 3 дня).

6. Общим правилом должна быть доставка взятого биоматериала в лабораторию как можно быстрее при температуре 4*С в отдельном контейнере. В этих условиях вирусы остаются стабильными в течение 2-3 дней. Для анализа используются кровь, образцы на тампонах (глаза, нос, горло, уретра), смывы из носоглотки, везикулярная жидкость при кожных поражениях, кал, моча и спинномозговая жидкость.

Условия транспортировки и хранения различных проб биоматериала для бактериологических исследований

Биоматериал Условия взятия и транспортировки Температура хранения
Кровь 2 флакона (для аэробов и анаэробов) для гемокультуры Комнатная температура или 37*С
Мокрота, кал, другие секреты Быстрая транспортировка (1,5-3ч) Охлаждать
Тампон с образцом из: глаз, ушей, рта, гортани носа, прямой кишки, уретры, раневой поверхности Тампон в транспортной среде (время транспортировки более 4 часов). Комнатная температура, не инкубировать
Моча Быстрая транспортировка в стерильном контейнере Комнатная температура или 37*С
Гнойный материал, спинномозговая жидкость Быстрая транспортировка: оставить образец в шприце (закупоренном) в анаэробных условиях Отсроченная транспортировка: использовать транспортную среду Комнатная температура, не инкубировать, защищать от охлаждения

Если лечебное отделения ЛПУ, где осуществляются взятие и сбор биологического материала, находятся рядом с лабораторией, то скорость доставки должна укладываться во временные интервалы, представленные ниже.

Пробирки с кровью помещают в специальные контейнеры с надписью «Пробы для диагностических исследований» и хранят вертикально в штативе, избегая встряхивания.

Дата добавления: 2015-07-13 ; Просмотров: 39234 ; Нарушение авторских прав? ;

Нам важно ваше мнение! Был ли полезен опубликованный материал? Да | Нет

источник

В биохимической лаборатории проводятся исследования: 1) крови (цельная кровь, плазма, сыворотка); 2) мочи; 3) кала; 4) цереброспинальной жидкости (спинномозговая жидкость, ликвор); 5) пота; 6) пищеварительных соков; 7) патологических жидкостей, (плевральная, асцитическая, перикардиальная, внутрисуставная) и др.

Кровь — жидкая ткань организма, осуществляющая транспорт кислорода и различных питательных веществ к органам и тканям, а так же обратный ток продуктов обмена веществ от тканей. На долю жидкой части крови (плазмы) приходится около 55% от общего объема крови. Эритроциты составляют основную массу клеток крови – 44% от общего объема, а другие клетки (лейкоциты и тромбоциты) – около 1%.

Для получения правильных результатов биохимического анализа необходимо соблюдать стандартные условия преаналитического (предлабораторного) этапа, который включает: подготовку пациента к исследованиям, правильное взятие пробы биологического материала, соблюдение правил его хранения и транспортировки в лабораторию.

· Подготовка пациента. Лабораторные исследования, как правило, проводятся натощак, утром спустя 8 ч после последнего приема пищи; в бланке направления (запросе) на лаб. исследование должно быть указано: 1) Ф.И.О., дата рождения и пол пациента; 2) адрес пациента, больницы, номер отделения, палаты, история болезни; 3) клинический диагноз, проводимое лечение (медикаменты); 4) вид исследуемого материала; 5) назначенные требуемые показатели; 6) дата и время взятия пробы; 7) Ф.И.О. врача, направившего пациента на исследование; 8) подпись врача.

· Правила взятия биологического материала. Существует два основных способа взятия крови: взятие капиллярной крови из пальца (или, реже, из мочки уха) и венозной крови. Биохимические исследования, в зависимости от требований методики определяемого показателя, могут проводиться в цельной крови, в плазме или сыворотке крови. Кровь из крупных вен (чаще из локтевой) берется в сухую стеклянную или пластиковую пробирку. При взятии крови необходимо избегать гемолиза, к чему могут привести узкий диаметр иглы, длительный процесс забора крови, интенсивное давление на поршень шприца при выливании крови в пробирку и др. Если пациенту проводится внутривенная терапия, то кровь для анализа берут дальше от места инфузии (например, из вены другой руки). Нельзя брать кровь во время или непосредственно после внутривенных капельных вливаний. Следует исключить венозный застой (стаз в вене должен быть кратковременным).

Для получения сыворотки крови в пробирку берут цельную кровь без антикоагулянта. В течение 5-10 минут (при комнатной температуре или при 37 о С) такая кровь свертывается, т.е. из нее выпадает сгусток фибрина, окрашенный в красный цвет благодаря наличию в нем эритроцитов. Над фибриновым сгустком собирается сыворотка, которая в норме обычно светло-соломенного цвета. Для более быстрого получения сыворотки пробирку с кровью обычно центрифугируют в течение 10-15 мин при скорости 1500 об/мин, а затем отделяют (отбирают с помощью пипетки) сыворотку от сгустка. Сыворотка крови – это плазма, лишенная белка фибриногена, который в процессе свертывания крови превращается в сгусток (фибрин) и выпадает в осадок.

Для получения плазмы крови необходимо предотвратить процесс свертывания крови, для чего предварительно в пробирку вносят антикоагулянт (раствор ЭДТА, гепарина, цитрата натрия; количество и вид антикоагулянта зависит от цели исследования) обычно в соотношении 1:9. После центрифугирования в течение 7-10 мин при 1500 об/мин отделяют плазму от клеточных элементов крови.

Плазму от эритроцитов, а сыворотку от сгустка следует отделять не позже, чем через 1 ч после взятия крови, иначе результаты исследования будут искажены за счет выхода веществ из эритроцитов.

· Правила хранения и транспортировки. Все пробы должны быть строго промаркированы соответственно направлению на исследование и незамедлительно отправлены в лабораторию в специальных контейнерах для транспортировки биологического материала. Если выполнение анализа задерживается, либо пробы отправляются в отдаленную лабораторию, то сыворотку или плазму хранят в холодильном контейнере, холодильнике или замораживают при -20 о С. Замороженные пробы могут храниться в течение 3 мес.

· Биологический материал необходимо рассматривать как потенциальный источник инфекции, особая осторожность требуется при работе с пробами «повышенного риска», полученными от пациентов с гепатитом В, С или носителей вируса иммунодефицита человека (ВИЧ).

· Правила взятия биологического материала. Сбор разовой порции мочи для исследования необходимо проводить в чистую сухую посуду, после тщательного туалета промежности и наружных половых органов. Первые несколько миллилитров мочи сливают в унитаз для удаления десквамированных клеток из уретры. Не следует проводить анализ мочи во время менструации. Исследованию подлежит первая утренняя порция мочи, которая исключает влияние стресса, питания, раздражающих факторов. При сборе суточной мочи следует рекомендовать следующие условия: в день сбора мочи утреннюю порцию мочи отбрасывают, а последующие порции собирают в чистую посуду и хранят в холодильнике, к собранной моче добавляют утреннюю порцию следующего дня и тщательно перемешивают.

