Взятие крови на анализ цвета пробирок

Исследования методом ПЦР, пробирка «эппендорф» (на 1,5мл).

Бесцветная транспортная среда для ПЦР исследований, цветная пробирка (НЕ пробирка с цветным содержимым, а пробирка из цветного пластика!) с надписью «РНК».

• Проверить соответствие номера пробирки с номером, указанным в направлении, фиксировать данные пациента и этот номер в журнале регистрации.
• Убедиться, что крышка пробирки плотно закрыта (во избежании вытекания материала!)
• Проверить соответствие назначений и транспортной среды. Исследования, требующие транспортировки в «РНК-пробирке» должны быть отобраны в неё. При несоответствии материала и транспортной среды, материал на исследование может быть принят, но качество выполняемого исследования многократно снижается.
• Пробирки, заполненные биоматериалом, — поместить в холодильник (+4 — +8 С).
• В направление вписать дату и время забора биоматериала, фамилию осуществившего забор, и указать количество направляемых в лабораторию пробирок, отдел лаборатории, выполняющий данное исследование.

Бактериологические исследования по выявлению хламидии, микоплазмы/уреаплазмы, трихомонаду, пробирка «эппендорф» (на 1,5мл).

Транспортная среда розового цвета для хламидии и желтоватого — для микоплазмы, уреаплазмы, трихомонады.

• Проверить соответствие номера пробирки с номером, указанным в направлении, фиксировать данные пациента и этот номер в журнале регистрации.
• Убедиться, что крышка пробирки плотно закрыта (во избежании вытекания материала!)
• Проверить соответствие назначений и транспортной среды.
• Пробирки, заполненные биоматериалом, — поместить в холодильник (+4 — +8 С).
• В направление вписать дату и время забора биоматериала, фамилию осуществившего забор, и указать количество направляемых в лабораторию пробирок, отдел лаборатории, выполняющий данное исследование.

Забор биоматериала осуществляется в согласно назначений в соответствующую среду:

• на хламидии — в среду «хламидия» (розовое содержимое, маркировка «Х» на пробирке)
• на микоплазмы и уреаплазмы — в среду «мико/уреаплазма» (желтоватое содержимое, маркировка «М/У» на пробирке)
• на трихомонады — в среду «трихомонада» (желтоватое содержимое, маркировка «Tr» на пробирке)

При несоответствии материала и транспортной среды, материал на исследование не принимается.

• После взятия мазка на тупфере написать:
  • Фамилию и (Важно!) Инициалы пациента (с его слов), после чего проверить соответствие с данными направления, во избежании расхождения.
  • Локализацию (зев, нос, ухо, конъюнктива, раневая поверхность, прямая кишка и пр.)
  • Дату и время забора биоматериала.
• Тупферы, заполненные биоматериалом, — поместить в холодильник (+4 — +8 С).
• В направление вписать дату и время забора биоматериала, фамилию осуществившего забор, и указать количество направляемых в лабораторию тупферов, отдел лаборатории, выполняющий данное исследование.

Исследования кала имеют как общие, так и частные требования к методам сбора, хранения и транспортировки. Они включают в себя исследования: копрограмма, яйца гельминтов , исследование на диз.группу, посев кала на дисбактериоз, условно-патогенную микрофлору, кальпротектин, эластаза панкреатическая, эластаза нейтрофильная, ротавирусы, лактазная недостаточность, IgA секреторный в кале, ПЦР исследования кала.

• Кал должен быть собран в стерильный одноразовый пластиковый контейнер с плотно завинчивающейся крышкой (спичечные коробки, банки и прочие нестандартные ёмкости для исследования не принимаются).
• На контейнере должны быть написаны Фамилия и (Важно!) Инициалы пациента (с его слов), после чего проверить соответствие с данными направления, во избежании расхождения. Собранные образцы необходимо в максимально короткие сроки отправить на исследование в лабораторию.
• Контейнер помещается в зип-пакет, на котором также указывается Фамилия и (Важно!) Инициалы пациента, подразделение лаборатории.
• Подписаны должны быть и пакет и контейнер.
• Материалом для проведения исследования на Диз.группу может быть также ректальный мазок взятый в тупфер.
• Материалом для проведения ПЦР анализа может быть пробирка типа «эппендорф» в которую помещен образец кала размером со спичечную головку или ректальный мазок.
• Дополнительными требованиями к исследованию кала на дисбактериоз являются:
  • За 1 месяц до исследования нельзя принимать антибиотики и пробиотики
  • У грудных детей недопустимо собирать кал на данное исследование с одноразового подгузника (Pampers, Libero, Huggies и пр.)
• Контейнер с забранным материалом поместить в холодильник при температуре +4-+8 С.
• В направление вписать дату и время забора биоматериала, фамилию осуществившего забор, и указать количество направляемых в лабораторию тупферов/пробирок/контейнеров, отдел лаборатории, выполняющий данное исследование.

Таблица необходимого объема кала на исследования:

Мазок на стекле: микробиоценоз, онкоцитология, гормональный фон, риноцитограмма.

• Перед забором биоматериала поверхность очищается от слизи стерильным ватным тампоном сухим или смоченным физ.раствором (Важно! Не антисептиками!). Носовые ходы тоже максимально очищаются от слизи.
• Материал на стекле должен быть тщательно высушен, стекло завернуто в чистую салфетку и упаковано в зип-пакет. Сколоть пакет с направлением.
• На пакете указывается Фамилия и (Важно!) Инициалы пациента, подразделение лаборатории.
• Стекло маркируется номером или Фамилией с инициалами специальным маркером на матированной части стекла.
• Данные пациента или номер его стекла должны быть идентичны и отражены:
  • на стекле
  • на направлении
  • на пакете
• В направлении необходимо указать количество стекол, поступивших на исследование, а для мазков на онкоцитологию, микробиоценоз, гормональный фон:
  • дату последней менструации, день цикла, неделю беременности,
  • возраст пациентки
  • дату забора биоматериала
  • предположительный диагноз или важные анамнестические данные, данные визуального осмотра
  • место забора биоматериала
• В направление вписать также время забора биоматериала, фамилию осуществившего забор, и указать количество направляемых в лабораторию стёкол, отдел лаборатории, выполняющий данное исследование.

Исследования крови имеют как общие, так и частные требования к методам забора, хранения и транспортировки. Они включают в себя такие исследования как: гормоны, антитела, аутоиммунная патология, биохимия, РНГА, исследования на гепатиты, ВИЧ, Ф-50, аллергены, витамины, онкомаркеры, клинический анализ крови, коагулограмму. Два последних имеют особые требования к сбору и хранению и подробно описаны отдельно.

