Толстая капля в анализе крови

Для проведения данных исследований необходимо следующее оснащение рабочего места:

1. Демонстрационные препараты.
2. Микроскоп.
3. Иммерсионное масло.

С целью обнаружения плазмодиев малярии толстую каплю и мазки изучают с иммерсионной системой микроскопа. Малярийные плазмодии отыскивают в более тонкой части капли (по краю ее), где лучше сохраняется форма паразитов.

В сомнительных случаях изучение малярийных плазмодиев проводят в мазках крови. Паразиты, как правило, обнаруживаются в эритроцитах; их цитоплазма окрашивается в серовато-синий или голубой цвет, а ядро — в оттенки красного цвета.

Возбудитель трехдневной малярии — Plasmodium vivax (рис. 46а, 1 и 46б, 1). Мерозоит имеет овальную или круглую форму, размер его 1-2 ц. Он представляет собой ядро и комочек цитоплазмы.

Рис. 46а. Возбудители малярии человека в мазке крови. 1 — Plasmodium vivax, 2 — Plasmodium malarie, 3 — Plasmodium falciparum

Кольцевидный шизонт по виду напоминает перстень. Он имеет в центре вакуоль, окруженную ободком цитоплазмы, в наиболее тонком месте которой расположено маленькое ядро. Различают мелкие, средние и крупные кольцевидные шизонты.

Амебовидный шизонт имеет одно ядро и цитоплазму, окружающую в молодых шизонтах одну, а во взрослых несколько вакуолей. Имеющиеся в питоплазме паразита ложноножки придают ему причудливую форму. На полюсе, противоположном ядру, цитоплазма шизонта значительно шире и содержит коричневые зернышки пигмента. В участках эритроцитов, свободных от плазмодиев, выявляют обильную, мелкую красноватую зернистость Шюффнера.

Шизонт, подготавливающийся к делению, теряет вакуоли, принимает округлую форму с правильными ровными контурами, пигмент располагается диффузно, либо собирается в кучки, а ядро — ближе к периферии цитоплазмы паразита. Шизонт заполняет почти весь эритроцит, который увеличивается в размере. В свободном от паразита пространстве выявляется зернистость Шюффнера. В делящемся шизонте выявляют два и более ядер в необособленной цитоплазме.

Морула имеет от 14 до 22 мерозоитов, тесно прилегающих друг к другу, пигмент в ней собирается в одну кучку, реже — в две или остается рассеянным.

Женские гаметоциты (макрогаметоциты) крупнее мужских, имеют маленькое плотное ядро, располагающееся эксцентрично. Цитоплазма темно-голубого цвета, в которой равномерно рассеян обильный пигмент темно-коричневого цвета. Мужские гаметоциты (микрогаметоциты) имеют более крупное и рыхлое ядро, располагающееся центрально, в периферических участках цитоплазмы обнаруживается обильный пигмент коричневатого цвета. В свободных от паразита участках эритроцита выявляется зернистость Шюффнера.

Возбудитель четырехдневной малярии — Plasmodium malariae (рис. 46а, 2 и 46б, 2). Имеет те же формы развития, что и возбудитель трехдневной малярии. Встречаются как амебовидные, так и лентовидные формы шизонтов. Молодые формы лентовидных шпзонтов расположены поперек эритроцита в виде узкой полоски. Взрослые лентовидные шизонты находятся в виде ленты, ядро вытянуто в длину и расположено по краю ленты, шизонты занимают почти весь эритроцит. Пигмент сосредоточен на противоположной от ядра стороне.
Морула имеет 6-12 (чаше 8) мерозоитов; располагаются они в виде правильной розетки («маргаритки») вокруг кучки пигмента.

Рис. 46б. Возбудители малярии человека в толстой капле. 1 — Plasmodium vivax, 2 — Plasmodium malarie, 3 — Plasmodium falciparum

Половые формы развития (гаметоциты) округлые; они мельче гаметоцитов возбудителя трехдневной малярии. Возбудитель четырехдневной малярии имеет следую¬щие морфологические особенности: он меньше Plasmodium vivax; эритроциты с находящимися в них паразитами никогда не увеличиваются в размерах.

Возбудитель тропической малярии — Plasmodium рга-ecox falciparum (рис. 46а, 3 и 466, 3). Кольцевидные шизонты мелкие и имеют вид тонких ободков; они занимают 1/6 часть эритроцита.

Амебовидные шизонты имеют одну-две широкие ложноножки, пигмент располагается в одном месте в виде компактной кучки темно-коричневого цвета. Гаметоциты имеют характерную форму полулуния.

В середине возбудителя располагается ядро. Женские гаметоциты имеют компактное ядро, окруженное пигментом в виде зерен; цитоплазма окрашивается по Романовскому в синий цвет. У мужских гаметоцитов ядро более крупное и рыхлое, цитоплазма светло-голубого цвета, иногда виден ободок эритроцита. В крови больного обнаруживают кольца и гаметоциты раздельно или вместе. Эритроциты с находящимися в них плазмодиями не увеличены.

С целью обнаружения спирохет возвратного тифа препараты крови окрашивают по Романовскому или разведенным (1:4, 1:5) фуксином Циля. Чтобы окрасить мазки фуксином Циля, их фиксируют, наливают на 1-2 минуты разведенный фуксин Циля, сливают краску и смывают водой. Мазок высушивают и исследуют под микроскопом с иммерсией.

Спирохеты возвратного тифа (рис. 47) представляют собой штопорообразно извитые тонкие нити. По Романовскому окрашиваются в фиолетовый цвет, разведенным фуксином — в красный.

Рис. 47. Спирохета возвратного тифа в крови

Степень полихромазии устанавливают в толстой капле, окрашенной по Романовскому. Препараты изучают с иммерсионной системой микроскопа. В нескольких полях зрения подсчитывают количество синевато-фполетовых сеточек (рис. 48). По количеству сеточек, содержащихся в каждом поле зрения, судят о степени полихромазии. Если при нормальном количестве эритроцитов в 1 мм3 крови насчитывают до 10 сеточек в поле зрения, то полихромазию обозначают одним полюсом (Р + ), при обнаружении до 20 сеточек ее обозначают двумя полюсами (Р++), при количестве сеточек до 30 — тремя полюсами (Р+ + +) и в случае большого количества сеточек — четырьмя плюсами (Р + + + +).

Рис. 48. Полихроматофилия и базофильная зернистость в толстой капле. а — сеточка остатки полихроматофилии эритроцитов

источник

15 марта 2017, 10:47 Эксперт статьи: Блинова Дарья Дмитриевна 0 6,768

Малярия — одно из опаснейших паразитарных заболеваний на планете, ежегодно поражающее сотни миллионов человек. Люди должны понимать, как проводятся исследования на малярию, как распознать симптомы и когда обратиться за лечением. Ежегодно из сотен миллионов заразившихся сотни тысяч умирают, несмотря на то, что существует лекарство, заболевание поддается лечению.

Важно знать! Даже «запущенных» паразитов можно вывести дома, без операций и больниц при помощи узнать подробности >>>

Малярия — опасное и очень заразное паразитарное заболевание, легко передающееся через укусы комаров рода анофелис и через кровь, например, при переливании. Недуг сопровождается повторяющимися приступами лихорадки, наиболее широко распространен в странах с влажным и жарким климатом. После того как паразит попал в тело, он начинает размножаться, поражает клетки, разрушает их, лавинообразно наращивая свое присутствие. Посему решившие посетить жаркие тропические страны должны проявлять повышенную осторожность, и при наименьших подозрениях сдать анализ крови. Заражению особенно подвержены:

ЭТО действительно ВАЖНО! Дворниченко В.: «Я могу порекомендовать лишь одно средство для быстрого выведения паразитов и микробов из организма» УЗНАТЬ.