· Правила хранения и транспортировки. При длительном стоянии мочи происходит изменение ее физических свойств и разрушение клеточных элементов, размножение бактерий. Для предотвращения этих процессов ее лучше хранить на холоде при температуре +4 о С, не допуская замерзания, а также необходимо применять консерванты: 1) жидкость Мюллера – 10 г сульфата натрия, 25 г бихромата калия на 100 мл воды, жидкость добавляется из расчета 5 мл консерванта на 100 мл мочи; 2) хлороформную воду (5-7,5 мл хлороформа на 1 л воды) из расчета 20-30 мл на 1 л мочи; 3) борную кислоту 1,8 г на 100 мл мочи; 4) тимол 1 г (несколько кристаллов) на 1 л мочи; 5) толуол, ксилол, которые наливают на дно сосуда; по мере заполнения сосуда мочой консервант располагается на поверхности жидкости. Исследования мочи проводят не позднее 1-1,5 ч после ее выделения.

· Подготовительная работа. Мутную мочу центрифугируют или фильтруют, надосадочную жидкость используют для определения: белка, глюкозы, кетоновых тел, билирубина и др. При необходимости разводят водой или физиологическим раствором, результат умножают на разведение. Осадок мочи подвергают микроскопическому исследованию.

3. Спинномозговая жидкость (СМЖ) (цереброспинальная жидкость, ликвор).

Внутренний резервуар цереброспинальной жидкости состоит из желудочков головного мозга и центрального спинномозгового канала. Физиологическая роль ликвора: защитная, регуляторная, транспортная, респираторная. В среднем колебания общего количества ликвора составляют 100-150 мл. В норме СМЖ бесцветная, прозрачная, без запаха, стерильная.

· Правила взятия биологического материала. Для получения СМЖ проводят люмбальную пункцию. Без вреда для больного можно извлечь 8-10 мл ликвора. Первые 2-3 капли СМЖ отбрасывают, собирают 3 порции ликвора асептически в стерильные пробирки, плотно их закрывают и оформляют соответствующее направление в КДЛ.

Читайте также:  Нет крови при взятии анализа

· Правила хранения и транспортировки. СМЖ должна быть доставлена в лабораторию и исследована немедленно после ее взятия. Для пересылки материала используют изотермальные контейнеры с температурой около 37 о С. При продолжительном хранении ликвора при комнатной температуре происходит разрушение форменных элементов. При охлаждении менингококки и другие возбудители инфекционных заболеваний могут погибнуть. В лаборатории тотчас производят бактериоскопические, биохимические и серологические исследования.

· Подготовительная работа. В норме ликвор бесцветный и прозрачный. Сероватый, серо-зеленый, зеленоватый цвет СМЖ обусловлен большим содержанием в ней лейкоцитов. Красный цвет (эритрохромия) обусловлен примесью крови. Желтый цвет (ксантохромия) может быть связан с присутствием продуктов превращения гемоглобина (билирубин, биливердин). Мутность ликвора обусловлена присутствием в нем эритроцитов, лейкоцитов и микроорганизмов. В зависимости от степени помутнения различают слабую, умереннуюи большую мутность:

а) СМЖ – прозрачная или слегка мутная – определяют белок, глюкозу, хлориды, рН, проводят электрофоретическое исследование, реакцию Фридмана для ранней диагностики менингита; параллельно определяют белок и глюкозу в крови; направляют на микробиологическое исследование.

б) СМЖ – ксантохромная (желтый цвет). Проводят определение белка, глюкозы, билирубина. Нужно помнить, что иногда ксантохромия может быть результатом примеси эритроцитов при производстве пункции. Для решения этого вопроса жидкость центрифугируют; если ксантохромия обусловлена примесью эритроцитов, после центрифугирования жидкость становится бесцветной, а эритроциты выпадают в осадок.

в) СМЖ – эритрохромная (примесь крови) в 3-х последовательно взятых пробах может быть следствием кровоизлияниях в головной мозг, инсульта, травмы мозга. Ликвор с большой примесью крови для биохимического исследования непригоден.

г) СМЖ – очень мутная – биохимические исследования не проводятся. Отправляется на микробиологическое исследование.

источник

Оснащение:стерильная игла диаметром 1,5мм длиной 40 – 60мм, стерильный одноразовый шприц объемом 10мл, стерильные ватные шарики, салфетки, бинт, 70% спирт, жгут, клеенчатая подушечка, штатив с пробирками (пробирки сухие и с антикоагулянтом), резиновые пробки, контейнер для транспортировки, направление, журнал для регистрации анализов, контейнеры с дезраствором, одноразовые перчатки, маска.

Приветствовать пациента, представиться.

Объяснить пациенту цель и ход предстоящего исследования и получить информационное согласие на процедуру.

Информировать пациента за день о предстоящем исследовании.

Объяснить пациенту правила предстоящей подготовки к исследованию.

Исключить утром в день исследования завтрак, прием лекарственных средств, физиотерапию, массаж, гимнастику, рентгеновские исследования, курение.

Исключить прием контрацептивов.

Рекомендовать пациенту проконсультироваться у врача по поводу приема назначенных лекарств перед исследованием крови.

Попросить пациента повторить ход подготовки к исследованию, при необходимости обеспечить письменной инструкцией.

Сообщить к каким последствиям приведет нарушение рекомендаций медицинской сестры.

Проинформировать пациента о точном времени и месте проведения исследования.

Подготовить направление на исследование накануне, заполнив его по форме (указать наименование ЛПУ, отделение, № палаты, лабораторию, вид анализа (ФИО пациента, подпись медицинской сестры, дату взятия материала, № истории болезни, номер полиса)

Техника взятия крови на биохимические исследование.

Усадить пациента (уложить) в удобное положение.

Под локоть положить валик.

Вымыть руки гигиеническим способом, надеть маску, стерильные перчатки.

Через салфетку наложить жгут на среднюю треть плеча, так чтобы петля была направлена вниз, а концы — вверх; время наложения жгута не должно превышать 1 минуту.

Обработать перчатки 70% спиртом дважды.

Обработать область локтевого сгиба последователь двумя ватными шариками, смоченными 70% спиртом (движение шарика снизу вверх). Первым шариком обработать большую поверхность, вторым – непосредственное место пункции.

Найти наиболее наполненную вену. Пациент работает кулаком, зажимает его.

Потянув кожу локтевого сгиба рукой и фиксировать вену.

Взять шприц правой рукой, придерживая канюлю иглы указательным пальцем.

Пунктировать вену иглой: ввести иглу срезом вверх, параллельно коже рядом с намеченной веной. Изменить направление иглы пока не появится ощущение «попадания в пустоту». В шприце появится кровь.

Набрать в шприц необходимое количество крови (для определения одного показателя достаточно 3-5мл крови, а при назначении большего количества исследований следует исходить из расчета 1 мл крови на одно исследование).

Снять жгут (потянув его за конец).

Извлечь иглу, прижав место пункции ватным шариком, смоченным 70% спиртом.

Попросить пациента согнуть руку в локтевом суставе. Можно зафиксировать шарик бинтом. Снять шарик через 5 минут и сбросить его в 5% растворе хлорамина.

Справиться о самочувствии пациента, проводить в палату. Спустить кровь из шприца в сухую центрифужную пробирку (кровь должна стекать медленно по стенке пробирки).

Примечание:если исследуется система гемостаза, кровь спускается в пробирку с антикоагулянтом в соотношении: 9 частей крови, 1 часть антикоагулянта.

Закрыть пробирку плотно резиновой пробкой, поставить штатив в контейнер для транспортировки анализов.

В направлении и на пробирке должен быть один и тот же номер.

Подвергнуть изделия медицинского назначения однократного и многоразового использования обработке в соответствии с отраслевыми нормативными документами по дезинфекции и предстерилизационной очистке и стерилизации.