• Для забора материала необходимо использовать только специальные иглы и переходники. Взятие крови с помощью шприца и самотеком может привести к искажению результатов.
• При взятии венозной крови важно помнить что, кровь проходит в пробирку, пока не компенсирует созданный в пробирке вакуум. При правильном взятии вакуумные пробирки самопроизвольно заполняются до нужной метки.
• Кровь отправляется в лабораторию в день забора. До следующего дня цельную кровь хранить нельзя! Если нет возможности передать кровь пациента в лабораторию в день забора, следует отделить сыворотку от форменных элементов крови. Это особенно важно для биохимических исследований, особенно исследования на глюкозу. Отделённая сыворотка допускает (для большинства исследований) однократное, или неоднократное замораживание.
• Для исследования на глюкозу кровь необходимо отбирать в пробирку серого цвета!
• Если пациент сдает кровь на Калий, Натрий, Глюкозу , сыворотку требуется отобрать сразу после забора крови из вены.
• На пробирке должны быть написаны Фамилия и (Важно!) Инициалы пациента (с его слов), после чего проверить соответствие с данными направления, во избежании расхождения.
• Пробирка помещается в зип-пакет, на котором также указывается Фамилия и (Важно!) Инициалы пациента, отдел лаборатории, выполняющий данное исследование.
• Подписаны должны быть и пакет и пробирка.
• Пробирки, заполненные биоматериалом, — поместить в холодильник (+4 — +8 С).
• В направление вписать дату и время забора крови, фамилию осуществившего забор, и указать количество направляемых в лабораторию пробирок, отдел лаборатории, выполняющий данное исследование.

В таблице перечислены исследования, на которые забор крови необходимо производить только в пробирки со специальным реагентом , после забора пробирку нужно 5-6 раз перевернуть для равномерного перемешивания крови с реагентом и можно сразу помещать в холодильник (свертывание крови в этих пробирках не происходит).

В случае невыполнения данных требований проведение исследований невозможно!

источник

За последние годы, благодаря внедрению современных технологий в клиническую практику, существенно возросла роль лабораторных исследований в диагностике и оценке эффективности лечения различных заболеваний. Лабораторные тесты являются более чувствительными показателями состояния пациента, чем его самочувствие и параметры других диагностических методов. Важные решения врача по ведению пациента часто опираются на лабораторные данные. В связи с этим приоритетной задачей современной клинической практики является обеспечение высокого качества и достоверности результатов лабораторных исследований.

Очень часто результаты лабораторных тестов зависят от того, как пациент был подготовлен к исследованию, в какое время была взята проба, от соблюдения необходимых требований к взятию данной пробы и т.д.

Необходимость стандартизации преаналитического этапа работы с венозной кровью связана с тем, что погрешности на этом этапе могут послужить основной причиной неправильной диагностики и лечения заболеваний.

Цель рекомендаций: ознакомить медицинских работников с правилами взятия пробы венозной крови для лабораторных исследований с помощью вакуумных систем BD Vacutainer®.

1. Почему при взятии венозной крови для лабораторных исследований необходимо использовать вакуумные системы BD Vacutainer®?

Лабораторная диагностика включает 3 этапа:

На преаналитическую стадию приходится до 60% времени, затрачиваемого на лабораторные исследования. Ошибки на этом этапе неизбежно приводят к искажению результатов а нализов. Помимо того, что лабораторные ошибки чреваты потерей времени и средств на проведение повторных исследований, их более серьезным следствием может стать неправильный диагноз и неправильное лечение.

На результаты лабораторных исследований могут влиять факторы, связанные с индивидуальными особенностями и физиологическим состоянием организма пациента, такие как: возраст; раса; пол; диета и голодание; курение и употребление алкогольных напитков; менструальный цикл, беременность, менопаузальный статус; физические упражнения; эмоциональное состояние и психический стресс; циркадный и сезонные ритмы; климатические и метеорологические условия; положение пациента в момент взятия крови; прием фармакологических препаратов и др.

На точность и правильность результатов также оказывает влияние техника взятия крови, используемые при этом инструменты (иглы, скарификаторы и др.), пробирки, в которые берется, а в последующем хранится и транспортируется кровь, а также условия хранения и подготовки пробы к анализу.

Традиционные и широко используемые в настоящее время способы взятия крови с помощью иглы и/или шприца оказываются основными источниками лабораторных ошибок, приводящих к низкому качеству результатов анализов. Кроме того, эти методы не могут быть стандартизованы и не обеспечивают безопасность пациента и персонала, берущего кровь.

При взятии проб венозной крови методом самотека с использованием иглы и обычных пробирок высока вероятность попадания крови пациента на руки медицинского персонала. В этом случае руки медицинской сестры могут стать источником передачи и распространения возбудителей гемоконтактных инфекций другому пациенту путем контаминации кровью инъекционной ранки. Медицинский работник сам может заразиться от источника инфекции.

Использование медицинского шприца с иглой для взятия крови следует также избегать из-за его недостаточной безопасности для медицинского персонала и невозможности исключения гемолиза крови при переносе пробы под давлением в пробирку.

Для взятия проб венозной крови наиболее предпочтительно использовать вакуум-содержащие системы (рис. 1). Этот способ имеет ряд преимуществ, основным из которых является то, что кровь попадает непосредственно в закрытую пробирку, предотвращающую любой контакт медперсонала с кровью пациента.

1.1. Принцип действия вакуумной системы BD Vacutainer®

Под действием вакуума кровь втягивается через иглу BD Vacutainer® напрямую из вены в пробирку и сразу же смешивается с химическим реактивом. Тщательно дозированный объем вакуума обеспечивает точное соотношение кровь/реагент в пробирке.

Вы медицинская сестра процедурного кабинета. У Вас есть возможность взять пробу венозной крови несколькими способами: открытым (через иглу), шприцем и с помощью вакуумной системы. Какой из способов наиболее предпочтителен? Ответ обоснуйте.

Для взятия пробы венозной крови лучше использовать вакуумную систему, т.к. она позволяет:

• обеспечить одинаковые условия взятия крови;
• провести минимум операций по подготовке образца крови в лаборатории;
• использовать пробирку, в которую берется кровь, в автоматических анализаторах (экономия на приобретении вторичных пластиковых пробирок);
• упростить и сделать безопасным процесс транспортировки и центрифугирования;
• четко идентифицировать пробирки, используемые для различных типов анализов, за счет цветной кодировки крышек;
• сократить затраты на приобретение центрифужных пробирок, на мойку, дезинфекцию и стерилизацию пробирок;
• уменьшить риск профессионального инфицирования;
• использовать вакуум-содержащие системы только однократно;
• экономить время на процессе взятия крови;

При присоединении пробирки к системе «игла-держатель» кровь начинает в нее поступать самостоятельно. Почему? Ответ обоснуйте.

В пробирке в заводских условиях создается тщательно дозированный объем вакуума и добавляется необходимое количество химического реагента. Под действием вакуума кровь втягивается через иглу BD Vacutainer® напрямую из вены в пробирку и сразу же смешивается с химическим реактивом. Это обеспечивает точное соотношение кровь/реагент в пробирке.