Всего различают четыре различных вида малярии и четыре типа плазмодий, ее вызывающие:

1. Plasmodium falciparum, что провоцирует тропическую лихорадку — одну из самих опасных и нуждающихся в срочном лечении разновидностей заболевания.
2. Plasmodium vivax — провоцирует появление трехдневной малярии.
3. Plasmodium malariae — является источником четырехдневной лихорадки.
4. Plasmodium ovale — главная причина малярии овале (недуга вроде трехдневной).

Вернуться к оглавлению

Главными (и самим очевидными) симптомами, проявляющимся при малярии, являются повторяющиеся с равными промежутками времени приступы лихорадки, повышение температуры и озноб. Длятся они несколько часов и сопровождаются такими признаками:

А вы знали? Паразиты очень опасны — доказано что эти безобидные существа провоцируют рак! Мало кто знает, но избавиться от него очень просто — возьмите читать далее.

• повышение температуры до 41 °C;
• дрожь;
• проявления кашля;
• повышенная потливость (обычно сопровождает окончание приступа и снижение температуры).

Кроме того приступы могут сопровождаться такими явлениями как:

• расстройства пищеварительной системы,
• боль в разных частях тела, мышцах, голове,
• повышенная утомляемость,
• желтуха.

Хотя обычно симптомы при малярии проявляются спустя несколько недель после заражения, некоторые возбудители могут месяцами жить в организме незаметно. Во время острых приступов наблюдается тенденция к изменению состава крови, может возникать анемия, в особенности при тропической лихорадке. Возможно увеличение внутренних органов, например селезенки, но точную оценку может дать лишь врач.

При обнаружении вышеперечисленных симптомов необходимо срочно провести диагностику малярии. Единственным основным способом диагностирования заболевания до сих пор остается непосредственное обнаружение плазмодиев в крови, которая берется у больного во время приступов. Самые распространенные способы анализа включают взятие крови на малярию методом толстой капли и мазка. Обнаружив плазмодии, можно определить, серьезно ли болен человек, каким именно штаммом. Проводятся также общее исследование крови, обследование мочи, биохимические исследования на содержание билирубина или уровень альбумина.

Обращаем внимание! Умоляем, не затягивайте с выведением паразитов, потом будет только хуже Чистать историю Дворниченко Виктории >>

Поскольку паразит влияет непосредственно на кровь, из-за лихорадки в ее составе наблюдаются различные изменения. Таким образом, показано проведение общего обследования крови для выявления малярии. Лейкоцитоз, анемия, тромбоцитопения — вот лишь немногие возможные последствия болезни.

• Сравнение уровня гемоглобина, а также эритроцитов — плазмодии влияют напрямую на кровяные тельца, разрушая их во время болезни.
• Оценка показания уменьшения тромбоцитов — наблюдается у подавляющего большинства больных, является одним их характерных признаков малярии.
• Проверка лимфоцитов — их уровень тоже может меняться во время болезни.

Вернуться к оглавлению

Можно также выделить ряд других анализов крови, что могут обнаружить малярию:

• Метод выявления антител к малярии — позволяет с помощью введения в организм плазмодия отслеживать реакцию иммунитета на него. Если итогом будет негативная реакция, это позволит исключить диагноз.
• Метод выявления белков плазмодия является одним из новейших возможных анализов, позволяющих определять составные молекулы возбудителя. При сравнительной быстроте способ обладает неплохой точностью, а также небольшими финансовыми затратами для пациента.
• Метод ПЦР, или полимеразная цепная реакция — непосредственно определяет генетический материал малярийного плазмодия. Проводя такой анализ крови можно определить точное число возбудителей, даже если оно небольшое. К сожалению, одним из недостатков является высокая стоимость процедуры.

Вернуться к оглавлению

Анализ мазка и толстой капли крови являются наиболее дешевыми и простыми методами обнаружения малярии. В то же время они требуют внимательности и значительных трудозатрат, а также исполнения ряда рекомендаций. При необходимости обследовать более одного пациента необходимо подготовить инструментарий заранее. При тонком мазке кровь берут из безымянного либо среднего пальца на левой руке. При изготовлении мазка палец удерживается ранкой кверху. Мазок крови — небольшой, его располагают в центре стекла.

Толстая капля отличается от мазка возможностью исследовать больший объем материала. Если обычные мазки крови— тоненькие, то капля, наносимая на стекло этим методом, имеет размер с монету. В итоге, исследуется в десятки раз больший объем крови. В дальнейшем каплю подсушивают, и после окрашивания краской Романовского, промывания — исследуют. Лучше, если анализы будет проводить опытный исследователь, ведь неподготовленный может принять за паразитов различные загрязнения или образования: бляшки Биццоцеро, обломки лейкоцитов, различные микроорганизмы, включая грибок или простейших, случайно попавших на образец.

Судя по тому, что вы сейчас читаете эти строки — победа в борьбе с паразитами пока не на вашей стороне.

И вы уже думали о хирургическом вмешательстве? Оно и понятно, ведь внутренний организм у вас один, а его правильное функционирование — залог здоровья и хорошего самочувствия. Плохое настроение, отсутствие аппетита, бессонница, дисфункция иммунной системы, дисбактериоз кишечника и боль в животе. Все эти симптомы знакомы вам не понаслышке.

Но возможно правильнее лечить не следствие, а причину? Рекомендуем прочитать историю Дворниченко Виктории, как не навредив себе можно избавится от паразитов. Читать статью >>

источник

Лабораторная диагностика малярии. Обнаружение плазмодиев в толстой капле и мазке крови. Морфология малярийных паразитов в мазке и толстой капле.

Паразитологический диагноз малярии основан на обнаружении паразитов в окрашенных препаратах (толстая капля и мазок) крови. Паразиты могут присутствовать в крови не только во время лихорадочных приступов и промежутков между присту­пами, следующими один за другим, но и в течение длительных периодов, на протяжении которых не наблюдается повышения температуры.

Наличие паразитов в крови при отсутствии лихорадочных при­ступов называется паразитоносительством.

Такие люди зараз­ны для комаров. При массовых обследованиях следует брать кровь вне зависимости от наличия приступов. Техника приготовления и окраски мазка — мазок готовят как обычно. После того как мазок высохнет, его фиксируют в 96%-ном этиловом спирте 15 мин или в метиловом спирте в течение 3 мин. Высушенные после фиксации мазки окраши­вают краской Романовского, разведенной дистиллированной водой, ркрашивают в течение 30—50 мин, в зависимости от качества краски. После окрашивания препарат споласкивают водой и высушивают на воздухе.

Техника приготовления и окраски толстой капли. На стекле при­готовляют мазок, а потом на еще влажный мазок дают упасть капле крови. Капля равномерно растекается, образуя круг. По­сле того как капля высохнет, на мазке простым карандашом делают соответствующую отметку. Препарат без фиксации ок­рашивают. Затем осторожно (чтобы не смыть каплю) препарат споласкивают водопроводной водой и высушивают. Мазки и толстые капли микроскопируют имммерсионной системой.