Провести дезинфекцию и утилизацию медицинских отходов в соответствии с Сан. Пин 2.1.7.728-99 «Правила сбора, хранения и удаления отходов лечебно-профилактических учреждений».

Снять перчатки, поместить в накопительный контейнер с дезраствором.

Вымыть руки гигиеническим способом.

Сделать запись в журнал о взятии материала на исследование.

Доставить кровь в лабораторию не позднее 1,5 часов после взятия.

источник

Расшифровка биохимического исследования крови позволяет выявить, есть ли какие-то неполадки в организме пациента. Биохимический анализ крови это часто применяемый метод исследования заболеваний внутренних органов.

Для получения точного результата нужно соблюдать алгоритм забора крови на биохимическое исследование:

  • Забор проводится натощак, последняя еда не раньше, чем 12 часов назад. Можно пить воду, но только негазированную. Исключено употребление жвачек, конфет и леденцов.
  • За 2 дня до сдачи анализов нужно не употреблять алкогольные напитки.
  • Накануне исключить из своего рациона жирную, острую, жареную пищу.
  • За 3 дня до исследования отказаться от чрезмерных физических нагрузок.
  • В день исследования нельзя подвергаться любому эмоциональному напряжению и даже минимальной физической активности.
  • Анализ принято сдавать утром, с 7 до 11 часов.
  • Рекомендуется отказаться от приема любых медикаментов за 2 дня до исследования. Они могут помешать получению корректных результатов анализа.
  • Нельзя курить за 1 час до исследования.
  • Перед анализом рекомендован отдых в течение 10-15 минут. Придя в лабораторию, нужно какое-то время посидеть и отдохнуть.

Эта последовательность включает:

  • Подготовку пациента к анализу;
  • Технику забора крови.

до 250 мкмоль/л (новорожденные)

Мочевая кислота (uric acid)

Антистрептолизин О (also, асло)

Вот какие правила должна соблюдать медсестра перед осуществлением забора крови для исследования ее биохимического состава:

  • Рассказать пациенту цели, ход исследования, получить его согласие на процедуру.
  • Написать на пробирке для крови фамилию и имя пациента, подготовить необходимое оснащение, продемонстрировать это пациенту.
  • Помочь человеку занять удобную позицию на кресле.
  • Вымыть руки, высушить их, надеть стерильные медицинские перчатки.
  • Покласть руку пациента на валик из клеенки.

После всех перечисленных действий медсестра может приступать к забору крови.

Так выглядит техника выполнения анализа:

  1. В средней трети плеча накласть резиновый жгут, сказать пациенту, чтобы сильно сжал кулак. Процедуру сжатия и разжатия кулака нужно провести несколько раз. За это время медсестра находит вену, из которой будет взята кровь.
  2. Протереть вену в области локтя салфетками, смоченные 70% спиртом.
  3. Выполнить венепункцию.
  4. Проверить, чтобы игла была в вене пациента, потянуть на себя поршень.
  5. Тянуть поршень на себя, пока не будет осуществлен сбор достаточного количества крови.
  6. Перед тем как вынуть иглу из вены, нужно развязать жгут.
  7. Зажать место взятия крови стерильной салфеткой, пропитанной 70% спиртом, затем извлечь иглу.
  8. Сказать пациенту сжать руку в локте, зажав спиртовую салфетку.
  9. Иглу снять с использованного шприца и выкинуть в дезинфицирующий раствор.
  10. Перемешать содержимое пробирки, переворачивая ее.
  11. Покласть шприц в контейнер для дезинфекции.

После проведения всех этих действий медсестра должна помочь пациенту встать с кресла. Ей необходимо поставить пробирку в контейнер, снять медицинские перчатки, выкинуть их в урну. нужно доставить бокс с сывороткой в лабораторию.

Биохимическое исследование крови может быть назначено в целях профилактики для определения правильности функционирования внутренних органов.

Некоторые раз в год сдают кровь на биохимию, чтобы удостовериться, что в организме нет никаких патологий.

Но чаще это исследование крови пациенту назначает врач для диагностики заболевания. Анализ один из основных методов для правильной постановки диагноза.

Анализ назначается в случае:

  • Наличия у пациента заболеваний, передающихся по наследству;
  • Выявления заболеваний сердечно-сосудистой системы;
  • Нарушений деятельности поджелудочной железы, кишечника, желудка;
  • Лейкоза;
  • Причин инфекционных процессов в организме;
  • Сахарного диабета;
  • Отклонений в гинекологической области;
  • Болезней опорно-двигательного аппарата (артроза, артрита, остеопороза);
  • Причин острой интоксикации;
  • Патологий органов зрения;
  • Кожные болезни.

Биохимическое исследование включает много показателей.

Часто врач назначает для сдачи только несколько показателей, которые могут подтвердить предполагаемый диагноз.

Стандартное исследование состоит из следующих пунктов:

  1. Глюкоза. Показатель является основным для выявления наличия сахарного диабета (повышение параметра об этом свидетельствует). Снижение параметра включает заболевания печени и эндокринной системы.
  2. Общий белок. Показатель назначается при исследованиях на присутствие инфекций в организме, болезней ЖКТ и мочеполовой системы, онкологии ( показатель понижен). Его увеличение может говорить о травмах, ожогах, перегревании человека, о ревматизме.
  3. Общий билирубин. Повышение его уровня включает развитие цирроза, анемии, гепатита, желчекаменной болезни. Общий билирубин состоит из прямого и непрямого. Прямой связан с оттоком желчи, а непрямой — с заболеваниями печени.
  4. СРБ или С-реактивный белок. Главный показатель наличия в организме воспалительного процесса.
  5. Мочевина. Повышение показателей мочевины говорит о плохой работе почек, болезнях ЖКТ, сердечной недостаточности, новообразованиях.
  6. Креатинин. Повышение креатинина свидетельствует о патологиях почек или щитовидной железы. Часто этот показатель назначается вместе с исследованием мочевины.
  7. Общий холестерин. Повышение показателя говорит о подозрении на атеросклероз, печени или щитовидной железы.
  8. Амилаза. Анализ исследуют при болезнях поджелудочной, желчного пузыря и почек. Выше нормы показатель обычно бывает у людей с сахарным диабетом, панкреатитом или холециститом.
  9. АЛТ (Аланинаминотрансфераза). Повышение этого показателя может говорить о — гепатите, циррозе, раке печени, заболеваниях крови.
  10. АСТ (Аспартатаминотрансфераза). Показатель для проверки состояния сердца, печени, нарушений мускулатуры.
  11. Липаза. Увеличение липазы говорит о наличии заболеваний поджелудочной.

Биохимический анализ это распространенный метод исследования крови, правильно интерпретируя результаты, можно поставить точный диагноз и выявить серьезные заболевания. Например, биохимия крови диагностирует сахарный диабет, опухоли доброкачественной и злокачественной природы, гепатит и патологии в работе мочевыделительной системы.

Точность результата определяется подготовкой и поведением больного перед биохимическим исследованием:

  1. Запрещается есть утром перед взятием крови, пить можно только чистую воду (нельзя чай, кофе, сладкие напитки). Последняя еда должна быть раньше 20.00, чтобы между ужином и процедурой был перерыв не менее 10 часов.
  2. На результат анализа может влиять перенапряжение, сильная физическая активность или прием спиртных напитков, поэтому за день перед исследованием нужно избегать стрессов и употребления алкоголя.
  3. Если утром не было возможности сдать кровь натощак, то допускается проведение исследования в течение дня (после 5-часового голодания).