1.2. Преимущества вакуумной системы BD Vacutainer®

• стандартизация условий взятия крови и процесса пробо-подготовки;
• система готова к использованию, уменьшается количество операций по подготовке образца крови в лаборатории;
• возможность прямого использования в качестве первичной пробирки в целом ряде автоматических анализаторов (экономия на приобретении вторичных пластиковых пробирок);
• герметичные и небьющиеся пробирки упрощают и делают безопасным процесс транспортировки и центрифугирования проб крови;
• четкая идентификация пробирок, используемых для различных типов анализов, за счет цветной кодировки крышек;
• сокращение затрат на приобретение центрифужных пробирок, на мойку, дезинфекцию и стерилизацию пробирок;
• простая методика обучения персонала;
• уменьшение риска профессионального инфицирования;
• экономия времени в процессе взятия крови;
• простота конструкции вакуум-содержащих систем и их надежность.

2. Из чего состоят системы для взятия венозной крови BD Vacutainer®?

Система BD Vacutainer® состоит из трех компонентов (рис.2):

2.1. Стерильные иглы BD Vacutainer®

• Двусторонние иглы с мембраной, предотвращающей ток крови при смене пробирки, используются для отбора проб в несколько пробирок за одну процедуру венепункции.
• Имеют ультратонкие стенки.
• Покрыты силиконом с внешней и внутренней стороны для меньшего травмирования пациента и улучшения тока крови.
• За счет уникальной V-образной заточки обеспечивают гладкий и безболезненный ввод в вену.
• Имеют различные длину и диаметр, что позволяет наименее травматично пунктировать разные вены. Цветовая кодировка позволяет быстро определять размер иглы.
• Иглы проходят индивидуальный контроль качества.

Виды игл и адаптеров BD Vacutainer®

1. Игла Precision Glide™
2. Игла Eclipse™
3. Игла FBN BD Vacutainer®
4. Комплекты для забора крови
5. Адаптеры Luer

Стандартная игла для забора крови в несколько пробирок (рис. 4). Выпускается разных размеров.

Снабжена дополнительным защитным колпачком, что значительно снижает риск случайной травмы от укола иглой и передачи инфекции. Колпачок приводится в действие одной рукой и не требует переучивания персонала (рис. 5). Эти иглы выпускаются разных размеров.

с) Игла для визуального контроля тока крови FBN BD Vacutainer®

Идеально подходит для трудных случаев взятия крови (слабые вены, плохой ток крови и т.д.), рекомендуется к использованию молодыми специалистами, только начинающими брать кровь (рис. 6). Выпускается разных размеров.

d) Комплекты для взятия крови

Специально разработаны для взятия крови из труднодоступных вен. Комплекты включают иглы, безлатексные катетеры разной длины и Люэр-адаптеры (рис. 7). Иглы имеют большие «крылышки» для удобства фиксации при введении в вену. Комплекты Safety Lok™ и Push Button Safety Lok™ (рис. 8) снабжены защитными устройствами для повышения безопасности медицинских работкников при работе с иглой. Комплекты различаются размерами игл и катетеров.

Предназначены для забора крови через обычную иглу или венозный катетер. Адаптер Luer Lok™ обеспечивает более прочное соединение с катетером (рис. 9).

2.2. Держатели BD Vacutainer®

Одноразовый и многоразовый держатели совместимы со всеми иглами и пробирками BD Vacutainer® (рис. 10). Предназначены для более удобного введения иглы и безопасного присоединения пробирки.

Многоразовый держатель оснащен кнопкой, при нажатии на которую происходит высвобождение иглы.

2.3. Пробирки BD Vacutainer®

Пробирки BD Vacutainer® соответствуют международному стандарту 15О 6710 для вакуумных пробирок для взятия крови (рис. 11). Пробирки производятся из стекла и прозрачного безлатексного полиэтилентерефталата (ПЭТ), который легче стекла и практически не бьется. Система BD Vacutainer® выпускается готовой к использованию и не требует предварительной подготовки пробирок и дозирования реагентов. Пробирки защищены безлатексными крышками, имеющими цветовые коды в соответствии с назначением пробирок и типом содержащихся в них химических реагентов (таб. 1).

Пробирки BD Vacutainer® снабжены этикетками, содержащими информацию о реактиве, объеме отбираемой пробы, номере партии, сроке годности и т.д. (рис. 12).

3. Какое оснащение необходимо для взятия проб венозной крови?

(Источник: инструкция о соблюдении противоэпидемического режима при взятии венозной крови путем венепункции в учреждениях здравоохранения города Москвы 2.1.3.007-02).

1. Стол для проб крови. Возможно использование передвижного столика, бесшумно передвигающегося по любой поверхности.
2. Подставки (штативы) для пробирок. Подставки должны быть легкими, удобными, с достаточным количеством ячеек для пробирок.
3. Кресло для венепункции. Для проведения венепункции рекомендуется специальное кресло. Пациент во время венепункции должен сидеть с максимальным комфортом и безопасностью для него и быть доступным для медицинского персонала процедурного кабинета. Оба подлокотника кресла должны располагаться так, чтобы можно было найти оптимальную для каждого пациента позицию при венепункции. Подлокотники служат опорой для рук и не позволяют сгибать локти, что предотвращает спадение вен. Кроме того, кресло должно предохранять пациентов от падения в случае обморока.
4. Кушетка.
5. Холодильник.
6. Перчатки. Одноразовые или многоразовые. Допускается многократное использование перчаток с обеззараживанием их после каждого пациента двукратным протиранием салфетками одноразового использования, пропитанными антисептиками, обладающими вирулицидным действием. При взятии крови из подключичного катетера перчатки должны быть стерильные одноразового использования.
7. Системы для забора венозной крови BD Vacutainer®.

Почему для проведения венепункции рекомендуется специальное кресло? Ответ обоснуйте.

Для проведения венепункции рекомендуется использовать специальное кресло, т. к. пациент во время венепункции должен сидеть с максимальным комфортом и безопасностью для него, а также быть доступным для медицинского персонала процедурного кабинета. Оба подлокотника кресла должны располагаться так, чтобы можно было найти оптимальную для каждого пациента позицию при венепункции. Подлокотники служат опорой для рук и не позволяют сгибать локти, что предотвращает спадение вен. Кроме того, кресло предохраняет пациентов от падения в случае обморока.

4. Как правильно взять пробу венозной крови с использованием системы BD Vacutainer®?

I. Подготовка к процедуре

1. Вымыть и высушить руки . Необходимое условие для соблюдения инфекционной безопасности. Руки моются гигиеническим способом по схеме, рекомендованной ВОЗ.
2. Надеть защитную одежду: халат (брюки и куртка или комбинезон; халат поверх брюк или комбинезона), шапочку (косынку). Подготовить необходимое оснащениe . Каждый пациент рассматривается как потенциально инфицированный.