Мерозоит, внедрившись в эритроцит, превращается в молодой шизонт, имеющий вид кольца. Затем паразит, увеличиваясь, принимает амебовидную форму, при этом сохраняется просвет (вакуоль) между ядром паразита и основной частью его цитоплазмы. В цитоплазме паразита появляются зерна пигмента. Амебовид­ный шизонт заполняет значительную часть эритроцита, затем начинает округляться, вакуоль исчезает (стадия подготовки к делению), пигмент начинает собираться в отдельные пучки. Для плазмодия малярии шизонты — лентовидные формы. Ядро паразита начинает делиться, а затем цитоплазма паразита де­лится так, что к каждому дочернему ядру прилегает отдельный комочек цитоплазмы (меруляция). В результате получается кучка мерозоитов — морула. Пигмент на стадии морулы собран в одну компактную кучу.

У пл. фальсипарум скучивание пигмента наступает еще до пол­ного формирования морулы. Мерозоиты расходятся, попадают в плазму крови, часть из них погибает, часть внедряется в но­вые эритроциты.

Форма гамонтов у всех малярийных паразитов, за исключением тропической малярии, круглая или слегка оваль­ная. При тропической малярии плазмодий имеет вытянутые гамонты с закругленными концами. Мужские и женские гамон­ты различаются между собой по величине и структуре ядра (интенсивности окраски цитоплазмы). Женские гамонты — яд­ро небольшое, компактное; цитоплазма красится в интенсив­ный голубой цвет. Мужские гамонты — ядро большое, цито­плазма красится бледно, часто зона вокруг ядра принимает фиолетовый оттенок.

В толстой капле, поскольку ее окрашивают в нефиксированном виде, эритроциты выщелачиваются, а малярийные паразиты претер­певают значительную деформацию. При четырехдневной и тропической малярии пораженные эритроциты в толстой капле выщелачиваются полностью, так же как и нормальные. При трехдневной малярии в толстой капле строма эритроцитов со­храняется и диагностика малярийного паразита по толстой ка­пле облегчается. Кольца в толстой капле обычно смяты, вытя­нуты в виде восклицательного знака, иногда разорваны в виде запятой. Амебовидные шизонты часто бывают уплотненными, лентовидные шизонты четырехдневной малярии в толстой ка­пле округляются и неотличимы от амебовидных шизонтов. Морулы распознаются в толстой капле легко. Цитоплазма паразитов в результате воздействия химиотерапев-тических препаратов окрашивается слабее, приобретает стекло­видный оттенок, становится вакуолизированной, распадается на отдельные комочки, ядро становится рыхлым или, наоборот, более компактным. Иногда пигмент собирается в кучки, вы­талкивает из паразита. В толстых каплях распознавание таких подвергшихся деформации паразитов становится более труд­ным, а иногда и невозможным.

Серологическая диагностика малярии включает иммунофер-ментную агглютинацию, реакцию непрямой гемагглютинации и др., которые имеют наибольшее значение в неэндемичных районах.

В мазках крови и толстых каплях малярийные паразиты могут быть приняты за мерозоит, скопление бляшек может симули­ровать морулу. В препаратах, окрашенных по Романовскому, бляшки отличаются от мерозоитов по следующим признакам: мерозоит состоит из красного ядра и голубой цитоплазмы. Фон бляшки в мазке иногда окрашивается в бледно-голубой цвет, однако ее зернистость принимает красный цвет более светлого оттенка, чем у ядер мерозоитов.

В препаратах могут быть обнаружены также посторонние мик­роорганизмы, по форме напоминающие малярийных паразитов: грибки, одноклеточные водоросли, свободноживущие простей­шие. Некоторые одноклеточные формы с компактным ядром в центре, окрашивающимся по Романовскому в ярко-красный цвет, симулируют гамонты тропической малярии. Их легко от-, лйчить по отсутствию пигмента. Свободноживущие простей­шие с одним или несколькими жгутами могут быть приняты за стадию образования мужских гамет малярийного паразита.

Комаров вскрывают и определяют наличие ооцист на желудке и спорозоитов в слюнных железах. Ооцисты видны в нативных препаратах.

Незрелые ооцисты выглядят в таких препаратах как круглые гомогенные образования с пигментом, состоящим из несколь­ких глыбок.

В зрелых ооцистах видны хорошо сформировавшиеся споро-зоиты, тесно прилегающие друг к другу. Ряды спорозоитов в виде частокола располагаются по отношению друг к другу под разными углами, в результате чего ооциста приобретает моза­ичный вид, при надавливании покровного стекла из ооцист выходят спорозоиты.

В слюнных железах спорозоиты расположены рядами перпен­дикулярно к протоку слюнных желез, а также в виде конгло­мератов. В секрете слюнных желез спорозоиты попадают в ок­ружающую жидкость, в которой хорошо заметны вследствие их подвижности.

источник

— установить доверительные отношения с пациентом.

— Объяснить цель и ход процедуры.

— Обработать кожу 4-го пальца руки спиртом.

— Проколоть последнюю фалангу 4-го пальца индивидуальным пером-копьем.

— Поместить перо в лоток для сброса.

— Снять первую каплю крови сухим ватным шариком.

— Поместить ватный шарик в емкость с дезраствором.

— Повернуть палец проколом вниз.

— Прикоснуться предметным стеклом ко второй капле крови.

— Приложить ватный шарик к месту прокола.

— Размазать каплю крови на предметном стекле в диск диаметром в 10-15 мм углом второго предметного стекла.

— Обвести толстую каплю стеклографом с обратной стороны стекла.

— Указать регистрационный номер с обратной стороны стекла.

— Высушить препарат в воздухе в горизонтальном положении, предохраняя от пыли и мух.

— Поместить толстую каплю между двумя стеклами, используя спички и круглую резинку.

— Оформить направление в паразитологическую лабораторию.

— Поместить препарат в конверт и отправить немедленно в лабораторию.

— Провести дезинфекцию лотка, пинцета.

Приготовление толстой капли. Диа­метр её должен быть около 10 мм, размеры пря­моугольной капли — примерно 10— 15 мм. Кап­ля не должна быть слишком толстой или слишком тонкой. Рекомендуется делать 2 кап­ли на одном стекле на случай, если одна из них окажется испорченной. Существует несколько способов приготовления толстой капли:

а) к выступившей из прокола капле крови диаметром 3—4 мм прикасаются предметным стеклом, избегая касания поверхности кожи, и распределяют кровь по стеклу в кружок одним движением;

б) капельку крови диаметром 3— 4 мм пере­носят на предметное стекло, прикоснувшись к нему, затем углом другого стекла или иглой рас­пределяют кровь кружок или квадрат;

в) на предметном стекле сначала готовят мазок немного толще обычного, затем, пока он ещё не высох, на него наносят две капли крови, которые по влажному мазку растекаются правильными дисками.

Необходимо, чтобы толщина капли не была чрезмерной: через высохшую каплю можно различать печатный текст или цифры на ци­ферблате. Следует соблюдать правила высуши­вания толстых капель: высыхать они должны постепенно, их нужно держать вдали от нагре­вательных приборов или прямых солнечных лучей.

Недопустимо делать маркировки на поверхности толстой капли.

8.ТЕХНИКА ПРОВЕДЕНИЯ СПИННОМОЗГОВОЙ ПУНКЦИИ

Цель:диагностическая (для исследования цереброспинальной жидкости) и лечебная (для введения антибиотиков и др.).