Билирубин появляется впоследствии распада эритроцитов, поэтому регулярно образуется в организме. Сначала формируется непрямой билирубин в кровеносном русле и тканях: он не растворяется в воде и обладает повышенной токсичностью. В норме билирубин непрямого типа по крови попадает в печень, которая преобразует его в прямую форму.

Нарушение выхода прямой формы билирубина из печени свидетельствует о:

  • Инфекционных болезнях;
  • Острых вирусных гепатитах;
  • Инфекционном мононуклеозе;
  • Поражении цитомегаловирусом;
  • Сифилисе (вторичная или третичная форма);
  • Наличии паразитов;
  • Токсическом гепатите;
  • Жировом гепатозе;
  • Раке печени;
  • Нарушенной работе желчевыводящих путей (холецистит; холангит).

Нарушение выхода непрямого билирубина говорит о:

  • Гипотиреозе у новорожденных;
  • Наследственных патологиях;
  • Обструкции камнями желчных протоков;
  • Новообразованиях поджелудочной;
  • Билиарном циррозе;
  • Склерозирующем холангите.

Исследование количества АЛТ и АСТ говорит о состоянии печени, поэтому эти анализы называют печеночными пробами. Скрининг количества АЛТ и АСТ помогает определить функцию этого органа и увидеть развитие нарушений в его работе.

  • Инфаркте сердечной мышцы;
  • Приступе стенокардии;
  • Тромбоэмболии легочной артерии;
  • Злокачественных новообразованиях в печени;
  • Ушибах или травмах мышц;
  • Острой форме ревмокардита;
  • Жировом гепатозе;
  • Миопатиях;
  • Гепатите, вызванном токсинами, вирусами или алкогольными напитками;
  • Панкреатите в стадии обострения;
  • Холестазе (застое) желчи;
  • Гангрене.
  • Жировом гепатозе;
  • Механической желтухе;
  • Отравлениях;
  • Гепатите;
  • Ожогах и травмах;
  • Циррозе или раке;
  • Миокардите или миодистрофии;
  • Инфаркте сердечной мышцы;
  • Состоянии шока;
  • Миозите;
  • Болезнях крови.

Амилаза — фермент, который производится поджелудочной железой и влияет на расщепление углеводов до глюкозы. Амилаза активно участвует в пищеварительном процессе, поэтому она в большом количестве содержится в самой железе.

Выделяют 3 типа фермента — альфа, бета и гамма-амилаза. Чаще в лабораторных условиях исследуют активность альфа-амилазы, которая делится на S и Р тип. В кровеносном русле находится около 55% S-типа амилазы. Если ее количество повышается, то этот процесс называют гиперамилаземия.

Болезни, при которых повышается амилаза крови:

  • Свинка, вызванная вирусной инфекцией;
  • Панкреатит в стадии обострения (максимальный уровень повышается через 4 часа после первого приступа, а понижается к нормальному уровню на 4-5 день после начала заболевания);
  • Острый и хронический панкреатит (обычно активность фермента повышается во много раз);
  • Злоупотребление спиртными напитками;
  • Злокачественное или доброкачественное новообразование в поджелудочной железе;
  • Внематочная беременность.

Липаза является пищеварительным ферментом, главной ее функцией считают процесс расщепления жиров. Липаза работает с помощью действия желчных кислот и колипазы (кофермента).
Для диагностики важна липаза, которая образуется в поджелудочной железе, поэтому определяют активность фермента для выявления нарушений в работе этого органа.

  • Холестазе;
  • Панкреатите в острой форме;
  • Холецистите;
  • Опухоли поджелудочной железы;
  • Язвах;
  • Подагре или чрезмерном наборе веса;
  • Злоупотреблении лекарственными средствами, особенно обезболивающими и наркотическими препаратами;
  • Ушибах, переломах и других травмах;
  • Почечной недостаточности.

При диагностике болезней поджелудочной железы липазу считают более специфическим тестом, чем исследование активности амилазы. Повышение уровня липазы остается нормальным при свинке, трубной беременности, острой форме аппендицита и болезнях печени.

Если есть подозрения о возникновении панкреатита, то врачи советуют определить активность амилазы и липазы одновременно. Увеличение активности липазы крови при острой форме панкреатита может быть от 3 до 40 раз выше относительно физиологического состояния.

Для определения острой формы алкогольного панкреатита применяют соотношение количества амилазы и липазы. Когда эта пропорция больше 3, то причиной панкреатита является алкогольная интоксикация.

Когда возникает острая форма панкреатита, активность липазы в сыворотке повышается раньше по времени и сильнее, чем активность амилазы. Увеличение уровня амилазы в кровеносном русле начинается только через 6 часов после первого приступа панкреатита и достигает своего пика через 13-25 часов. Активность фермента остается повышенной на протяжении 7-11 суток.

Читайте также:  Поджелудочная железа биохимический анализ крови

Перечисленные биохимические показатели определяются в любой частной или государственной клинико-диагностической лаборатории. В большинстве лабораторных пунктов применяют высокоточные методы и пользуются оборудованием. Часто референтные значения каждого анализа указывают в бланке исследования в согласии с возрастом и полом пациента.

В любой лаборатории, государственной или частной, есть собственный набор реактивов и личные вычислительные аппараты. Нормы биохимических показателей могут сильно отличаться. Если возникает необходимость повторно обследоваться, то исследование рекомендуется проводить в одно и то же время дня и в одном и том же лабораторном отделении.

Цена биохимического анализа зависит от того, какие показатели крови нужно определить. Цена одного показателя — от 100 до 700 рублей.

источник

НАЦИОНАЛЬНЫЙ СТАНДАРТ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ

Технологии лабораторные клинические

ОБЕСПЕЧЕНИЕ КАЧЕСТВА КЛИНИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Правила ведения преаналитического этапа

Clinical laboratory technologies. Quality assurance of clinical laboratory tests. Part 4. Rules for conducting of preanalytical stage

Цели и принципы стандартизации в Российской Федерации установлены Федеральным законом от 27 декабря 2002 г. N 184-ФЗ «О техническом регулировании», а правила применения национальных стандартов Российской Федерации — ГОСТ Р 1.0-2004 «Стандартизация в Российской Федерации. Основные положения»

Сведения о стандарте

1 РАЗРАБОТАН Лабораторией проблем клинико-лабораторной диагностики Московской медицинской академии им. И.М.Сеченова Росздрава, кафедрой биохимии Российской медицинской академии последипломного образования Росздрава

2 ВНЕСЕН Техническим комитетом по стандартизации ТК 466 «Медицинские технологии»

4 ВВЕДЕН ВПЕРВЫЕ

Информация об изменениях к настоящему стандарту публикуется в ежегодно издаваемом информационном указателе «Национальные стандарты», а текст изменений и поправок — в ежемесячно издаваемых информационных указателях «Национальные стандарты». В случае пересмотра (замены) или отмены настоящего стандарта соответствующее уведомление будет опубликовано в ежемесячно издаваемом информационном указателе «Национальные стандарты». Соответствующая информация, уведомление и тексты размещаются также в информационной системе общего пользования — на официальном сайте Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии в сети Интернет

Настоящий стандарт устанавливает требования к условиям и процедурам ведения преаналитического этапа клинических лабораторных исследований с целью исключения или ограничения влияния эндогенных, экзогенных, ятрогенных и иных факторов, мешающих правильному отражению состояния внутренней среды обследуемых пациентов в результатах клинических лабораторных исследований.