Халат меняется по мере загрязнения, но не реже двух раз в неделю. Должна быть предусмотрена немедленная смена спецодежды в случае загрязнения ее кровью.

Пригласить пациента, зарегистрировать направление на анализ крови . Каждое направление на анализ крови должно быть зарегистрировано для идентификации всех документов и инструментария, относящихся к одному пациенту. В направлении на анализ крови должна быть указана следующая информация:

• фамилия, имя, отчество пациента, возраст, дата и время взятия крови;
• регистрационный номер анализа (указывает лаборатория);
• № истории болезни (амбулаторной карты);
• фамилия лечащего врача;
• отделение или подразделение, направившее пациента;
• другая информация (домашний адрес и телефон пациента).

Пробирки для взятия крови и бланки направлений маркируются заранее одним регистрационным номером.

Провести идентификацию пациента . Необходимо убедиться, что взятие крови будет проведено у пациента, указанного в направлении. Независимо от подразделения клиники для идентификации пациента следует предпринять следующее:

• у амбулаторного пациента спросить его имя и фамилию, домашний адрес и/или дату рождения;
• сравнить эту информацию с указанной в направлении;
• у стационарного пациента спросить те же данные (если пациент в сознании), сравнить информацию с указанной в направлении;
• для неизвестных пациентов (пациентов без сознания или с сумеречным сознанием) в приемном отделении должно быть присвоено какое-либо временное, но четкое обозначение, пока его личность не будет выяснена.

Объяснить пациенту цель и ход предстоящей процедур убедиться в наличии информированного согласия . Пациент мотивируется к сотрудничеству. Соблюдаются права пациента на информацию (Основы законодательства РФ об охране здоровья граждан. Статьи 30-33).

Пациент 52 лет пришел в процедурный кабинет для взятия пробы венозной крови на холестерин и триглицериды. Дома он позавтракал, выпил чашку крепкого кофе, а по дороге в поликлинику выкурил сигарету. Медицинская сестра процедурного кабинета взяла пробу крови, не спросив у пациента, когда он принимал пищу в последний раз, пил ли кофе, курил. Какие результаты анализов могут быть получены у такого пациента? Ответ обоснуйте.

Медицинская сестра должна проверить соблюдение пациентом ограничений в диете, учесть прием назначенных пациенту лекарственных препаратов.

Взятие проб должно выполняться через 12 часов после последнего приема пищи и при сниженной физической активности, т.к. концентрация некоторых аналитов в сыворотке изменяется под действием таких факторов, как состав пищи, физическая активность, курение, употребление алкоголя и кофе.

В доступной для пациента форме, с учетом его психологических особенностей, объясняется, что представляет собой процедура, какие неприятные ощущения и когда может испытать пациент. Такой разговор помогает снять эмоциональное напряжение, создать доверительную обстановку.

При взятии крови у пациента, находящегося в сумеречном состоянии, необходимо соблюдать особую осторожность, чтобы предупредить неожиданные движения и вздрагивания в момент введения иглы или нахождения ее в просвете вены. Наготове должна быть марлевая салфетка.

При выпадении или смещении положения иглы жгут нужно быстро снять. Если неожиданно игла глубоко вошла в руку, необходимо предупредить врача о возможности повреждений.

Проверить соблюдение пациентом ограничений в диете, учесть прием назначенных пациенту препаратов . Наиболее важные правила выбора времени для взятия проб венозной крови:

• по возможности пробы следует брать между 7 и 9 часами утра;
• взятие проб должно выполняться через 12 часов после последнего приема пищи и при сниженной физической активности (например, на концентрацию холестерина и триглицеридов в сыворотке влияют такие факторы, как состав пищи, физическая активность, курение, употребление алкоголя и кофе);
• взятие проб должно выполняться до проведения диагностических и лечебных процедур, способных оказать влияние на результаты.

Процедура обеспечения соблюдения диетических ограничений, а также процедура оповещения персонала об их отмене после взятия крови зависит от правил соответствующего учреждения.
Удобнo расположить пациента . Расположите руку пациента так, чтобы плечо и предплечье образовывали прямую линию.

1. Выбрать, осмотреть и пропальпировать место предполагаемой венепункции . Чаще всего венепункция производится на локтевой вене (рис. 16). В случае необходимости можно использовать любую поверхностную вену — запястья, тыльной стороны кисти, над большим пальцем и т.д. (рис. 17).
2. Наложить жгут . Жгут накладывается на 7-10 см выше места венепункции на рубашку или пеленку (рис. 18-19). При наложении жгута не используйте руку на стороне мастэктомии.

Необходимо помнить, что длительное наложение жгута (более 1 мин) может вызвать изменения концентрации белков, газов крови, электролитов, билирубина, показателей коагулограммы.

Взять иглу, снять белый колпачок, чтобы открыть иглу с клапаном (рис. 20).

Ввернуть закрытый резиновым клапаном конец иглы в держатель (рис. 21). Если игла имеет защитный розовый колпачок — отогнуть его к держателю .

Попросить пациента сжать кулак . Нельзя задавать для руки физическую нагрузку (энергичное сжимание и разжимание кулака), так как это может привести к изменениям концентрации в крови некоторых показателей.

Для усиления тока крови можно помассировать руку от запястья к локтю или использовать согревающие принадлежности — теплую (около 40°С) влажную салфетку, приложенную к месту пункции на 5 минут. Если не удается найти вену на данной руке, попробуйте найти ее на другой.

Читайте также:  Сдать кровь на анализ терапевт

Продезинфицировать место венепункции . Дезинфекция места венепункции проводится марлевой салфеткой, смоченной антисептиком, круговыми движениями от центра к периферии.

Подождать до полного высыхания антисептика или просушить место венепункции стерильным сухим тампоном . Не пальпировать вену после обработки! Если во время венепункции возникли сложности и вена пальпировалась повторно, эту область нужно продезинфицировать снова.

Снять цветной защитный колпачок .

Фиксировать вену . Обхватить левой рукой предплечье пациента так, чтобы большой палец находился на 3-5 см ниже места венепункции, натянуть кожу (рис. 22). Медицинская сестра должна находиться перед пациентом, чтобы в случае обморока поддержать его и не дать ему упасть.

Ввести иглу в вену . Игла с держателем вводится срезом вверх под углом 15° (рис. 23). При использовании иглы с прозрачной камерой РВМ при попадании в вену в индикаторной камере появится кровь.

Вставить пробирку в держатель . Пробирка вставляется в держатель со стороны ее крышки. Большим пальцем надавите на дно пробирки, удерживая при этом ободок держателя указательным и средним пальцем (рис. 24). Старайтесь не менять руки, т.к. это может изменить положение иглы в вене. Под действием вакуума кровь самостоятельно начнет набираться в пробирку. Тщательно дозированный объем вакуума обеспечивает необходимый объем крови и точное соотношение кровь/реагент в пробирке.