Приготовьте:шприц с иглами (5 мл, 10 мл, 20 мл), пункционную иглу с мандреном, монометрическую трубку, стерильные пинцеты, 70% спирт, раствор йода, 0,5-1% раствор новокаина, стерильные салфетки и ватные шарики, лейкопластырь, питательную среду, пробирки, перчатки.

— Проинформируйте больного о ходе предстоящей процедуры и получите согласие.

— Объясните ему, что пункцию проводит врач.

— Приведите пациента в процедурный кабинет или проводите манипуляцию на месте.

— Уложите пациента на правый бок ближе к краю кушетки (кровати), наклоните голову вперед к груди, согните ноги максимально в коленях и подтяните к животу (спина должна выгибаться дугой).

— Просуньте левую руку под бок пациента вниз ладонью, захватывая край кушетки (кровати), правой рукой удерживайте ноги пациента (для фиксации приданного спине положения). Во время пункции другой помощник фиксирует голову пациента.

— Обработайте раствором йода, затем спиртом кожу на месте прокола.

— Наберите в шприц 1% раствор новокаина и подайте врачу для проведения анестезии.

— Помогите врачу: подайте ватные шарики, медикаменты и инструментарий, пробирки.

— Возьмите спинномозговую жидкость в количестве 10 мл в пробирку, напишите направление и отправьте в клиническую лабораторию.

— Посейте 2-5 мл спинномозговой жидкости в пробирку с питательной средой, не касаясь руками краев канюли, иглы и пробирки (ватную пробку от пробирки держите на весу за ее наружную часть). Напишите направление и отправьте в бактериологическую лабораторию.

— Положите стерильную салфетку на место пункции, заклейте лейкопластырем.

— Положите пациента на живот и увезите на каталке в палату.

— Уложите пациента на живот без подушки на кровать на 2 часа.

— Наблюдайте за состоянием больного в течение суток.

Примечание: прокол делают между III и IV поясничными позвонками.

9. ТЕХНИКА ПОСТАНОВКИ ВНУТРИКОЖНОЙ

Приготовьте:стерильныйшприц (1 мм), 1-1,5 см иглы,

спирт, стерильные ватные шарики, диагностикум (аллерген), лоток, резиновые перчатки, маску, миллиметровую линейку.

— объясните пациенту цель этой процедуры.

— Посадите или уложите пациента на кушетку.

— Наденьте перчатки и маску.

— Прочтите внимательно название диагностикума (ампулу), срок годности, дозу.

— Обработайте шейку ампулы ватным шариком, смоченным спиртом двукратно и вскройте ее.

— Вскройте пакет и соберите шприц.

— Наберите из ампулы нужную дозу диагностикума 0,2-0,3 мл, замените иглу, выпустите воздух.

— Наденьте колпачок на иглу.

— Протрите дважды кожу средней трети внутренней (передней) поверхности предплечья шариком, смоченным спиртом, в одном направлении сверху вниз 2-3 раза.

— Натяните пальцами левой руки кожу в месте инъекции с тыльной стороны (снизу).

— Возьмите шприц с иглой срезом вверх в правую руку (указательный палец на канюле иглы, остальные на цилиндре).

— Держите иглу параллельно поверхности кожи, введите конец иглы строго внутрикожно срезом вверх в кожу до скрытия отверстия (кончик иглы должен просвечивать в толще кожи).

— Не убирая правой руки, обхватите вторым и третьим пальцами левой руки ободок цилиндра, первым пальцем надавливая на поршень, введите 0,1 мл раствора диагностикума (аллергена).

— На месте инъекции образуется папула (плотный на ощупь бугорок в виде «лимонной корочки».

— Извлеките иглу, не прижимая место инъекции, слегка промокните ватным шариком, смоченным спиртом.

— Шприц с иглой, использованные ватные шарики поместите в дезраствор.

— Объясните пациенту, что нам место инъекции не должна попадать вода в течение 48 часов.

— Результат реакции читайте через 24 и 48 часов, измеряя миллиметровой линейкой образовавшуюся гиперемию и отек вдоль и поперек на месте введения диагностикума.

— Результат реакции занесите в историю болезни или на температурный лист.

10. ТИПЫ ПРОТИВОЧУМНОГО КОСТЮМА

Первый тип или полный противочумный костюмсо­стоит из: пижамы или комбинезона, большой косынки (ка­пюшона) противочумного халата, ватно-марлевой маски, очков-консервов, резиновых перчаток, носков (чулок), са­пог резиновых, полотенца.

Для вскрытия трупа необходимо дополнительные иметь вторую пару перчаток, клеенчатый фартук, нарукавники.

Противочумный костюм первого типа применяется при:

— работе в госпитале, провизорном госпитале и др. с боль­ными легочной или септическими формами чумы;

— до установления окончательного диагноза у больных ­
бубонной и кожной формами чумы и до получения отрица-­
тельного результата бактериологического исследования;

— больных геморрагическими вирусными лихорадками (ГВЛ);

— работе в изоляторе для контактных с больными легоч­-
ной формой чумы и больных ГВЛ;

— проведении текущей и заключительной дезинфекции (дезинсекции и дератизации) в очаге заболеваний легоч­ной формой чумы;

— вскрытии трупа погибшего от чумы;

— проведении подворных обходов;

— заборе материала для лабораторных исследований от
больных с подозрением на чуму, геморрагические лихорадки.

Рис. 46.Противочумный костюм первого типа

Второй тип противочумного костюма состоит: из: пи­жамы или комбинезона, большой косынки ( капюшона), противочумного халата, ватно-марлевой маски, резиновых перчаток, носков (чулок) , резиновых сапог, полотенца.

Противочумный костюм второго типа применяется при:

— работе в госпитале, провизорном госпитале и др. с боль-­
ными оспой обезьян;

— проведении текущей и заключительной дезинфекции в
очаге бубонной формой чумы, холеры, оспы обезьян;

— вскрытии трупа погибшей от холеры, оспы обезьяны;

— заборе материала от больных с подозрением на оспу обезьян.

Третий тип противочумного костюма состоитиз: пи­жамы, противочумного халата, большой косынки, резино­вых перчаток, носков, глубоких калош и полотенца.

Противочумный костюм третьего типа применяется при работе в госпитале, провизорном госпитале с больны­ми бубонной или кожной формой чумы, получающими спе­цифическое лечение.

Противочумный костюм четвертого типа состоит из: пижамы, медицинского халата, шапочки или марлевой косынки, носов, тапочек (туфель).

Противочумный костюм четвертого типа применя­ется при работе в госпитале, провизорном госпитале с больными холерой и заборе материала для лабораторных исследований от больных с подозрением на холеру (дополнительно наде­вают резиновые перчатки). При проведении туалета больного надевают резиновые перчатки, при обработке выделений – маску.

Порядок надевания противочумного костюма.Надевать предметы костюма необходимо не спеша, в опреде­ленной их последовательности, с тем, чтобы во время работы не поправлять их.