Настоящий стандарт может использоваться всеми организациями, учреждениями и предприятиями, а также индивидуальными предпринимателями, деятельность которых связана с оказанием медицинской помощи.

В настоящем стандарте использованы нормативные ссылки на следующие национальные стандарты:

ГОСТ Р ИСО 15189-2006 Лаборатории медицинские. Специальные требования к качеству и компетентности

ГОСТ Р ИСО 15190-2007* Лаборатории медицинские. Требования к безопасности
_______________
* Вероятно ошибка оригинала. Следует читать ГОСТ Р 52905-2007 (ИСО 15190:2003) Лаборатории медицинские. Требования к безопасности, здесь и далее по тексту. — Примечание изготовителя базы данных.

Примечание — При пользовании настоящим стандартом целесообразно проверить действие ссылочных стандартов в информационной системе общего пользования — на официальном сайте Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии в сети Интернет или по ежегодно издаваемому информационному указателю «Национальные стандарты», который опубликован по состоянию на 1 января текущего года, и по соответствующим ежемесячно издаваемым информационным указателям, опубликованным в текущем году. Если ссылочный стандарт заменен (изменен), то при пользовании настоящим стандартом следует руководствоваться заменяющим (измененным) стандартом. Если ссылочный стандарт отменен без замены, то положение, в котором дана ссылка на него, применяется в части, не затрагивающей эту ссылку.

Достоверность отражения в результатах лабораторных исследований состояния внутренней среды пациента, содержания искомых компонентов биологических материалов в значительной степени зависит от условий, в которых пациент находился в период, предшествовавший взятию у него образца биоматериала, от условий и процедур взятия образца, его первичной обработки и транспортирования в лабораторию, то есть от факторов преаналитического этапа клинического лабораторного исследования.

С целью исключения или ограничения влияния внелабораторных факторов преаналитического этапа на результаты лабораторных исследований настоящий стандарт регламентирует:

а) условия периода, предшествующего взятию у пациента образца биологического материала (приложение А);

б) условия и процедуры взятия образца биологического материала у пациента;

в) процедуры первичной обработки образца биологического материала;

г) условия хранения и транспортирования образцов биоматериалов в клинико-диагностические лаборатории.

Требования стандарта основаны на:

а) научных данных о постоянных и переменных факторах физического, химического и биологического характера, способных оказать влияние на содержание веществ и клеток в биологических материалах пациентов;

б) обобщенных данных о стабильности компонентов в образцах биологических материалов после их взятия при различных условиях хранения (приложения Б, В, Г);

в) обобщенных данных о влиянии принимаемых пациентом лекарственных средств на результаты лабораторных исследований (приложение Д);

г) требованиях ГОСТ Р ИСО 15189 (раздел 5.4).

Правила предназначены для обеспечения такого качества ведения преаналитического этапа клинических лабораторных исследований, которое необходимо для получения их результатов, достоверно отражающих состояние внутренней среды обследуемых пациентов в момент обследования, путем:

— правильной подготовки пациентов к проведению лабораторных тестов;

— информирования пациентов о требуемых ограничениях в диете, физической активности, курении, о правилах сбора биологических материалов, которые обычно собирает сам пациент (моча, кал);

— инструктирования персонала, участвующего во взятии образцов биологических материалов у пациентов, об особенностях процедур взятия различных видов этих материалов;

— рациональной организации процесса взятия образцов биоматериалов;

— полноценного обеспечения процедур взятия образцов биоматериалов необходимыми инструментами, посудой, средствами первичной обработки и транспортировки.

Принимая во внимание потенциальную биоопасность образцов биологического материала, получаемого от пациентов, персонал, выполняющий эти функции, должен быть информирован и обучен правилам безопасного взятия образцов и должен располагать средствами защиты (перчатки, устройства для безопасного сбора использованных игл и т.п.) в соответствии с требованиями ГОСТ Р ИСО 15190.

Настоящие правила содержат общие положения, которые по отношению к отдельным биологическим материалам и отдельным изучаемым в них аналитам, биологическим объектам могут требовать особых условий и процедур, что должно быть отражено в нормативных документах по технологиям оказания соответствующих простых или комплексных медицинских услуг, применительно к функциям различных категорий клинического персонала.

На основании этих общих правил в каждой медицинской организации следует разрабатывать и вводить для обязательного исполнения внутренние правила ведения преаналитического этапа применительно к каждому виду исследований, выполняемых в лаборатории, учитывающие особенности медицинского профиля и организационной формы учреждения. В случае выполнения исследований в лаборатории другого учреждения правила ведения преаналитического этапа, включая условия транспортирования образцов, применительно к этим исследованиям следует согласовывать с руководителем лаборатории, выполняющей эти исследования. Наличие и исполнение персоналом правил ведения преаналитического этапа лабораторных исследований является одним из обязательных условий при сертификации процессов выполнения исследований в клинико-диагностической лаборатории.

Взятие образца или пробы — это процесс изъятия или образования проб, охарактеризованный процедурой их взятия, то есть оперативными требованиями и/или инструкциями для отбора, изъятия и подготовки одной или нескольких проб из инспектируемого лота для выяснения характеристик этого лота (в лабораторной медицине инспектируемый лот — это обследуемый пациент, а образцы или пробы — это порции того или иного биологического материала).

3.2.1 Биологический материал — кровь

Большая часть клинических лабораторных исследований проводится в образцах крови: венозной, артериальной или капиллярной. Венозная кровь — лучший материал для определения гематологических, биохимических, гормональных, серологических и иммунологических показателей.

Для исследования аналитов в цельной крови, сыворотке или плазме образец крови берут чаще всего из локтевой вены. Показания для взятия крови из пальца на клиническое исследование крови:

— при ожогах, занимающих большую площадь поверхности тела пациента;

— при наличии у пациента очень мелких вен или когда они труднодоступны;

— при выраженном ожирении пациента;

— при установленной склонности к венозному тромбозу;

— у новорожденных.

При взятии образца крови из венозного или артериального катетера, через который проводилось вливание инфузионного раствора, катетер следует предварительно промыть изотоническим солевым раствором в объеме, соответствующем объему катетера, и отбросить первые 5 мл (миллилитров) взятой из катетера крови. Недостаточное промывание катетера может привести к загрязнению образца крови препаратами, вводившимися через катетер. Из катетеров, обработанных гепарином, нельзя брать образцы крови для исследований системы свертывания крови.

В зависимости от назначенного вида исследования образец крови должен собираться при наличии строго определенных добавок [1]. Для получения плазмы кровь собирают с добавлением антикоагулянтов: этилендиаминтетрауксусной кислоты, цитрата, оксалата, гепарина [2]. Для исследований системы свертывания крови применяется только цитратная плазма (в точном соотношении одной части 3,8%-ного (0,129 моль/л) раствора цитрата натрия и девяти частей крови). В большинстве гематологических исследований используют венозную кровь с солями этилендиаминтетрауксусной кислоты (ЭДТА, К или К -ЭДТА). Для получения сыворотки кровь собирают без антикоагулянтов. Для исследования глюкозы кровь собирают с добавлением ингибиторов гликолиза (фтористого натрия или йодоацетата).