При взятии пробы у одного пациента в несколько пробирок соблюдайте правильную последовательность заполнения пробирок (см. ниже Правила работы).

Снять (ослабить) жгут . Как только кровь начнет поступать в пробирку, необходимо снять (ослабить) жгут. Длительное наложение жгута (более 1 мин) может вызвать изменения концентрации белков, газов крови, электролитов, билирубина, показателей коагулограммы.

Попросить пациента разжать кулак .

Извлечь пробирку из держателя . Пробирка извлекается после того, как в нее прекратила поступать кровь (рис. 25). Извлекать пробирку удобнее, упираясь большим пальцем в ободок держателя.

Перемешать содержимое наполненной пробирки . Содержимое перемешивается путем переворачивания пробирки несколько раз для полного смешивания крови и наполнителя (рис. 26). Необходимое число переворачиваний (см. ниже Правила работы). Не встряхивайте резко пробирку! Это может привести к разрушению форменных элементов крови.

Вставить в держатель следующую пробирку и повторить пункты 11-15

Медицинская сестра при взятии пробы крови собрала систему «игла-держатель» и сразу присоединила к ней пробирку. При венепункции кровь в пробирку самостоятельно не поступает. Почему? Ответ обоснуйте.

При присоединении пробирки к игле, не введенной в вену, в пробирку сразу же начинает поступать воздух. В результате этого вакуум в пробирке замещается воздухом, и после введения иглы в вену кровь всасываться не будет.

1. Приложить сухую стерильную салфетку к месту венепункции .
2. Извлечь иглу из вены . Если игла оснащена встроенным защитным колпачком, то сразу после извлечения иглы из вены опустите колпачок на иглу и защелкните. Затем поместите иглу в специальный контейнер для использованных игл (рис. 27).
3. Наложить давящую повязку или бактерицидный пластырь на место венепункции .
4. Провести дезинфекцию использованного оборудования. Убедиться в хорошем самочувствии пациента .
5. Промаркировать взятые пробы крови, указав на этикетке каждой пробирки Ф.И.О. пациента, № истории болезни (амбулаторной карты), время взятия крови. Поставить свою подпись .
6. Транспортировать в соответствующие лаборатории промаркированные пробирки в специальных контейнерах с крышками, подвергающимися дезинфекции .

5. Правила работы при взятии крови с помощью системы BD Vacutainer®

Для предотвращения возможной перекрестной контаминации пробы реагентами из других пробирок необходимо соблюдать правильную последовательность их заполнения (таб. 2.)

II. Объем пробы в пробирке BD Vacutainer®

• Каждая пробирка содержит строго определенное количество реагента для указанного на ней объема крови;
• Пробирки должны заполняться полностью, в пределах ±10% от указанного объема (т.е. пробирка на 4,5 мл должна быть заполнена в пределах 4-5 мл);
• Неправильное соотношение кровь/реагент в пробе ведет к ошибочным результатам анализа.

III. Правила перемешивания

Сразу после заполнения и извлечения пробирки из держателя ее нужно аккуратно перевернуть 4-10 раз на 180° для смешивания пробы с наполнителем. Число перемешиваний зависит от вида наполнителя в пробирке (таб. 2). В плохо перемешанной пробе образуются микросгустки, приводящие к искажению результатов анализов, а также к поломкам лабораторных анализаторов вследствие закупорки пробозабирающих зондов. Пробу нужно перемешивать аккуратно, не трясти во избежание коагуляции и гемолиза.

6. Особые случаи взятия крови с помощью системы BD Vacutainer®

При взятии пробы крови для исследования коагуляции медицинская сестра выбрала пробирку с розовой крышкой, а после взятия крови резко встряхнула ее 8 раз. Правильно ли поступила сестра? Ответ обоснуйте с помощью таблицы «Порядок взятия крови в пробирки BD Vacutainer®»

При взятии пробы крови для исследования коагулограммы необходима пробирка с голубой крышкой. Содержимое перемешивается путем переворачивания пробирки 3-4 раза для полного смешивания крови и наполнителя. Резкое встряхивание может привести к разрушению форменных элементов крови.

Пациенту назначено исследование нескольких различных показателей: глюкоза, электролиты, коагулограмма и гематологическое исследование цельной крови. В какой последовательности необходимо брать указанные пробы? Ответ обоснуйте с помощью таблицы «Порядок взятия крови в пробирки BD Vacutainer®»

Пробы крови необходимо брать в следующей последовательности:

1. Исследование коагулограммы
2. Исследование сыворотки (пластиковая пробирка)
3. Гематологическое исследование цельной крови
4. Исследование глюкозы
5. Исследование электролитов

6.1. Взятие крови из труднодоступных вен

Если при взятии венозной крови используются вены тыльной стороны кисти, височные и другие труднодоступные вены, то в этих случаях лучше использовать комплекты для взятия крови — BD Vacutainer® Safety Lok™ и Push Button Safety Lok™. В комплекты входят иглы-«бабочки», катетер и адаптер Luer.

Игла со специальными «крылышками» позволяет лучше фиксировать иглу в вене, а гибкий катетер гарантирует правильное расположение пробирки.

Техника взятия крови осуществляется так же, как и при использовании стандартной иглы Precision Glide™. Игла может быть закреплена в вене за «крылышки» обычным пластырем (рис. 28).

6.2. Особенности взятия крови с помощью венозных катетеров

Взятие проб крови из постоянных катетеров может привести к сложностям анализа и ошибочным его результатам из-за неполного промывания места взятия. Это приводит к контаминации образца лекарственными средствами, антикоагулянтами и/или разбавлению образца крови.

Поскольку катетеры обычно промываются физиологическим раствором для уменьшения риска тромбоза, их нужно промыть этим раствором и перед взятием проб крови для диагностических исследований. Перед взятием пробы нужно удалить из катетера достаточное количество крови, чтобы быть уверенным, что проба не разбавлена и не контаминирована. Объем удаляемой крови зависит от объема «мертвого пространства» конкретного катетера.

Для исследований, кроме анализа коагуляции, кровь рекомендуется сливать в количестве двух объемов «мертвого пространства» катетера, а для исследования коагуляции — шести объемов «мертвого пространства» катетера (или 5 мл).

Таким образом, в случае, если необходимо взятие крови и на биохимические, и на коагулологические исследования, то первой всегда берется пробирка для биохимических исследований.

При взятии крови из катетера с помощью системы BD Vacutainer® используется адаптер Luer. Техника взятия крови осуществляется также, как и при использовании игл.

7. Как правильно утилизировать использованную вакуумную систему BD Vacutainer®?

Медицинские отходы очень опасны как для здоровья человека, так и для окружающей среды, и их сбор, хранение и утилизацию необходимо проводить, соблюдая установленные санитарно-эпидемиологические правила и нормы (СанПиН 2.1.7.728-99 «Правила сбора, хранения и удаления отходов лечебно-профилактических учреждений») и инструкции, принятые в вашем лечебном учреждении.