Сначала надевают комбинезон или пижаму, носки, тапочки, сапоги резиновые или кожаные. Затем — большую косынку или капюшон (которые должны закрывать волосы, лоб, уши и шею), потом противочумный халат. Те­семки у ворота, пояса халата, фартука завязывают спереди на левой стороне обязательно петлей, после чего завязывают тесемки на рукавах. Ватно-марлевую маску надевают на лицо так, чтобы были закрыты рот и нос. Верхний край маски до­лжен находиться на нижней части орбит, а нижний — слегка заходит на подбородок. Верхние тесемки завязывают петлей на затылке, а нижние на темени (по типу пращевидной по­вязки). По обе стороны носа, в местах, где маска недостаточно плотно прилегает к лицу, закладывают комочки ваты. Очки должны быть хорошо пригнаны, свободное место на переноси­це закладывают ватным тампоном, стекла перед надеванием натирают специальным карандашом или сухим кусочком мы­ла, чтобы предупредить их запотевание. После очков надевают резиновые перчатки, предварительно проверенные на цело­стность. Затем на пояс халата с правой стороны закладывают полотенце.

При вскрытии и захоронении трупа человека, погибшего от чумы, дополнительно к противочумному костюму первого типа надевают: клеенчатый фартук и нарукавники, затем вторую пару резиновых перчаток (анатомические), после чего за пояс фартука с правой стороны закладывают полотенце.

Порядок снятия противочумного костюма. Противочумный костюм снимают и обеззараживают после работы. Предметы костюма снимают в строго установленном порядке, не торопясь. Все предметы костюма по мере их снятия полностью погружают в бак с дезраствором (5 % раствор лизола, карбо­ловой кислоты или хлорамина) или складывают в большие биксы для обеззараживания автоклавированием; для направ­ления в дезкамеру помещают в камерные мешки. Биксы и камерные мешки снаружи обильно обмывают дезраствором, Костюм перед снятием слегка увлажняют дезраствором. Затем тщательно моют в дезрастворе руки в резиновых перчатках в течение 1—3 мин. После снятия каждой части костюма руки в перчатках погружают в дезраствор. Обмывают клеенчатый фартуки нарукавники ватой (ветошью), смоченной одним из вышеуказанных растворов; сапоги и калоши обтирают сверху вниз (для каждой калоши или сапога берут отдельный кусок ваты).

Снимают полотенце медленно, без рывка, и погружают в дезраствор. Затем снимают клеенчатый фартук, свертывая наружной стороной внутрь, и вторую пару перчаток (анатомических). Очки снимают, не касаясь их внутренней поверхности, двумя руками оттягивают вперед, вверх и назад. Погружа­ют в 70% спирт на 20 мин. Фонендоскоп снимают, не касаясь скрытых частей кожи, и погружают также на 20 мин в 70 % спирт. С особой осторожностью снимают ватно-марлевую повязку. Не касаясь лица ее наружной стороной, маску свертывают внутрь с конца ее завязок. Развязывают завязки ворота, пояса халата, опускают верхний край перчаток, развязывают тесемки рукавов и снимают халат. Снимают косынку, собирая каждый конец ее наружу трубочкой, а затем концы собирают в одну руку на затылке. Наконец, снимают перчатки, осто­рожно проверяют их целостность, набирая в них дезраствор (но не воздухом). Сапоги или калоши еще раз обмывают в баке с дезраствором и снимают в чистом помещении. После снятия костюма моют руки теплой водой с мылом. После рабо­ты рекомендуется принять душ.

11. ПЕРВИЧНЫЕ ПРОТИВОЭПИДЕМИЧЕСКИЕ МЕРОПРИЯТИЯ ПРИ ВЫЯВЛЕНИИ БОЛЬНОГО ООИ

На приеме в поликлинике (медпункте).

Действия медицинского работника выявившего больного:

Принимаются меры к изоляции больного по месту его
выявления (дверь в кабинет закрывается, с наружной
стороны по получению сигнала выставляется пост) до
его госпитализации в специализированное медицинское
учреждение.

Медицинский работник, не выходя из помещения, где
выявлен больной:

А — по телефону или через нарочного (не открывая дверь), не бывшего в контакте с больным, извещает заведую­щего поликлиникой (главного врача) о выявленном больном и его состоянии;

Б — запрашивает соответствующие медикаменты, укладки защитной

одежды, средства личной профилактики.

— Запрещается выносить вещи из кабинета, передавать амбулаторные карты в регистратуру до проведения зак­лючительной дезинфекции.

— В кабинете, где выявлен больной, закрывают двери и окна, отключают вентиляцию. Вентиляционные отверстия­ заклеивают лейкопластырем (кроме заболевания холерой).

— До получения защитной одежды медицинский работ­ник при подозрении: на чуму, ГВЛ, оспу обезьян должен временно закрыть нос и рот полотенцем или маской, сделанной из подручных материалов (ваты, марли, бинта).

— Перед надеванием защитной одежды открытые части тела обрабатывают 0,5-1,0% раствором хлорамина или 70 0 спиртом, а слизистые оболочки – раствором стрептомицина (при чуме) или слабым раствором марганцево-кислого калия (при ГВЛ и оспе обезьян). При выявлении больного с подозрением на холеру строго соблюдать меры личной профилактики ОКИ.

— Защитную одежду (противочумный костюм соответствующего типа) одевают, не снимая собственный халат.

— При выявлении больного чумой (ГВЛ, оспой обезьян) медицинский работник не выходит из кабинета (при выявлении больного холерой врач или сестра при необходимости могут выйти из кабинета, предварительно вымыв руки и сняв медицинский халат), остается с ним до прибытия эпидбригады.

— При выявлении больного с подозрением на холеру и получении укладки проводится забор материала для бактериологических исследований. Выделения (рвотные массы, испражнения) собирают в отдельные емкости.

— В кабинете, где выявлен больной, проводится текущая дезинфекция.

12. ИНСТРУКЦИЯ ПО ЗАБОРУ МАТЕРИАЛА ДЛЯ

ЛАБОРАТОРНОГО ИССЛЕДОВАНИЯ ПРИ

— испражнения и рвотные массы необходимо брать не­медленно при выявлении больного и обязательно до ле­чения антибиотиками;

— материал можно брать из чистой емкости (таз, лоток, судно. ),

не имеющей даже следов дезсредства или кислоты;

— при отсутствии испражнений материал забираем резиновым катетером, который вводим на глубину 6—8 см прямую кишку. Массируя кишечник через катетер, получают в стерильную банку содержимое кишечника.

Выделения забирают в объеме 10—20 мл из емкости стек­лянной трубкой с резиновой грушей, переносят в отдель­ные банки с притертыми непромокаемыми пробками.

УПАКОВКА И ДОСТАВКА МАТЕРИАЛА НА ХОЛЕРУ

1. Поместить выделения больного в стерильную лабораторную посуду.

2. Плотно закрыть посуду притертыми пробками (стеклянными, резиновыми, корковыми) или привинчиваю­щимися крышками.

3. Обработать каждую банку дезинфекционным раствором или обернуть ветошью, смоченной дезраствором.

4. Поместить каждую банку в отдельный полиэтиленовый пакет, промаркировать его; запаять пакет.

5. Поместить все взятые пробы в бикс или металлический контейнер.

6. Опечатать контейнер или бикс, указать «Верх», «Низ», «Осторожно».

7. Приложить к контейнеру сопроводительный документ, согласно маркировке.

— применение антибиотиков (дата, доза);

— ФИО медицинского работника, должность медицинского работника, забравшего материал.

Материал на холеру в лабораторию доставляет нароч­ный.