Для исследования ряда нестабильных гормонов (остеокальцина, кальцитонина, адренокортикотропного гормона) используют ингибитор апротинин.

Для получения из образцов крови вариантов проб для различных видов исследований рекомендуется следующая последовательность наполнения пробирок:

— кровь без добавок — для получения гемокультуры, используемой в микробиологических исследованиях;

— кровь без антикоагулянтов — для получения сыворотки, используемой при клинико-химических и серологических исследованиях;

— кровь с цитратом — для получения плазмы, используемой при коагулологических исследованиях;

— кровь с гепарином — для получения плазмы, используемой при биохимических исследованиях;

— кровь с ЭДТА — для получения цельной крови, используемой для гематологических исследований, и плазмы, используемой для некоторых клинико-химических исследований.

С целью сохранения в образце крови эритроцитов применяют смесь антикоагулянтов с добавками, например, АЦД (антикоагулянт — цитрат-декстроза или кислота-цитрат-декстроза).

Во избежание ятрогенной анемизации пациентов объем забираемой для исследований крови должен быть рационально рассчитан, исходя из того, что в конечном итоге непосредственно для анализа расходуется лишь половина от первоначально взятого объема (с учетом использования сыворотки или плазмы при гематокрите 0,5).

При использовании современных анализаторов достаточны следующие объемы образцов:

— для биохимических исследований: 4-5 мл; при использовании гепаринизированной плазмы: 3-4 мл;

— для гематологических исследований: 2-3 мл крови с ЭДТА;

— для исследований свертывающей системы: 2-3 мл цитратной крови;

— для иммуноисследований, включая исследования белков и др.: 1 мл цельной крови для 3-4 иммуноанализов;

— для исследования скорости оседания эритроцитов: 2-3 мл цитратной крови;

— для исследования газов крови: капиллярная кровь — 50 мкл (микролитров); артериальная или венозная кровь с гепарином — 1 мл.

Рационально применение пробирок для взятия крови небольшого объема (4-5 мл) при соотношении диаметра и высоты пробирки 13 на 75 мм. Использование плазмы вместо сыворотки дает увеличение на 15%-20% выхода анализируемого материала при одном и том же объеме взятой у пациента крови. Взятие венозной крови облегчается применением вакуумных пробирок. Под влиянием вакуума кровь из вены быстро поступает в пробирку, что упрощает процедуру взятия и сокращает время наложения жгута.

Для обозначения содержимого пробирок с различными добавочными компонентами применяют цветное кодирование закрывающих их пробок. Так, для пробирок с антикоагулянтами лиловый цвет пробки означает наличие ЭДТА, зеленый цвет — гепарина, голубой — цитрата. Добавление в пробирку ингибиторов гликолиза (фторида, йодацетата) как одних, так и в комбинации с антикоагулянтами (гепарином, ЭДТА), кодируется пробкой серого цвета (см. таблицу 1).

Таблица 1 — Добавки в пробирках с цветным кодом

Пустая, без добавок, для сыворотки

Гематология и отдельные химические анализы в плазме

Цитрат натрия (0,105-0,129 моль/л)

Фторид натрия (2-4 мг/мл)/оксалат калия (1-3 мг/мл)

Примечание — Пробирки, содержащие кислоту-цитрат-декстрозу (АЦД, формула А и В) используют для сохранения клеток и кодируют желтым цветом.

3.2.2 Биологический материал — спинномозговая жидкость

Взятие образца спинномозговой жидкости производят в строгом соответствии с утвержденной в установленном порядке процедурой и по возможности вскоре после взятия крови для исследований в сыворотке, с результатами которых данные в спинномозговой жидкости сопоставляют.

Первые 0,5 мл и всю спинномозговую жидкость (далее — СМЖ) с примесью крови следует удалить. Рекомендуемые объемы проб СМЖ — в соответствии с таблицей 2.

Таблица 2 — Рекомендуемые объемы проб СМЖ

Супернатант, используемый для клинической химии

Пробу помещают с соблюдением правил асептики в пробирки с пробками (для микробиологических исследований — в стерильные, для цитологических и клинико-химических исследований — в свободные от частиц пыли, без ЭДТА и фторида).

3.2.3 Биологический материал — моча

В зависимости от цели исследования образцы мочи собирают либо в виде отдельных порций, либо за определенный промежуток времени. Первая утренняя порция мочи (натощак, сразу после сна) используется для общего анализа, вторая утренняя порция мочи — для количественных исследований в соотношении с выделением креатинина и для бактериологического исследования, случайная порция — для качественных или количественных клинико-химических исследований, суточная моча — для количественного определения экскреции аналитов.

Желательно использовать сосуд с широкой горловиной и крышкой, по возможности надо собирать мочу сразу в посуду, в которой она будет доставлена в лабораторию. Мочу из судна, утки, горшка брать нельзя, так как даже после прополаскивания этих сосудов может сохраняться осадок фосфатов, способствующих разложению свежей мочи. Если в лабораторию доставляется не вся собранная моча, то перед сливанием ее части необходимо тщательное взбалтывание, чтобы осадок, содержащий форменные элементы и кристаллы, не был утрачен.

При взятии утренней мочи (например, для общего анализа) собирают всю порцию утренней мочи (желательно, чтобы предыдущее мочеиспускание было не позже, чем в два часа ночи) в сухую, чистую, но не стерильную посуду, при свободном мочеиспускании. При сборе суточной мочи пациент собирает ее в течение 24 ч на обычном питьевом режиме [1,5-2 л (литра) в сутки]. Утром в 6-8 ч он освобождает мочевой пузырь (эту порцию мочи выливают), а затем в течение суток собирает всю мочу в чистый сосуд с широкой горловиной и плотно закрывающейся крышкой, емкостью не менее 2 л. Последняя порция берется точно в то же время, когда накануне был начат сбор (время начала и конца сбора отмечают). Если не вся моча направляется в лабораторию, то количество суточной мочи измеряют мерным цилиндром, отливают часть в чистый сосуд, в котором ее доставляют в лабораторию, и обязательно указывают объем суточной мочи.

Если для анализа требуется собрать мочу за 10-12 ч, сбор обычно проводят в ночное время: перед сном больной опорожняет мочевой пузырь и отмечает время (эту порцию мочи отбрасывают), затем больной мочится через 10-12 ч в приготовленную посуду, эту порцию мочи доставляют для исследований в лабораторию. При невозможности удержать мочеиспускание 10-12 ч, больной мочится в приготовленную посуду в несколько приемов и отмечает время последнего мочеиспускания.

Читайте также:  Нет моноцитов в анализе крови

При необходимости сбора мочи за два или три часа, больной опорожняет мочевой пузырь (эта порция отбрасывается), отмечает время и ровно через 2 или 3 часа собирает мочу для исследования.

При проведении пробы трех сосудов (стаканов) собирают утреннюю порцию мочи следующим образом: утром натощак после пробуждения и тщательного туалета наружных половых органов больной начинает мочиться в первый сосуд, продолжает во второй и заканчивает — в третий. Преобладающей по объему должна быть вторая порция. При диагностике урологических заболеваний у женщин чаще используют пробу двух сосудов, то есть делят при мочеиспускании мочу на две части, важно, чтобы первая часть в этом случае была небольшой по объему. При проведении пробы трех сосудов у мужчин последнюю третью порцию мочи собирают после массажа предстательной железы. Все сосуды готовят предварительно, на каждом обязательно указывают номер порции.