Медицинские изделия, применяемые для взятия венозной крови, относятся к медицинским отходам классов Б (опасные отходы) и В (чрезвычайно опасные отходы), в зависимости от того, для какого исследования берется кровь.

8. Возможные трудности при взятии крови с помощью системы BD Vacutainer®

Если кровь набирается в пробирку с антикоагулянтом, то при заборе меньшего количества крови соотношение кровь/антикоагулянт будет нарушено, и нужно повторно взять кровь в новую пробирку.

Во время взятия пробы венозной крови в пробирку прекратила поступать кровь. Что произошло? Как вы поступите в данной ситуации?

Список литературы

1. Гудер В. Г., Нарайанан С., Виссер Г., Цавта Б. Пробы: от пациента до лаборатории. Git Verlag, 2001.
2. Инструкция о соблюдении противоэпидемического режима при взятии венозной крови путем венепункции в учреждениях здравоохранения г. Москвы 2.1.3.007-02.
3. Кишкун А. А. Современные технологии повышения качества и эффективности клинической лабораторной диагностики.- М.: РАМЛД, 2005, 528 с.
4. Кишкун А. А. Оценка экономической эффективности использования одноразовых вакуум-содержащих систем для взятия крови на лабораторные анализы / Справочник заведующего КДЛ. — 2006. — N11 (ноябрь). — С. 29-34.
5. Козлов А. В. Стандартизация преаналитического этапа как осознанная необходимость.// Лабораторная диагностика/ под. ред. В. В. Долгова, О. П. Шевченко.-М.: Издательство «Реофарм», 2005 .- С.77-78.
6. Мошкин А. В., Долгов В. В. Обеспечение качества в клинической лабораторной диагностике: Практ. руковод.- М.: «Медиздат», 2004. — 216 с.
7. Обеспечение качества лабораторных исследований. Преаналитический этап. Справочное пособие (под редакцией В. В. Меньшикова), М., Юнимед-пресс, 2003, 311 стр.
8. Приказ МЗ РФ N 380 от 25 декабря 1997 «О состоянии и мерах по совершенствованию лабораторного обеспечения диагностики и лечения пациентов в учреждениях здравоохранения Российской Федерации».
9. Приказ МЗ РФ N 45 от 7 февраля 2000 г. «О системе мер по повышению качества клинических лабораторных исследований в учреждениях здравоохранения Российской Федерации».
10. Приказ МЗ РФ N 220 от 26 мая 2003 г. «Правила проведения внутрилабораторного контроля качества количественных методов клинических лабораторных исследований с использованием контрольных материалов».
11. СанПиН 2.1.7.728-99. «Правила сбора, хранения и удаления отходов лечебно-профилактических учреждений».
12. СП 3.1.958-99. «Профилактика вирусных гепатитов. Общие требования к эпидемиологическому надзору за вирусными гепатитами».
13. Procedures for the Collection of Diagnostic Blood Specimens by venipuncture; Approved Standard- Fifth edition, NCCLS H3-A5 Vol.23, No.32.
14. Procedures for the Handling and Processing of Blood Specimens; Approved Guideline — Third Edition, NCCLS H18-A3 Vol.24, No.38.
15. Single-use containers for venous blood specimen collection ISO 6710:1995.
16. Tubes and Additives for Specimen collection; Approved Standard-Fifth edition, NCCLS H1-A5 Vol.23, No.33.
17. Use of anticoagulants in diagnostic laboratory investigation. WHO/ DIL/LAB/99.1/Rev.2 2002.

источник

Вакуумная пробирка — основной инструмент для забора венозной крови. Она может быть наполнена реагентом, который позволит провести быстрый и точный анализ. В таком случае каждая пробирка имеет колпачок своего цвета. Цветное кодирование соответствует международному стандарту ISO 6710.

Вакуумные пробирки для получения сыворотки (биохимия, серология). Цвет крышечки – коричневый или красный

Сыворотка крови – жидкая часть крови лишенная форменных элементов и некоторых белков (фибрин и др.) в отличие от плазмы, в которой сохраняются все элементы жидкой части крови кроме форменных элементов.

Получение сыворотки крови является результатом двухступенчатого биохимического процесса: свертывания (коагуляции) крови и ретракции (уплотнения) сгустка. Для запуска коагуляционного каскада необходимо наличие внешнего активатора, каковым может служить кремния диоксид, поэтому процесс свертывания крови быстрее происходит в стеклянных пробирках, так как кремния диоксид является базовым материалом стекла или в пластиковых пробирках с активатором свертывания. Активатор свертывания (clot activator) выполнен в виде напыления на внутренней стенке пробирки.
После образования сгустка начинается этап его уплотнения и выделения сыворотки. На практике ретракция сгустка ускоряется центрифугированием пробирок с кровью.
Для получения максимально чистой сыворотки рекомендуется соблюдение трех условий:
1. После забора крови в пробирку в соответствии с инструкцией необходимо осторожно однократно перевернуть пробирку для более полного контакта крови с активатором свертывания;
2. Дождаться завершения процесса свертывания крови в течение 20-30 минут при комнатной температуре и вертикальном положении пробирки;
3. Центрифугировать пробирку со свернувшейся кровью не менее 10 минут с ускорением 1500 G (примерно 3000 об/мин) для максимального выдавливания сыворотки из сгустка. При необходимости допускается центрифугирование с ускорением 4000G c крышечкой и до 12000G без крышечки.
После центрифугирования и полной ретракции сгустка сыворотка располагается над сгустком, но в контакте с ним. Сохраняется опасность загрязнения сыворотки составляющими сгустка при неосторожном обращении с пробиркой (встряхивание, опрокидывание и пр.). Для лучшего очищения сыворотки и более полного разграничения сыворотки и сгустка применяются специальные пробирки, содержащие биологически инертный олефиновый гель. Последний представляет собой тиксотропный кополимер, который тяжелее сыворотки, но легче кровяного сгустка, поэтому после центрифугирования гель в виде тонкой полоски занимает промежуточное положение и служит разделительным барьером. Стабильность такого барьера гарантирована в течение 5-7 дней при хранении пробирки с кровью при комнатной температуре.
Оптимальные сроки сохранности образца крови в данных пробирках составляет при комнатной температуре 6 часов, при хранении в холодильнике (+4ºС) – 24 часа. Повторное центрифугирование пробирок, особенно с гелем, не допускается.
Полученная сыворотка крови применяется для очень широкого спектра лабораторных биохимических, ИФА и иммунологических исследований:
белковый состав, ферменты, гормоны, онкомаркеры, ВИЧ-инфицирование, гепатиты и пр.