13. ТЕХНИКА ВЗЯТИЯ КРОВИ НА СЕРОЛОГИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

—стерильные лоток, пробирку с ватной пробкой, ватные шарики; одноразовый шприц на 10 мл и иглу для венепункции, 70% спирт, штатив для пробирок, лоток для сброса, венозный жгут, валик, клеенку салфетку, емкость с дезраствором, бланк-направление, ручку, стеклограф для маркировки пробирки.

— объясните пациенту ход процедуры и получите согласие.

— Вымойте руки с мылом, осушите, наденьте маску и перчатки.

— Собрать шприц, надуть иглу, выпустить воздух из шприца, положить шприц в стерильный лоток.

— Подложить под локоть пациента клеенку и валик.

— Положить салфетку на плечо.

— Наложить венозный жгут выше локтевого сгиба на плечо.

— Попросить пациента несколько раз сжать и разжать кулак.

— Обработать кожу локтевого сгиба спиртом двукратно.

— Зафиксировать вену левой рукой.

— Оттянуть поршень шприца на себя.

— Набрать с помощью шприца или самотеком 3-8 мл крови.

— Приложить ватный тампон со спиртом к месту укола.

— Согнуть руку в локтевом сгибе на 5-7 минут.

— Поместить кровь в стерильную пробирку.

— Закрыть пробирку ватной пробкой.

— Поместить пробирку в штатив;

— Установить штатив с металлический контейнер (бикс).

— Оформить направление в баклабораторию.

— Отправить кровь в лабораторию с нарочным.

— Взять тампон у пациента, убедившись, что кровь не выделяется из места пункции вены.

— Поместить тампон в емкость с дезраствором.

— Провести дезинфекцию использованного инструментария и оснащения.

НА МЕТОД «КАШЛЕВЫХ ПЛАСТИНОК»

стерильную чашку Петри с питательной средой КУА;

грелку или сумку «термос», бланк-направление, ручку, стеклограф.

— объясните пациенту ход процедуры и получите согласие.

— Вымойте руки с мылом, осушите, наденьте маску и перчатки.

— Поднести открытую чашку Петри со средой ко рту пациента во время кашля на расстоянии 8-10 см.

— Подержать чашку Петри в открытом состоянии на протяжении нескольких кашлевых толчков (несколько секунд).

— Пронумеровать чашку Петри.

— Отправить чашку Петри в баклабораторию (зимой на теплой грелке или в сумке «термосе»).

метод «кашлевых пластинок» используют только в случае спазматического кашля параллельно с методом взятия носоглоточной слизи для бактериологического исследования;

при взятии материала вечером или ночью, его оставляют в термостате до утра при 37°С.

СЛОВАРЬ МЕДИЦИНСКИХ ТЕРМИНОВ

1. Амиреев С.А. Эпидемиология.- Алматы, 2002.- 690 с.

2. Балаян М.С., Михайлов М.И. Вирусные гепатиты (энциклопедический словарь). — М.: Амипресс, 1999. – 302 с.

3. Белозеров Е. С., Продолюбов Н, В. Брюшной тиф и паратифы. Инфекци­онные и паразитарные болезни. Л.: Медицина, 1978.

4. Белозеров Е.С. Бруцеллез.- М.: Медицина, 1985. -183 с.

5. Белозеров Е.С., Буланьков Ю.И. Терапия вирусных инфекций.-Элиста, 2007. – 104 с.

6. Белозеров Е.С., Буланьков Ю.И., Гуляев Н.И. ВИЧ-инфекция.-СПб.: Информмед, 2012. 172 с.

7. Беляков В.Д., Яфаев Р.Х. Эпидемиология. – М.: Медицина, 89. С.247-294 с.

8. Васильев Б.Я., Васильева Р.И., Лобзин Ю.В. Острые кишечные заболевания. – СПБ, 2000. – 267 с.

9. Змушко Е.И., Белозеров Е.С. ВИЧ-инфекция. – СПб., Питер, 2000. – 320 с.

10. Белоусова А.К., Дунайцева В.Н. Инфекционные болезни для фельдшера. — Ростов-на –Дону: «Феникс», 2002.- 319 с.

11. Белоусова А.К.,Сербина Л.А. Практические навыки и умения для медсестры инфекционного стационара. — Ростов-на–Дону: «Феникс», 2003.- 128 с.

12. Берман Р.Е., Воган В.Н. Педиатрия. Болезни органов дыхания и сер­дечно-сосудистой системы / Книга 4. — М.: Медицина, 1988. -С. 160-164, 173-176.

13. Булкина И. Г., Покровский В. И. Инфекционные болезни с ухо­дом за больными и основами эпидемиологии. Учебник для учащихся отделений медицинских сестер медицинских учи­лищ. Изд. 4-е. М., 1975. – 320 с.

14. Блюгер А.Ф., Новицкий И.Н. Вирусные гепатиты. Рига, 1988.- 414 с.

15. Болезни нервной системы: Руководство для врачей: В 2-х т. / Под ред. Н.Н. Яхно, Д.Р. Штульмана, П.В. Мельничука. — М.: Медицина. 1995. –654 с.

16. Богомолов Б.П. Инфекционные болезни: неотложная диагностика, лечение, профилактика. — Москва, 2007. – 653с.

17. Бондарев Я.С., ТуйновВ.А. и др. Сибирская язва в Донецкой области //Эпидемиология и инфекционные болезни. — 1998. — №2. -С. 16.

18. Борисова М.А., Зарицкий А.М., Цеюков С.П. Брюшной тиф и паратифы А и В. — Киев: Здоровье, 1990.

19. Ботулизм: Патогенез. Клиника. Лечение /Под ред. Г.М. Шубы. –

Сара­тов: Изд-во Саратовского университета, 1991. -284 с.

20. Букринская А.Г., Грачева Н.М., Васильева В.И. Ротавирусная инфекция. — М., 1989. –224 с.

21. Бунин К. В. Инфекционные болезни. Учебник для медицинских

училищ. Изд. 6-е. — М., 1984. – 392 с.

22. Васильев В.С., Комар В.И., Цыркунов В.М. Практика инфекциониста — Минск: Вышэйшая школа, 1993. — С. 176-178.

23. Ветряная оспа в соврменных условиях// Метод.пособие под рук.акад.Ю.В.Лобзина.- СПб, 2012.- 30 с.

24. Внутренние болезни: В 10 кн. Кн. 4. / Пер. с англ. Под ред. Е. Браун-вальда с соавт. — М.: Медицина, 1994.- С. 129-135.

25. Гавришева Н.А., Антонова Т.В. Инфекционный процесс (клинические и патофизиологические аспекты). -СПб,1999.–255 с.

26. Геппе Н.А., Белоусова Н.А., Мельникова Е.В. и др. II Эпидемиология и инфекционные болезни. 1997. — № 1. -С. 23-26.

27. Гранитов В.М. ВИЧ-инфекция/СПИД, СПИД-ассоциированные инфекции и инвазии.-Барнаул,2011.- 288 с.

28. Гусель В.А., Маркова И.В. Справочник педиатра по клинической

фар­макологии. Л.: Медицина, 1989. — 318 с.

29. Дадиомова М.А., Пратусевич Р.М. Острые серозные менингиты и энце­фалиты у детей. — Л.: Медицина. 1974. — С. 44-48.

30. Диагностика и особенности терапии тяжелых форм острых респиратор­ных заболеваний у детей // Методические рекомендации. СПб., 1992. — 21 с.