В первую порцию собираемой за сутки мочи в зависимости от назначенного вида исследования добавляют различные консерванты: для большинства компонентов — тимол (несколько кристаллов тимола на 100 мл мочи), для глюкозы, мочевины, мочевой кислоты, калия, кальция, оксалата, цитрата — азид натрия (0,5 или 1,0 г) на все количество суточной мочи, для катехоламинов и их метаболитов, 5-гидрокси-уксусной кислоты, кальция, магния, фосфатов — соляная кислота (25 мл, что соответствует 6 моль/л на объем суточной мочи), для порфиринов, уробилиногена — карбонат натрия, 2 г на литр мочи. Возможно также применение жидкости Мюллера (10 г сульфата натрия, 25 г бихромата калия, 100 мл воды) по 5 мл на 100 мл мочи, борной кислоты по 3-4 гранулы на 100 мл мочи, ледяной уксусной кислоты по 5 мл на все количество суточной мочи, бензоата или фторида натрия по 5 г на все количество суточной мочи. Несколько миллилитров толуола добавляют в сосуд с мочой так, чтобы он тонким слоем покрывал всю поверхность мочи; это дает хороший бактериостатический эффект и не мешает химическим анализам, но вызывает легкую мутность. Формалин, добавленный из расчета приблизительно 3-4 капли на 100 мл мочи, задерживает рост бактерий, хорошо сохраняет клеточные элементы, но мешает при некоторых химических определениях (сахар, индикан). Хлороформ, добавляемый из расчета 2-3 мл хлороформной воды (5 мл хлороформа на 1 л воды) на 100 мл мочи, проявляет недостаточный эффект консервирования, а также неблагоприятно влияет на результаты исследования осадка мочи (изменение клеток) и результаты некоторых химических исследований.

3.2.4 Биологический материал — слюна

Слюну, представляющую собой либо продукт только одной железы, либо смесь секретов нескольких желез, допускается использовать для исследования ряда гормонов и лекарственных веществ, в том числе для лекарственного мониторинга. Сбор слюны может осуществляться с помощью устройств (тампонов, шариков), состоящих из различных абсорбирующих материалов (хлопка, вискозы, полимеров).

3.2.5 Биологический материал — кал

Кал для исследования должен быть собран в чистую сухую посуду с широкой горловиной, желательно стеклянную (не следует собирать кал в баночки и флаконы с узким горлом, а также в коробочки, спичечные коробки, бумагу и т.д.). Следует избегать примеси к испражнениям мочи, выделений из половых органов и других веществ, в том числе лекарств. Если для какого-либо химического определения (например, уробилиногена) нужно точно знать количество выделенного кала, то посуду, в которую собирают испражнения, нужно предварительно взвесить.

При взятии образцов для бактериологических исследований особенное внимание должно быть уделено предотвращению загрязнения. Содержимое абсцесса следует набирать через кожу, если это возможно, поскольку ее легче дезинфицировать, чем слизистые оболочки. Жидкий материал предпочтительнее образцов на тампонах. Секрет, содержащий интерферирующие вторичные микроорганизмы, должен быть удален с поверхности открытой раны, затем образец собирают бактериологическим тампоном круговыми вращательными движениями от центра к периферии раны. Объем пробы должен быть насколько возможно большим. Образцы для культуры крови, если возможно, следует собирать в период повышения температуры тела. При подозрении на инфекционный эндокардит следует брать не менее десяти культур крови.

Образцы для выделения и идентификации вирусов обычно собирают немедленно после появления симптомов (если возможно — в первые три дня). Для анализа используют образцы на тампонах (из носа, гортани, глаз), смывы из глотки, жидкость из пузырьков при кожных поражениях, кал, мочу и спинномозговую жидкость.

При взятии кожных образцов для микологических исследований соскобы с зон активного поражения берут с помощью скальпеля после тщательной дезинфекции участка кожи. При отложениях на волосах их образцы берут с помощью эпиляционной пипетки или остригают. При поражении ногтей берут их срезы и соскобы с нижней части ногтей. Для обнаружения дрожжей в моче используют случайный образец мочи, для детекции дрожжей или грибков в мокроте предпочтительнее использовать ее утренний образец.

При диагностике паразитарных заболеваний исследуют кровь (для обнаружения плазмодиев, трипаносомы, лейшмании, микрофилярии), кал (для обнаружения лямблии, гельминтов), образцы тканей пораженных органов (для обнаружения Trichinella spiralis larvae, Echinococcus) или самих паразитов (артроподы: клещи, насекомые), мочу (при мочеполовом шистозомозе). ПЦР-анализ может быть проведен в образцах: крови с ЭДТУК и цитратом, высушенной крови (на фильтровальной бумаге), костного мозга, мокроты, жидкости из полости рта, бронхиальной лаважной жидкости, спинномозговой жидкости, мочи, кала, биопсийного материала, культуре клеток, фиксированной или покрытой (парафинированной) ткани и т.д. Важным условием получения достоверных результатов является предотвращение загрязнения образцов экзогенной дезоксирибонуклеиновой кислотой (ДНК), обычными источниками которой являются волосы и кожа людей, дверные ручки, лабораторная мебель, порошки, реагенты, термоциклер и наконечники пипеток. Идеальным средством создания чистой беспылевой среды служат настольные шкафы с ламинарным потоком профильтрованного воздуха. Взятие образцов для молекулярно-биологических исследований лучше всего проводить в закрытые одноразовые системы, которые должны быть свободны от нуклеаз, для чего подвергаются автоклавированию в токе горячего воздуха. При использовании незакрытых систем для взятия проб следует, по меньшей мере, надевать одноразовые перчатки. Стеклянная посуда должна обрабатываться 1%-ным раствором диэтилпирокарбоната, который тормозит РНКазы. Оставшийся препарат следует тщательно удалить путем автоклавировения посуды и последующей ее обработки жаром при температуре 250 °С в течение 4 ч.

3.4.1 Правила оформления направления на лабораторные исследования

Заявки на анализы должны быть согласованы со всеми врачами-специалистами, участвующими в лечении больного, чтобы при венепункции взять материал для всех необходимых исследований и не повторять процедуру. Медицинская сестра должна собрать все заявки данного пациента и дать суммарную заявку на анализы (применительно только к стационару). Если пациент будет переведен в другое отделение, то она также должна предупредить лабораторию об этом, чтобы результаты исследований были направлены в нужное отделение и не утеряны.

В направлении на лабораторные исследования (заявке) должны быть отображены следующие данные:

— дата и время назначения;

— дата и время взятия крови (сбора биологического материала);

— фамилия и инициалы пациента;

— отделение, номер истории болезни, номер палаты;

— возраст, пол;

— диагноз;

— время приема последней дозы препаратов, способных повлиять на результата анализа;

— фамилия и инициалы лечащего врача, назначившего исследование;

— перечень необходимых исследований;

— подпись специалиста, проводившего взятие крови или другого биологического материала.