Вакуумные пробирки для получения цельной крови или плазмы

Не все анализы в клинике делаются из сыворотки крови. Для многих видов исследований необходима цельная кровь, содержащая форменные элементы, или плазма, освобожденная от клеток крови центрифугированием. С целью получения несвернувшейся крови разработаны пробирки с определенными добавками – антикоагулянтами. На практике используют два вида антикоагулянтов:
ингибиторы (вещества, вызывающие торможение) тромбина. Тромбин является ключевым игроком в коагуляционном каскаде. Он принимает участие в формировании ряда факторов свертывания крови и способствует трансформации фибриногена в фибрин. Добавление биохимических ингибиторов тромбина эффективно активирует антикоагуляционные свойства крови.
связывание (удаление) ионов Ca2+. При прочих равных условиях свертывание крови происходит при активном участии ионов Ca2+. Удаление их является эффективным механизмом сохранения крови в жидком состоянии.

Гепарин. Цвет крышечки – зеленый, светло-зеленый

Гепарин — кислый мукополисахарид с молекулярной массой 4000-40000 – является натуральным антикоагулянтом, присутствующем в любом здоровом организме. Гепарин активирует создание комплексных соединений между антитромбином III и такими факторами свертывания крови, как тромбин, факторы XIIa, XIa, Xa, IXa и VIIa. В таком комплексе факторы свертывания инактивируются необратимо.
Для целей получения плазмы крови в пробирки добавляют литиевую либо натриевую соль гепарина в пропорции к забираемой в пробирку кровью 15-20 МЕ/1 мл, что служит гарантией полной инактивации свертывания крови и не искажает исследуемые параметры. Эритроциты сохраняются в образце крови до 8 часов. Нельзя использовать для проведения анализов образец крови, хранившийся более 48 часов даже в условиях холодильника (+4ºС).
Для получения качественного результата анализа необходимо:
Немедленно после взятия крови осторожно перевернуть пробирку 5-7 раз для лучшего перемешивания крови и гепарина,
Плазма отделяется после центрифугирования. Нормальные скорости центрифугирования – 1000-1500G (2000-3000 об/мин). При необходимости допускается центрифугирование с ускорением 4000G c крышечкой и до 12000G без крышечки.
В клинике пробирки с гепарином применяются, в основном для проведения исследования:
электролитного состава крови,
газового состава крови,
содержания алкоголя в крови.
Не рекомендуется использовать гепарин для: морфологических исследований, так как кислотный характер гепарина способствует обесцвечиванию мазка крови, придавая ему голубоватый оттенок, подсчета лейкоцитов и тромбоцитов, поскольку гепарин стимулирует агрегацию этих клеток крови.
исследований по методике полимеразной цепной реакции (ПЦР).

Для более чистого разграничения плазмы крови и сгустка применяются специальные пробирки, содержащие кроме гепарина инертный олефиновый гель. Последний представляет собой тиксотропный кополимер, который тяжелее плазмы, но легче форменных клеток крови, поэтому после центрифугирования гель в виде тонкой полоски занимает промежуточное положение и служит разделительным барьером.

Фторид натрия/ЭДТА калия. Цвет крышечки – серый

Добавление фторида натрия и ЭДТА калия в пробирку позволяет предотвратить разрушение глюкозы крови (процесс, называемый гликолизом) и сохранить ее уровень во взятом образце крови.
Фторид натрия и оксалат калия выступают в качестве антикоагулянтов, связывая ионы Са2+ и, кроме того, фторид натрия стабилизирует уровень глюкозы.
Глюкоза разрушается до пирувата и лактата при последовательном осуществлении различных энзиматических реакций. Фторид натрия ингибирует некоторые ферментативные реакции, включая превращение фосфоглицерата в фосфоенолпируватацид, и предотвращает гликолиз.
Для получения качественного результата анализа необходимо:
немедленно после взятия крови осторожно перевернуть пробирку 5-7 раз для лучшего перемешивания крови и антикоагулянта
плазма отделяется после центрифугирования. Нормальные скорости центрифугирования – 1000-1500G (2000-3000 об/мин).
Пробирки с добавлением фторида натрия и оксалата калия используют для проведения определения уровня сахара (глюкозы) в крови. Соотношение компонентов 1/1, общее количество добавляемых реагентов – 4,5 мг/1 мл забираемой в пробирку крови.

Замечания: Фторид блокирует активность уреазы и некоторых других ферментов. Образцы крови из данных пробирок нельзя использовать для прямого определения энзимов. Фторид натрия и ЭДТА калия связывают ион Са2+, заменяя в крови 1 ион кальция на 2 иона натрия или калия. Следствием этого является повышение напряжения ионов в межклеточной жидкости и выкачивание воды из внутриклеточного пространства в межклеточное, сморщивание клеток крови с умеренным «выдавливанием» из эритроцитов гемоглобина. Поэтому видимый гемолиз свойственен образцам крови с данной добавкой.
Глюкоза превращается в лактат в результате комплекса реакций, включающего в себя различные этапы. Фторид ингибирует один их последних этапов разрушения глюкозы, начальные этапы с участием гексокиназы и фосфофруктокиназы блокируются менее эффективно, поэтому можно наблюдать снижение содержания глюкозы в образце крови на 6-7% от первоначального.
После первоначального незначительного снижения уровня глюкозы ее количество остается постоянным при хранении крови в пробирке в течение 8-10 часов при температуре до 25ºС и в течение 2-3 дней в холодильнике (+4ºС).

ЭДТА-К2. Цвет крышечки — сиреневый

Этилендиаминтетраацетат (ЭДТА) является предпочтительным антикоагулянтом для гематологических исследований. ЭДТА и его щелочные соли способны создавать хелатные соединения с ионами кальция с образованием растворимых высокостабильных комплексов. Наиболее эффективная концентрация ЭДТА – 1,2 мг/мл крови. Во всем мире используют три варианта солей ЭДТА: ЭДТА-К3, ЭДТА-К2 и ЭДТА-Na2. Наиболее предпочтительной и рекомендуемой Международной Комиссией по Стандартизации в Гематологии является двукалиевая соль ЭДТА:

ЭДТА-К3 показывает меньшую способность поддержания крови в жидком состоянии, также ЭДТА-К3 влияет на подсчет лейкоцитов, занижая их количество.
различия между ЭДТА-К2 и ЭДТА-Na2 в клиническом плане незначительны и ими можно пренебречь, но ЭДТА-Na2 хуже растворим.

Для получения качественного результата анализа необходимо:
немедленно после взятия крови осторожно перевернуть пробирку 5-7 раз для лучшего перемешивания крови и антикоагулянта;
плазма отделяется после центрифугирования. Нормальные скорости центрифугирования – 1000-1500G (2000-3000 об/мин). При необходимости допускается центрифугирование с ускорением 4000G c крышечкой и до 12000G без крышечки.