31. Дмитровский А.М., Белозеров Е.С. Чума. — Алматы, 1995. – 172 с.

32. Доклад о глобальной эпидемии ВИЧ/СПИДа. — ЮНЭЙДС, 2002. – 236 с.

33. Долгушина Н.В., Макарация А.Д. Вирусные инфекции у беременных.Руководство для врачей.- Москва: Триада Х,2004.-144 с.

34. Дреизин Р.С., Астафьева Н.В. Острые респираторные заболевания. — М.: Медицина, 1991. -С. 106-128.

35. Дроздов С.Г., Лещинская Е.В., Латышева И.Н., Мартыненко И.Н, Кли­ника, диагностика и лечение острого полиомиелита / Метод, указа­ния.- М.: Минздрав., 1997. — 48 с.

36. Еналиева Д.Ш., Фазылов В.Х. Хронические вирусные гепатиты В,С и D. — Москва, « МЕДпрес-информ», 2011.- 464 с.

37. Ершов Ф.И. Антивирусные препараты. –М.: Медицина, 1998.- 192 с.

38. Жумадилова З.Б. Структура и эпидемиологические особенности проявлений сибирской язвы в Республике Казахстан //Автореферат канд.мед.наук. – Алматы, 2003. – 29 с.

39. Заликипа Л. С. Учебное пособие по общему уходу за больными. — М.: Медицина, 1976. – 255 с.

40. Зильбер А.П. Дыхательная недостаточность. М.: Медицина, 1989. -512с.

41. Зубик Т.М., Иванов К.С., Казанцев А.П., Лесников А.Я. Дифференциальная диагностика инфекционных болезней: Руководство для врачей. Л.: Медицина, 1999. – 336 с.

42. Ивашкин В.Т., Маммаев С.Н., Буеверов А.О. и др. Механизмы иммунного «ускользания» при вирусных гепатитах // Рос. журн. гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. – 2000. — № 5. – С. 7 – 11.

43. Идрисова Р.С., Карпова Е.А. Комбинированная противовирусная терапия вирусных гепатитов В и С // Метод. рекомен. – Алматы, 2001. – 11 с.

44. Ильина Т.Е., Демина А, А. Бактериоскопия в диагностике менингококковой вой инфекции // Эпидемиология и инфекционные болезни. — 1996. — № 2. — С. 35-38.

45. Инфекционные болезни у детей (под ред. В.В.Ивановой). – М.:МИА, 2002.- 918 с.

42. Исаков В.А., Романцова М.Г., Голубева С.Ю. HV- и HIV– инфекции

варианты клинического течения, методы терапии: Руководство для

46. Казанцев А.П., Матковский В.С. Справочник по инфекционным болезням. — М.: Медицина, 1986. – 320 с.

47. Казанцев А.П. Зубик Т.М., Иванов К.С., Казанцев В.А. Дифференциальная диагностика инфекционных болезней. – М.: МИА, 1999. – 481 с.

44. Калинина Н.М., Рахманова А.Г. Новое в патогенезе ВИЧ —

инфекции // Актуальные вопросы ВИЧ-инфекции. – СПб., 1997.

45. Кипайкин В.А., Рубашкина Л.А. Эпидемиология. – Ростов-на-Дону, 2002. – 474 с.

46. Козинец Г.И. Интерпретация анализов крови и мочи и их клиническое значение. М.: Триада-Х, 2000. – 103 с.

47. Кокожару В.И., Лобзин Ю.В. Интенсивная терапия тяжелых осложнений гриппа//Журнал инфектологии, 2012.- №1.- Том 4.-С.58-64.

48. Королева И.С., Белошицкий Г.В. Менингококковая инфекция и гнойные бактериальные менингиты.-Москва:МИА,2007.- 112с.

49. Лебедев К.А., Понякина И.Д. Иммунная недостаточность. -М.:

Медицинская книга. Издательство НГМА, 2003. – 423 с.

50. Левитан Б.Н., Прошина П.П., Попов Е.Е., Козлов А.В. Распространен­ность дельта-вирусной инфекции и ее взаимосвязь с НbА антиге­нами // Росс, журн. гастроэнтерол. и гепатол. 1993. № 2. — С. 86-88.

51. Лекции по инфекционным болезням / Под ред. Н.Д. Ющука и А.Д. Ца-регородцева. — М.:ВУНМЦ, 1996. – 499 с.

52. Лещинская Е.В., Мартыненко И.Н. Острые вирусные энцефалиты у детей. М.: Медицина, 1990. — 252 с.

53. Лобан К.М., Лобзин Ю.В., Лукин Е.П. Риккетсиозы человека. — М-СПб.:Элби, 2002. – 475 с.

54. Лобзин В.С. Менингиты и арахноидиты. — Л.: Медицина, 1983. — С. 109-136.

55. Лобзин Ю.В., Финогеев Ю.П, Винакмен Ю.А.. и др. Маски инфекционных заболеваний. — СПб., Фолиант, 2002. – 200 с.

56. Лобзин Ю.В., Жданов К.В., Волжанин В.М. Вирусные гепатиты. – СПб.: ИКФ «Фолиант», 1999 – 104 с.

57. Лобзин Ю.В., Лихопоенко В.П., Львов Н.И. Воздушно-капельные инфекции.- СПБ.: Фолиант, 2000. –

источник

Диагностика малярии основана на данных клинических проявлений, эпидемиологического расследования и лабораторных методах исследования, включающих методики выявления паразитов, их количества, видовую принадлежность и обнаружение антител в организме исследуемого. Обследованию в первую очередь подлежат пациенты из группы риска — прибывшие из эндемичных по малярии регионов, лихорадка у которых появилась в первые два года после выезда из этих регионов.

Рис. 1. Забор крови для приготовления препарата «толстая капля».

Рис. 2. Окраска и вид препаратов «толстая капля» и тонкий мазок.

Микроскопия препарата «толстая капля» и тонкого мазка, позволяющая обнаружить паразитов, их количество и видовую принадлежность, является ведущим методом диагностики малярии. Она проводится при малейшем подозрении на это заболевание, независимо от температурной реакции пациента. Для определения видовой принадлежности паразитов и стадии заболевания используется тонкий мазок крови. В толстой капле локализуется больше паразитов, чем в мазке. Этот метод диагностики превосходит методику определения наличия возбудителей малярии в тонком мазке крови в 20 — 40 раз.

В периферической крови паразиты обнаруживаются через определенное время после заражения:

• при 3-х дневной малярии — через 8 — 12 дней,
• при тропической — от пяти с половиной дней до 12,
• при 4-х дневной — через 15 — 21 день,
• при малярии, подобной 3-х дневной — через 9 — 15 дней.

Паразиты в крови присутствуют как во время лихорадочного приступа, так и в межприступный период и при паразитоносительстве.

Рис. 3. Техника приготовления тонкого мазка.

Полученная при проколе пальца капля крови наносится на предварительно очищенное и сухое предметное стекло и размазывается до получения пятна 1 см в диаметре. После подсушивания на воздухе предметное стекло заливается краской Романовского—Гимзы. По истечении 40-минутной экспозиции препарат ополаскивается под проточной водой и подсушивается при комнатной температуре, установленный в вертикальное положение.