3.4.2 Правила первичной обработки образца биоматериала

Важнейшей процедурой первичной обработки образцов биоматериалов после взятия их у пациентов является их кодирование с целью последующей надежной их идентификации. Кодирование видов образцов по характеру внесенных в них добавок закреплено с помощью разного цвета крышек пробирок, содержащих соответствующие добавки: красный/белый — без добавок, для сыворотки, клинико-химические исследования, серология; зеленый — гепарин, для плазмы, клинико-химические исследования; фиолетовый — ЭДТА, для плазмы, гематологические исследования; голубой — цитрат натрия, для коагулологических исследований; серый — фторид натрия, для исследования глюкозы, лактата. Идентификация образцов от определенных пациентов наиболее рациональна с помощью штрих-кодов, в которых отражены идентификационные признаки пациентов: фамилия, клиническое отделение, фамилия лечащего врача и т.п. Штрих-коды изготавливают в месте взятия образца (при доставке проб из другой лаборатории маркировку допускается проводить в лаборатории, выполняющей анализ) и считывают с помощью специального устройства в клинической лаборатории. В небольших учреждениях возможно ручное кодирование пробирок нанесением на них карандашом по стеклу или фломастером условных знаков, цифр.

Другие процедуры первичной обработки образцов биоматериалов по месту их взятия зависят от общей организации лабораторного обеспечения в данном учреждении. Если процедурные кабинеты расположены в том же здании, что и лаборатория, то контейнеры с образцами следует как можно скорее доставлять в лабораторию, где и будут осуществляться все дальнейшие действия.

Пробы, содержащие инфекционные агенты, следует обрабатывать иначе, чем пробы с относительно небольшим риском инфицирования (подобно большинству проб крови, сыворотки, мочи, кала, тампонам, мазкам и фильтровальным бумажкам).

3.4.2.1 Биологический материал — кровь

При необходимости более длительного транспортирования в лабораторию образцы свернувшейся крови (обычно свертывание происходит в течение 30 мин), предназначенные для получения сыворотки, должны быть отцентрифугированы на месте не позднее, чем через 1 ч после взятия образца. Кровь для получения сыворотки или плазмы центрифугируют в течение 10-15 мин при ускорении 1000-1200 g (оборотов в минуту). Цитратную плазму для исследований системы свертывания крови центрифугируют в течение 15 мин при 2000 g; для получения плазмы, свободной от тромбоцитов, центрифугирование длится 15-30 мин при 2000-3000 g. Центрифугирование пробирок с капиллярной кровью выполняется при 6000-15000 g в течение 90 с. Обычно центрифугирование проводят при температуре 20 °С — 22 °С. Для отдельных аналитов может требоваться центрифугирование при температуре 4 °С, 6 °С. Мазки крови для дифференциального подсчета лейкоцитов должны быть подготовлены не позднее, чем через 3 ч после взятия образца.

Поскольку нуклеиновые кислоты быстро распадаются, образцы для молекулярно-биологических исследований следует быстро подвергать стабилизации путем инактивации ДНКаз и РНКаз с помощью хаотропных веществ (гуанидин-изотиоцианат — ГИТЦ) и органического растворителя, например, фенола. Конечная концентрация ГИТЦ в стабилизированной пробе должна быть не ниже чем 4 моль/л. Стабилизированный таким способом материал не должен охлаждаться во избежание кристаллизации ГИТЦ. Кровь с ЭДТА для экстракции ДНК из лейкоцитов не требует стабилизации.

3.4.2.2 Биологический материал — кал

Вегетативные формы паразитов можно обнаружить только в свежих образцах кала в течение 40 мин после испражнения при условии его хранения при температуре 4 °С. Цисты стабильны. Для концентрации паразитов и их сохранения в образцах кала обычно применяют растворы мертиолят-йод-формалин и ацетат натрия-формалин.

3.5 Требования к условиям хранения и транспортирования образцов биоматериалов в клиническую лабораторию

Условия хранения образцов биоматериалов, взятых у пациентов, определяются стабильностью в этих условиях искомых аналитов. Максимально допускаемая нестабильность, выраженная в процентном отклонении результата после хранения от исходного уровня, не должна превышать половины размера общей ошибки определения, рассчитываемой из суммы биологической и аналитической вариации данного аналита. Максимально допускаемое время хранения измеряется периодом времени, в течение которого в 95% образцов содержание аналита сохраняется на исходном уровне.

Стабильность аналитов в различных видах образцов (крови, мочи, спинномозговой жидкости) и проб (сыворотке, плазме, осадке, мазке крови) неодинакова [2] (см. приложения Б, В, Г). Данные о стабильности проб следует учитывать и при их хранении после поступления в лабораторию. В отношении аналитов, нестабильных на свету, должны быть соблюдены соответствующие предосторожности (сбор материала в темную посуду, защита образца от прямого света).

3.5.1 Биологический материал — кровь

Содержание электролитов, субстратов, некоторых ферментов может не изменяться при хранении образцов сыворотки крови при температуре холодильника 4 °С в течение до четырех дней. Гемоглобин, эритроциты стабильны в течение одного дня при хранении в закрытой пробирке. Хранение образцов плазмы крови, предназначенной для исследований свертывающей системы, в условиях комнатной температуры более 4 ч не рекомендуется.

Исследование газов крови следует проводить немедленно; при невозможности неотложного исследования — образцы в закрытых стеклянных контейнерах могут храниться в бане с ледяной водой до 2 ч.

При транспортировании в лабораторию контейнеры с образцами крови следует предохранять от тряски во избежание развития гемолиза. Температура ниже 4 °С и выше 30 °С может существенно изменить содержание в образце многих аналитов. Образцы цельной крови пересылке не подлежат.

3.5.2 Биологический материал — моча

Собранную мочу как можно быстрее доставляют в лабораторию. Длительное хранение мочи при комнатной температуре приводит к изменению физических свойств, разрушению клеток и размножению бактерий. Моча, собранная для общего анализа, может храниться не более 1,5-2,0 ч обязательно в холодильнике, применение консервантов нежелательно, но допускается, если между мочеиспусканием и исследованием проходит более 2 ч. Наиболее приемлемый способ сохранения мочи — охлаждение (можно хранить в холодильнике, но не замораживать). При охлаждении не разрушаются форменные элементы, но возможно влияние на результаты определения относительной плотности.

3.5.3 Биологический материал — спинномозговая жидкость

При исследовании в пределах 1 ч пробу не охлаждают. Для транспортирования проб СМЖ используют закрытые пробирки. При исследовании в пределах трех часов — хранить на льду, не замораживать, не фиксировать, не добавлять консерванты. Транспортирование следует осуществлять как можно скорее в связи с нестабильностью клеток. Для цитологических исследований следует отсылать препараты, полученные путем цитоцентрифугирования пробы СМЖ (20 мин при 180 g), которые стабильны в течение 4-6 дней при комнатной температуре. Для длительного хранения после отделения клеток с помощью центрифугирования пробу следует быстро заморозить до минус 70 °С в тщательно закупоренном полипропиленовом сосуде.

3.5.4 Доставка в лабораторию биоматериалов для микробиологического исследования

Доставка в лабораторию любого образца биоматериала, предназначаемого для микробиологического исследования, должна длиться не более двух часов после взятия материала. Даже наиболее совершенная транспортная система не может служить заменой быстрому транспортированию и немедленному исследованию образца. Требования к транспортированию и хранению бактериологических проб приведены в таблице 3. Если соблюдение этих условий не может быть обеспечено, рекомендуется инокуляция во флакон для культур крови или в гемофлакон или, например, для проб мочи, использование погружных слайдов.

Таблица 3 — Условия транспортирования и хранения образцов различных биоматериалов для бактериологических исследований

источник