Наиболее широко используются пробирки, содержащие 1,95 мг ЭДТА/1мл крови. Они нашли свое применение в таких областях лабораторной практики, как:
гематологические исследования – подсчет клеток крови, определение СОЭ и пр.
ПЦР-исследования (качественные и количественные методики).

Пробирки с образцами крови можно хранить до 6-10 часов при 4ºС, хранение свыше 24 часов не рекомендуется из-за снижения числа эритроцитов и лейкоцитов.

Цитрат натрия. Цвет крышечки — голубой

Цитрат натрия является антикоагулянтом для сбора венозной крови с це6лью проведения исследований коагуляционных свойств крови.

Процесс свертывания крови представляет собой последовательность сложных реакций, в которых результатом первых реакций (с участием активных ферментов) является активация следующих, первоначально неактивных энзимов. Последним активным ферментом в этой цепочке присутствует тромбин, который осуществляет превращение фибриногена в фибрин. Нити фибрина опутывают клетки крови и окончательно формируют кровяной сгусток. Крайне важную роль на этом этапе играют ионы Са2+. Антикоагуляционные свойства цитрата проявляются в формировании комплекса с ионами Са2+ и эффективном удалении их из крови.

Общее исследование свертывания крови определяется временем, необходимым для последовательной активации ферментов, участвующих в коагуляционном процессе. Проводится определение времени активации и количественное измерение различных составляющих коагуляционного каскада, для чего создаются так называемые «обходные пути» добавлением некоторых промежуточных продуктов свертывания.

Наиболее часто используются пробирки с 3,8% или 3,2% раствором цитрата натрия (0,129 моль/л), соотношение цитрата к количеству забираемой крови 1/9.

Для максимально качественного проведения коагулологических исследований рекомендуется соблюдение определенных правил:
нельзя использовать пробирку для взятия крови на коагуляционные тесты первой, сразу после венепункции, так как на результаты может повлиять выделяющийся при пункции тканевой тромбопластин;
венозный жгут во время взятия крови в пробирку должен быть снят;
немедленно после взятия крови пробирку аккуратно переворачивают 5-6 раз для лучшего перемешивания крови и антикоагулянта;
сразу после этого надо проверить количество взятой крови: ее верхняя граница должна быть на уровне голубой полоски на этикетке.

Оптимальными условиями хранения пробирки с образцом крови является температура 20-24ºС и исследование коагуляционных свойств и факторов свертывания крови должно быть проведено в течение 2-х часов с момента взятия крови

источник

Компания «ХИММЕДСНАБ» предлагает вакуумные пробирки в широком ассортименте. Эти изделия являются основными компонентами, использующимися для взятия венозной крови. Наличие в них вакуума обеспечивает возможность забора нужного количества материала для анализа, а также точной дозировки реагентов. Эти элементы также могут являться составной частью многокомпонентных систем забора и анализа крови. Благодаря их использованию удается минимизировать ошибки уже на этапе сбора материала для проведения исследования и значительно облегчить работу занимающегося этим персонала.

Существует множество разновидностей вакуумных пробирок. И все из них представлены у нас: возможно осуществить заказ любой по объему оптовой партии. Рассмотрим, как классифицируются такие изделия, какие каждая из разновидностей имеет особенности, и порядок их применения.

В составе этого элемента выделяют следующие части:

сама пробирка. Она используется для забора, транспортировки и хранения исследуемого материала;

крышка. Ее функция не ограничивается лишь защитой содержимого от проникновения воздуха и других факторов. При помощи крышек осуществлялся маркировка изделий, за счет чего специалист может определить их назначение и специфику использования (об этом позже). Обычно крышка состоит из резиновой пробки, обеспечивающей плотное закрытие и корпуса из специального пластика. Также на ней может быть еще и цветное кольцо, по которому можно уточнить особенности наполнителя;

этикетка. На нее наносится вся необходимая для проведения исследований информация.

Что касается материалов, из которых изготавливаются пробирки вакуумные для забора крови, то это может быть стекло, или же пластик. Но для этого подойдет далеко не любой пластик. Как правило, это полиэтилентерфталат – материал, характеризующийся высокой прочностью, а также минимальной пористостью, по сравнению с аналогами, что исключает возникновение газообмена через стенки изделия.

Что касается цветов крышек, которыми комплектуются вакуумные пробирки для взятия крови, то их подбор осуществляется в соответствии с составом реагентов в них, а также от типа исследования, для которого предназначаются эти элементы.

Для маркировки крышек используются следующие цвета:

• красный. С его помощью маркируется пробирка вакуумная с активатором свертывания крови. С их помощью осуществляется получение сыворотки, представляющей собой субстанцию, освобожденную от факторов свертывания. Благодаря активатору время свертывания крови, взятой на анализ, существенно сокращается и занимает порядка 10-30 минут. Сам же этот состав не оказывает никакого воздействия на результаты исследования, т.к. он устойчив к воздействию ферментов, которые содержаться в крови;
• зеленый. Этим цветом маркируются пробирки, используемые в процессе проведения анализа плазмы. В этом случае на внутреннюю поверхность наносится антикоагулянт в сухом виде. Благодаря ему предотвращается свертывание плазмы. В качестве антикоагулянта в таких изделиях может использоваться литий-гепарин и натрий-гепарин;
• желтый. С его помощью обозначаются пробирки с активатором свертывания, а также с разделительным гелем, который размещается на дне. Благодаря ему во время центрифугирования образуется надежный барьер, который разделяет сыворотку для исследования и фибрины с клетками. При использовании таких изделий удается получить значительно больший объем сыворотки, чем с помощью обычных пробирок, что обеспечивается благодаря ее более четкому отделению от остальной массы вещества;
• серый. Используется для маркировки пробирок, предназначенных для диабетологии. Благодаря применению антикоагулянта (EDTA либо оксалатов) а также стабилизатора глюкозы обеспечивается сохранение образца крови на протяжении долгого времени. При этом его первоначальное состояние не изменяется. Эти изделия подходят для забора крови с целью проведения исследований, касающихся содержания глюкозы в ней;
• фиолетовый. Это пробирки вакуумные для гематологических исследований с EDTA-K2 или EDTE-K3 (этилендиаминтетраацетат). Благодаря наличию ЭДТА происходит блокирование каскада свертывания крови, а также связывание ионов кальция. Это осуществляется с целью сохранения концентрации во взятой на анализ крови клеточных и внеклеточных компонентов. Эти изделия подходят для анализаторов клеток крови;
• голубой. Так маркируется пробирка вакуумная с цитратом натрия. Используется она в ходе проведения анализов механизмов коагуляции. Раствор цитрата натрия, содержащийся в таком изделии, в зависимости от принятой в конкретной лаборатории практики, может быть 3,2- или 3,8–процентным;
• черный. В таких пробирках также содержится буферный раствор цитрата натрия (3,8%). Они используются в ходе проведения исследований по определению скорости оседания эритроцитов.

источник