Под микроскопом исследуется не менее 100 полей зрения. Более эффективным считается исследование 2-х толстых капель в течение 2,5 минут, чем 1-й капли в течение 5-и минут. 100 полей зрения просматриваются даже в том случае, когда малярийные плазмодии выявились уже в первых полях. Это производится для того, чтобы не пропустить микст-инфекцию.

Рис. 4. Микроскопия препарата «толстая капля» и тонкого мазка является ведущим методом диагностики малярии.

Порогом обнаружения малярийных плазмодиев называется минимальная концентрация возбудителей, которую возможно выявить при микроскопировании препарата «толстая капля». При заболевании этот показатель составляет 5 паразитов в одном микролитре крови. При просмотре 100 полей зрения обследуется 0,2 мкл крови.

При наличии косвенных признаков малярии (пребывание в эндемичных зонах, гипохромная анемия, обнаружение пигмента в моноцитах) и отрицательных результатов исследования препаратов «толстая капля», исследование вновь повторяется более тщательно, и не одно, а серия, состоящая из 4 — 6 препаратов при одном уколе, либо полученных при заборе крови, который производится 4 — 6 раз в сутки в течение 2 — 3 дней.

Интенсивность паразитемии определяется знаком «+».

• 1 (+) обозначает выявление от 1 до 100 паразитов в 10 п/зр, что соответствует 5 — 50 плазмодиям в одном мкл крови;
• 2 (+) обозначает выявление от 10 до 100 паразитов в 10 п/зр, что соответствует 50 — 500 плазмодиям в одном мкл крови;
• 3 (+) обозначает выявление от 1 до 10 паразитов в 1 п/зр, что соответствует 500 — 5000 плазмодиям в одном мкл крови;
• 4 (+) обозначает выявление от 10 до 100 паразитов в 1 п/зр, что соответствует 5000 — 50000 плазмодиям в одном мкл крови;
• 5 (+) обозначает выявление более 100 паразитов в 1 п/зр, что соответствует более 50000 плазмодиям в одном мкл крови.

Интенсивность паразитемии можно вычислить по количеству паразитов на 100 эритроцитов в 10 полях зрения, либо по соотношению числа паразитов и лейкоцитов в 1 мкл крови.

По интенсивности паразитемии определяется прогноз при тропической малярии. При других видах заболевания более 2% эритроцитов не поражается.

источник

Показания: подозрение на малярию.

1. Иглу – копьё (скарификатор)

8.Лоток для использованного материала.

1. Установить доверительные отношения с пациентом, объяснить цель и ход исследования, получить согласие на проведение манипуляции.

1. Выполнить гигиеническую обработку рук, надеть перчатки.

2. Обработать место прокола стерильным ватным шариком, смоченным в спирте.

3. Проколоть иглой – копьём кожу

четвертого пальца или мочки уха.

4. Стереть первую каплю крови сухим ватным шариком.

5. К следующей капле крови прикасаются стеклом в 2 местах на небольшом расстоянии друг от друга, не касаясь пальца.

6. Затем, углом другого стекла или стеклянной палочкой обе капли соединяют и размазывают до диаметра 10-15 мм.

Последующий уход: не требуется.

1. Забор крови желательно проводить в период повышения температуры в начале заболевания и на фоне нормальной температуры в конце заболевания для контроля эффективности лечения.

2. Обычно для каждого пациента готовят 2-3 толстые капли одновременно и 1 мазок крови.

2. Препарат «толстой капли» высушивают при комнатной температуре и окрашивают по методу Романовского – Гимзе.

2.Если при взятии крови, кровь идёт

Выдавливать кровь из пальца

нельзя, т.к. может выступать лимфа,

а это повлияет на результаты

— объяснить пациенту значение исследования.

— предупредить пациента, что будет небольшой укол. Попросить потерпеть, не напрягать кисть.

Показания: пищевые токсикоинфекции, холера.

1.Широкогорлые стерильные флаконы (банки).

2. металлическую ложку или пипетку

3. Плотную бумагу или целлофан.

Подготовка пациента: не требуется.

1. Выполнить гигиеническую обработку рук, надеть перчатки.

2. Рвотные массы собрать в стерильные банки или широкогорлые флаконы в количестве 50-100 (мл)

2. Отверстие банки или флакона

закрыть целлофаном или плотной вощеной бумагой. Материал направить в лабораторию.

Последующий уход: если у пациента продолжается рвота, оказать помощь, после прекращения рвоты пациенту дать прополоскать рот, умыть, переодеть.

Возможные осложнения: распространение инфекции.

Примечания: аналогичным способом можно собрать промывные воды желудка, но промывание следует производить кипяченой водой без применения антисептических

средств, обладающих губительным действием на микробы.

— рассказать пациенту о значении исследования.

— пациента успокоить, следить за его состоянием.

— забор производится специальной металлической ложкой или пипеткой с резиновым грушевидным баллончиком на конце.

Забор крови на серологическое исследование

Показания: подозрение на брюшной тиф, вирусные гепатиты, ВИЧ-инфекцию и другие инфекционные заболевания.

1.Центрифужные пробирки в штативе.

2.Инъекционную иглу с широким просветом.

3.Стерильные марлевые шарики, салфетки, бинт.

9. Клеёнчатую подушку, обёрнутую пелёнкой.

10.Ёмкость с дезинфицирующим раствором.

11.Лоток для использованного материала.

1.Установить доверительные отношения с пациентом.

2.Объяснить пациенту цель и ход процедуры, получить согласие.

3.Помочь пациенту занять удобное положение (сидя или лёжа).

4.Под локоть пациента подложить клеёнчатую подушку, обёрнутую стерильной салфеткой или пелёнкой.

1.Обработать руки на гигиеническом уровне, надеть стерильные перчатки.

2.Подготовить стерильный лоток со стерильной иглой для венепункции и стерильной салфеткой, штатив с центрифужными пробирками.

3.Осмотреть и пропальпировать вену.

4.Исследовать пульс на лучевой артерии.

5.Наложить жгут на плечо пациента, обёрнутое стерильной пелёнкой.

6.Повторно исследовать пульс.

7.Попросить пациента работать кулаком.

8.Дважды обработать кожу внутренней поверхности локтевого сгиба спиртом в направлении от периферии к центру (сначала большую поверхность, затем только место венепункции).

9.Ниже места предстоящей венепункции положить стерильную марлевую салфетку.

10.В правую руку взять иглу для венепункции, попросить пациента зажать кулак.

11.Большим пальцем левой руки зафиксировать вену, правой рукой выполнить венепункцию, левой рукой подставить под канюлю иглы пробирку и набрать необходимое количество крови.

12. Поставить пробирку в штатив.

13. Попросить пациента разжать кулак, снять жгут и приложив к месту венепункции стерильный марлевый шарик, смоченный спиртом, извлечь иглу.

14.Попросить пациента согнуть руку в локтевом суставе или наложить давящую повязку.

1.Весь использованный инструментарий подвергнуть дезинфекции.

4.Оформить направление в лабораторию. Доставить пробирку с кровью в лабораторию.

Возможные осложнения: гематома, инфицирование.

центрифугируется, из неё готовится

сыворотка и проводится реакция агглютинации с готовыми диагностикумами различных заболеваний.

2. Недостаток метода в том, что антитела появляются на 5-7 день болезни, преимущества — точный и используется для контроля за эффективностью лечения.

3.При заборе крови на ВИЧ – инфекцию используется шприц- контейнер.

– выявление специфических антител к возбудителю заболевания или антигенов микроорганизма .

источник